卡托普利对实验性2型糖尿病心肌病大鼠模型心脏保护作用研究

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卡托普利对实验性2型糖尿病心肌病大鼠模型心脏保护作用研究董世芬1，洪缨1，靳洪涛2，孙建宁1[基金项目]国家自然科学基金资助项目（编号：30840103），北京中医药大学青年教师专项计划（编号：2012-QNJSZX006），中药防治重大疾病的药理学研究，北京市中药基础与新药研究重点实验室。[作者简介]董世芬（1983-），女，博士，讲师，研究方向：中药防治心脑血管疾病研究，tedong4444@gmail.com。*[通讯作者]孙建宁（1952-），女，教授，博士生导师，研究方向：中药防治重大疾病创新药物研究，jn_sun@sina.com。*（1.北京中医药大学中药学院，北京100102；2.中国医学科学院北京协和医学院药物研究所新药安全评价研究中心，北京100050）【摘要】目的研究卡托普利对实验性2型糖尿病心肌病（T2DC）模型动物心脏保护作用和可能机制。方法以高糖脂饲料负荷30mg/kg剂量链脲佐菌素一次性腹腔注射建立T2DC大鼠模型，观察卡托普利45mg/kg灌胃给药6周对模型动物血糖和血脂水平，心脏功能和结构变化，心肌脂肪酸含量以及心肌组织过氧化物增殖体激活受体α（PPARα）和葡萄糖转运体4（GLUT4）基因表达等指标的影响。结果与T2DC大鼠模型比较，卡托普利给药后，左心室收缩压、左心室最大收缩速率、左心室最大舒张速率的绝对值和心输出量分别显著增加15%、77%、52%和54%（P<0.05或P<0.01）；室间隔厚度降低40%（P<0.001）；血浆糖化血红蛋白和心肌组织游离脂肪酸含量分别降低31%和24%（P<0.01，P<0.05）；心肌组织PPARα基因表达显著降低（P<0.05），GLUT4基因表达显著增加（P<0.05）。结论卡托普利可以显著改善T2DC模型动物心脏功能、抑制心室重构，其作用机理可能同调节与能量代谢相关基因表达、减轻心脏内脂肪积聚有关。【关键词】2型糖尿病心肌病；卡托普利；心脏功能；心脏结构；能量代谢【中图分类号】R-332Protectiveeffectsofcaptopriloncardiacfunctionandstructureinexperimentaltype2diabeticcardiomyopathyratmodelDONGShi-fen1,HONGYing1,JINHong-tao2,SUNJian-ning1*(1.SchoolofChineseMateriaMedica,BeijingUniversityofChineseMedicine，Beijing100102,China;2.DepartmentofEvaluationofDrugSafety,InstituteofMateriaMedica,ChineseAcademyofMedicalSciences&PekingUnionMedicalCollege,Beijing100050,China)【Abstract】ObjectiveTostudyeffectsofcaptopriloncardiacfunctionandstructureintheexperimentaltype2diabeticcardiomyopathy(T2DC)ratmodel.MethodsTheexperimentaltype2DCmodelratswereinducedbyfeedingwithhighsucrose-fatdietandintraperitoneal(i.p.)injectionwith30mg/kgofstreptozotocin.Themodelratswereintragastricgivenwithcaptoprilatthedoseof45mg/kgforsixmonthstotally.Atthethirteenthweek,theparametersofcardiacoutput(CO),leftventricularsystolicpressure(LVSP),leftventricularenddiastolicpressure(LVEDP),themaximumrateofmyocardialcontraction(+dp/dtmax)andthemaximumrateofmyocardialdiastole(-dp/dtmax)weredetectedusingMP150polygraphphysiologicalsignalrecordertoevaluatecardiacfunction.Thethicknessofinterventricularseptal(IST)andleft