家兔失血性休克模型

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1、家兔失血性休克的模型班级：2014级临床专升本班组别：第2实验室第1组组长：郭财进组员：徐冰孙荣贺顾春晓杨飞飞周志豪家兔失血性休克的模型郭财进徐冰孙荣贺顾春晓杨飞飞周志豪（吉林医药学院：临床医学院2014级临床专升本班，吉林132013）【摘要】学习失血性休克动物模型的复制方法、观察休克各期的主要临床变化、了解其代偿机制，方法：家兔麻醉后，分离并进行左、右两侧颈总动脉、右侧颈外静脉插管，正确连接管道并用肝素冲洗，进入电脑程序，描记正常血压，快速放血，使血压维持60mmHg，血压稳定后，夹闭右颈总动脉，记录并观察血压变化。待血

2、压稳定后，再放血，使血压降至40mmHg并维持，在维持期间的20min内记录并观察血压变化。【关键词】失血性休克、抢救。【实验目的】1.观察失血性休克发生后机体变化；2.掌握急性失血性休克模型复制方法；【实验原理】动脉放血是循环血量减少，当少量失血时，有效循环血量减少可通过机体的一系列代偿措施（包括微循环的灌流量明显减少），使血压不出现明显的降低。但当快速失血量超过30%或大量失血时，有效循环血量急剧减少，超出机体的代偿能力，引起心输出量减少，血压降低和微循环严重和长时间缺血与缺氧，引起休克。休克分为三期：微循环缺血期（缺血

3、性缺氧期）；微循环淤血期（淤血性缺氧期）；微循环凝血期（播散性血管内凝血）；【实验材料】1.实验对象：成年健康家兔1只，体重2.5kg左右。2.实验药品：20%乌拉坦溶液，0.7%肝素，台式液。5%葡萄糖生理盐水，兔手术台，电子秤，微循环生物信号处理系统，静脉输液及中心静脉压测量装置一套，微循环观察装置，手术器械一套，动脉插管2个，气管插管、静脉插管各一个，5ml、20ml、50ml注射器各2支。【实验步骤】1.麻醉与固定（1.1）取成年家兔一只，称重，于耳缘静脉缓慢注射20%乌拉坦（以5ml/kg体重计算麻醉剂总量），作全

4、身麻醉。（1.2）动物固定：将动物仰卧固定于兔手术台上，颈前部和腹部等手术部位剪毛备皮。2.气管插管颈部剪毛，正中切口，切口长约5~7cm，在气管上剪一“V”形切口，插入气管插管并结扎固定。气管插管一端通过压力换能器3.动脉插管（3.1）逐层钝性分离颈前部组织，在胸锁乳突肌内侧下方分离出左侧颈总动脉，分离的长度约2.5～3cm。（3.2）动脉插管前，远心端必须先结扎，用动脉夹夹住近心端。（3.3）然后在颈总动脉远心端结扎部位用眼科剪刀剪开动脉，开口大小约为动脉壁的三分之一（注意遮掩，小心喷血）。该动脉导管已充满0.7％肝素溶

5、液，并经三通开关与血压的压力换能器相连接。记录一段正常呼吸、血压曲线。（3.4）少量放血，打开颈动脉插管，用肝素化的烧杯收集流出血液，并使放出血量为总血量的1/10（家兔的血量按80ml/kg计算，2.5kg家兔大概放20ml）关闭动脉夹，观察机体变化。（3.5）大量放血；少量放血10分钟后开始大量放血，放血量大概为总血量的1/5或1/4，放血需缓慢进行（切勿过快），家兔正常血压为90mmHg,大量放血后血压维持在30mmHg~40mmHg（即失血性休克状态），观察家兔机体变化。（3.6）比较两次放血后机体的血压、呼吸、心率

6、有何变化。（3.7）将注射器内的血液从颈外静脉输回原血。输血后，观察血压是否恢复正常。然后再输入生理盐水进行抢救，直至血压恢复正常。失血性休克发生前后机体的各项指标变化项目时间（min）心率（/min）呼吸（/min）血压（mmHg）正常—2805190小量放血0283497952815080102765488大量放血0247673252537735102647237【实验结果】机体少量失血时，可通过自身的代偿功能使血压和组织灌流不足保持基本正常，但当机体快速大量失血时，组织有效血液灌流不足而发生休克。随着失血量的加大，家兔

7、的心率下降，血压下降，呼吸频率增加，后面在随着失血量的进一步加大，反射性的心率增快，呼吸频率增加，血压开始回升，即家兔对自己的血压有一定的代偿能力。最后把原来抽出来的血输回给家兔，家兔血压恢复正常。【参考文献】1、李韬，《医学功能学科—实验原理与方法》，人民卫生出版社，2010年1月第1版第2次印刷；2、李悦山，董伟华，梁仲培，《机能实验学》，北京大学医学出版社，2005年8月第1版第1次印刷；