ventricularwall(LVWT)wasmeasuredtoassesscardiacstructure.Levelsoffastingbloodsugar(i.e.,fastingplasmaglucose(FPG)andglycatedhemoglobinA1c(HbA1c)),bloodlipid(i.e.,totalcholesterol(TC)andtriglyceride(TG))andmyocardialnon-esterifiedfattyacids(NEFA)andcreatinekinase(CK)weredeterminedbyultravioletspectrophtometricmethod.Thegenesexpressionofcardiacperoxisomeproliferatoractivatedreceptor-α(PPARα)andglucosetransporter-4(GLUT4)mRNAweredetectedbyreal-timePCRmethod.ResultsWhencomparedwiththedrug-untreatedT2DCratmodel,theparametersofLVSP,+dp/dtmax,absolutevalueof-dp/dtmaxandCOweresignificantlyincreasedby15%,77%,52%and54%,respectively,aftertreatedwith45mg/kgofcaptopril.Meanwhile,thevalueofISTwasdecreasedby40%aftertreatmentofcaptoprilinT2DCrats.LevelsofplasmaHbA1candmyocardialNEFAwereremarkablydecreasedby31%and24%,whencomparedwithT2DCgroup.Furthermore,expressionofPPARαwassignificantlydecreasedwhileGLUT4mRNAincreased,whencomparedwithdrug-untreatedmodelrats.ConclusionCaptopriltreatmentcouldeffectivelyattenuatethediastolicandsystolicdysfunctionandinhibitthecardiachypertrophyinexperimentaltype2diabeticcardiomyopathyrats,andthetherapeuticmechanismmightberelatetomediatingenergymetabolismandloweringlipidaccumulationintheheart.【Keywords】Type2diabeticcardiomyopathy;Captopril;Cardiacfunction;Cardiacstructure;Energymetabolism卡托普利（captopril，Cap）作为血管紧张素转化酶抑制剂（angiotensinconvertingenzymeinhibitor，ACEI），常用于高血压和充血性心力衰竭的治疗[1]，在治疗高血压时显示出防止和逆转心肌重塑等优势。动物研究证实卡托普利还可以改善C57BL/6J-lepob（ob/ob）肥胖小鼠的心肌能量代谢异常[2]，抑制钙激活中性蛋白酶导致的心脏功能异常和心肌细胞凋亡[3]，并可通过抑制肾组织葡萄糖沉积[4,5]、减轻肾脏纤维化过程[6]等改善糖尿病肾病。糖尿病心肌病（diabeticcardiomyopathy，DC）是糖尿病心脏病的一种特异性病变[7]，以发病早期出现左心室重量增加和心肌纤维化异常为特点[8]。肾素-血管紧张素-醛固酮系统（renin-angiotensin-aldosteronesystem，RAAS）的激活在DC早期左心室肥厚的发生以及疾病发展过程中有重要的作用[9]。本研究采用高热量饮食负荷化学因素建立2型糖尿病心肌病（type2diabeticcardiomyopathy，T2DC）大鼠模型，观察卡托普利对模型动物心脏功能和心脏结构变化的影响，并从血糖、血脂和心肌组织脂肪酸变化，以及与能量代谢相关基因表达等方面探讨卡托普利对糖尿病心肌病的可能作用机制。1.材料和方法1.1实验动物SPF级Wistar雄性大鼠，来源于北京维通利华实验动物技术有限公司【SCXK（京）2007-0001】，体质量（180±20）g。于室温22~25℃，相对湿度65%，12h明暗交替环境中适应7d后进入实验。1.2药品与试剂高糖脂饲料（20%蔗糖+10%猪油+2.5%胆固醇+1%胆盐+66.5%基础饲料粉），来源于北 京科澳协力饲料有限公司【SCXK（京）2005-0007】；链脲佐菌素（streptozotocin，STZ）和卡托普利（captopril，Cap）由Sigma公司提供，批号分别为38K152和77K1623。葡萄糖、糖化血红蛋白（glycatedhemoglobinA1c，HbA1c）、总胆固醇（totalcholesterol，TC）、甘油三酯（triglyceride，TG）、游离脂肪酸（non-esterifiedfattyacids，NEFA）和肌酸激酶（creatinekinase，CK）生化测定试剂盒由南京建成生物工程研究所提供，批号20090601。主要real-timePCR试剂：TRIzol试剂，无RNA酶的水，无RNA酶的糖原，10000×Sybergreen，Invitrogenlifetechnologies提供，美国；RNA酶抑制剂，MMLV反转录酶，10×RT缓冲液（250mMTris-HCl，pH8.3，200mMKCl，40mMMgCl2，5mMDTT），Epicentrebiotechnologies提供，美国；2.5mMdNTP混合液（dATP，dGTP，dCTP和dTTP各2.5mM），HyTestLtd.提供，美国；Taq聚合酶，Promega提供；Random9，上海生工生物工程有限公司提供；100bpDNALadder，天根生化科技（北京）有限公司提供。过氧化物增殖体激活受体α（peroxisomeproliferatoractivatedreceptor-α,PPARα）引物信息为5'ATTTGCCAAGGCTATCCCA3'（正向），5'CAGCATCCCGTCTTTGTTCA3'（反向），葡萄糖转运体-4（glucosetransporter-4，GLUT4）引物信息为5'TCCTTTCCTCGCAGCACTT3'（正向）和5'CCACAGCCTAGCCACAACAC3'（反向），甘油三磷酸脱氢酶（glyceraldehydephosphatedehydrogenase，GAPDH）引物信息为5'GGAAAGCTGTGGCGTGAT3'（正向）和5'AAGGTGGAAGAATGGGAGTT3'（反向）。1.3主要实验仪器紫外分光光度计：AGILENT8453，AgilentTechologies，德国；BiopacSystemMP150，BiopacSystemInc.，美国；GeneAmpPCRSystem9700，AppliedBiosystems，美国；TaKaRaPCRThermalCycler，大连宝生物工程有限公司；DYY-8型稳压稳流电泳仪，上海琪特分析仪器有限公司提供；H6-1微型电泳槽，上海精益有机玻璃制品仪器厂提供；Rotor-Gene3000Real-timePCR仪，CorbettResearch提供，澳大利亚；引物设计软件：Primer5.0，Rotor-gene6.0，CorbettResearch提供，澳大利亚。1.4实验方法1.4.1实验动物分组与处理Wistar大鼠45只，按体重随机取15只作为正常对照组（control），常规饲养；另外30只大鼠喂饲高糖脂饲料，每2周监测血脂水平，确认血脂明显升高后（约6周），按照30mg/kg剂量一次性腹腔注射（i.p.）STZ（以柠檬酸-柠檬酸钠缓冲液稀释，pH4.5，4℃配制，随配随用），control大鼠i.p.同体积柠檬酸-柠檬酸钠缓冲液。72h后，测定血糖，以禁食12h血糖≥7.8mmol/L为是糖尿病模型成功标准，24只动物血糖合格，按血糖水平随机分为2型糖尿病心肌病模型组（T2DC）、卡托普利45mg/kg治疗组（T2DC+Cap），每组12只。药物以0.5%羧甲基纤维素钠（CMC-Na）混悬，灌胃给药开始于注射STZ72h后，给药容量为1ml/100g体重，每日一次。Control组和T2DC模型组给相应体积0.5%CMC-Na混悬液，共给药6周。给药期间，control组继续常规饲养，其余2组同前给高糖脂饲料，自由进水，直至实验结束（共12周）。1.4.2心功能测定容积阻抗法测定心输出量：给药结束后（第13周），大鼠禁食12h，称重，按照35mg/kg剂量i.p.戊巴比妥钠溶液麻醉，仰位固定。将BiopacSystemMP150 生物采集器的心电图和心排量针式电极按照说明插入大鼠四肢皮下，固定阻抗电极间距离，将听诊器固定于大鼠心脏二尖瓣搏动最强处，实时采集心电图、容积阻抗图和心音图，测心率和每搏输出量，计算得到心输出量（cardiacoutput，CO）。左心室插管法测定左心室血流动力学指标：心输出量测定完毕，分离右颈总动脉，将20G静脉留置针经颈总动脉插管至左心室，采集左心室收缩压（leftventricularsystolicpressure，LVSP）、左心室舒张末期压力（leftventricularenddiastolicpressure，LVEDP）和左心室最大收缩/舒张速率（themaximumrateofmyocardialcontractionandthemaximumrateofmyocardialdiastole，±dp/dtmax）。1.4.3左心室前壁和室间隔厚度测量沿大鼠心脏左心室赤道面横切，取适量心肌组织，加10倍量福尔马林固定，石蜡包埋，切片（厚度4mm），常规HE染色。显微镜下观察左心室形态，用Image-ProPlus5.0专业图像分析软件测定左心室前壁厚度（leftventricularwallthickness，LVWT）和室间隔厚度（interventricularseptalthickness，IST）。每组3只动物，每只动物观察2张切片，取平均值。1.4.4生化法测定血糖、血脂和心肌组织游离脂肪酸心脏功能测定完毕，颈总动脉取空腹血（肝素抗凝），3000r/min，离心15min，分离血浆，按试剂盒说明测定空腹血糖（fastingplasmaglucose，FPG）、HbA1c、TC和TG。留取适量同部位心脏组织，预冷生理盐水充分洗净，加生理盐水冰上制作10%匀浆，3500r/min，离心10min，留取上清，生化法测定心肌组织NEFA。1.4.5实时定量PCR法测定心肌组织PPARα和GLUT4mRNA表达取适量大鼠左心室组织心尖部分，液氮速冻，-80℃储存备用。按试剂盒要求，TRIzol法抽提总RNA，转录合成cDNA。合成的cDNA用于实时定量PCR反应，反应条件为GAPDH：95℃，5min；35个PCR循环（95℃，10秒；59℃，15秒；72℃，20秒；84℃（收集荧光），5秒）；PPARα：95℃，5min；40个PCR循环（95℃，10秒；59℃，15秒；72℃，20秒；81℃（收集荧光），5秒）；GLUT4：95℃，5min；40个PCR循环（95℃，10秒；59℃，15秒；72℃，20秒；85℃（收集荧光），5秒）；为了建立PCR产物的熔解曲线，扩增反应结束后继续从72℃缓慢加热到99℃（每5秒升高1℃）。各样品的目的基因和管家基因分别进行real-timePCR反应。根据绘制的梯度稀释DNA标准曲线，各样品目的基因和管家基因的浓度结果直接由机器生成。每个样品的目的基因浓度除以其管家基因的浓度，即为此样品此基因的校正后的相对含量。1.4.6统计学处理实验数据结果采用表示，用SPSS11.0统计软件分析比较。两组组间、组内比较用t检验；多组比较用单因素方差分析（One-wayANOVA，LSD法）。2.结果2.1卡托普利对实验性2型糖尿病心肌病大鼠模型血糖、血脂生化指标的影响如表1所示，与正常对照大鼠比较，实验性2型糖尿病心肌病大鼠模型（T2DC）的血糖（FPG、HbA1c）和血脂（TG、TC）指标均显著增加（P<0.01或P<0.001）。卡托普利45mg/kg灌胃给药6周，仅出现对HbA1c增高的抑制作用，与T2DC组比较，T2DC+Cap组HbA1c值显著降低31%（P<0.01），FPG、TC和TG指标有下降趋势，但未通过统计学检验。 表1卡托普利对实验性2型糖尿病心肌病大鼠模型血糖、血脂生化指标的影响(±s,n=12)Table.1Effectsofcaptoprilonplasmasugarandlipidlevelsinexperimentaltype2diabeticcardiomyopathyratmodel(±s,n=12)组别Groups空腹血糖FPG（mmol/L）糖化血红蛋白HbA1c（A/10gProt）总胆固醇TC(mmol/L)甘油三酯TG(mmol/L)正常对照组Control3.6±0.3***26±7***1.7±0.2**0.8±0.3**2型糖尿病心肌病模型组T2DC18.8±5.645±155.2±2.61.3±0.7卡托普利组T2DC+Cap14.0±8.031±8**4.0±1.81.1±0.6注：与2型糖尿病心肌病模型组比较，**P<0.01,***P<0.001Note:ComparedwiththeT2DCgroup,**P<0.01,***P<0.0012.2卡托普利对实验性2型糖尿病心肌病大鼠模型心功能的影响如表2所示，T2DC大鼠模型心脏出现收缩和舒张功能损伤，与control大鼠比较，LVSP、+dp/dtmax以及LVEDP和-dp/dtmax的绝对值均显著下降（P<0.01，P<0.05，P<0.001，P<0.01），同时CO显著降低36%（P<0.05）；与T2DC大鼠模型比较，T2DC+Cap组动物LVSP、+dp/dtmax水平以及-dp/dtmax绝对值分别升高15%、77%和52%（P<0.05或P<0.01），CO值增加54%（P<0.05）。表2卡托普利对实验性2型糖尿病心肌病大鼠模型心功能的影响(±s,n=12)Table.2Effectsofcaptopriloncardiacfunctioninexperimentaltype2diabeticcardiomyopathyratmodel(±s,n=12)组别Groups左心室收缩压LVSP(mmHg)左心室舒张末期压力绝对值∣LVEDP∣(mmHg)左心室最大收缩速率+dp/dtmax(mmHg/s)左心室最大舒张速率绝对值∣-dp/dtmax∣(mmHg/s)心输出量CO(mL/min)正常对照组Control150±18**11.6±6.8*11190±2285***8778±1698**15±4*2型糖尿病心肌病模型组T2DC123±166.4±2.06130±16335478±17559±3卡托普利组T2DC+Cap142±12*6.4±1.710874±2898**8368±2518*15±7*注：与2型糖尿病心肌病模型组比较，*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001Note:ComparedwiththeT2DCgroup,*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001 2.3卡托普利对实验性2型糖尿病心肌病大鼠模型心脏结构的影响如表3所示，与control大鼠比较，T2DC大鼠IST和LVWT显著增加（P<0.001和P<0.05），心室壁肥厚出现。Captopril治疗后，模型动物IST显著降低40%（P<0.001）；同时LVWT降低6%，但未见明显差异。表3卡托普利对实验性2型糖尿病心肌病大鼠模型心脏结构的影响(±s,n=12)Table.3Effectsofcaptopriloninterventricularseptalthicknessandleftventricularwallthicknessinexperimentaltype2diabeticcardiomyopathyratmodel(±s,n=12)组别Groups心室间隔厚度IST(mm)左心室前壁厚度LVWT(mm)正常对照组Control1.04±0.11***2.30±0.42*2型糖尿病心肌病模型组T2DC1.86±0.143.06±1.11卡托普利组T2DC+Cap1.10±0.46***2.86±0.56注：与2型糖尿病心肌病模型组比较，*P<0.05,***P<0.001Note:ComparedwiththeT2DCgroup,*P<0.05,***P<0.0012.4卡托普利对实验性2型糖尿病心肌病大鼠模型心肌组织游离脂肪酸和肌酸激酶的影响如表4所示，与control比较，T2DC大鼠模型心肌组织游离脂肪酸和肌酸激酶含量明显增加（P<0.001）；与T2DC组比较，T2DC+Cap组大鼠心肌组织NEFA和CK值分别降低24%和18%（P<0.05）。表4卡托普利对实验性2型糖尿病心肌病大鼠模型心肌组织游离脂肪酸和肌酸激酶的影响(±s,n=12)Table.4Effectsofcaptoprilonmyocardialnon-esterifiedfattyacidsandcreatinekinaseconcentrationinexperimentaltype2diabeticcardiomyopathyratmodel(±s,n=12)组别Groups心肌组织游离脂肪酸myo-NEFA(μmol/gProt)心肌组织肌酸激酶myo-CK(U/mgProt)正常对照组Control59±18***0.60±0.19***2型糖尿病心肌病模型组T2DC100±181.17±0.16卡托普利组T2DC+Cap76±22*0.95±0.20*注：与2型糖尿病心肌病模型组比较，*P<0.05,***P<0.001Note:ComparedwiththeT2DCgroup,*P<0.05,***P<0.0012.5卡托普利对实验性2型糖尿病心肌病大鼠模型心肌组织PPAR α和GLUT4基因表达的影响以GAPDH作内参，用real-timePCR技术分别检测检测了PPARα和GLUT4mRNA的表达水平，结果发现心肌组织中PPARα和GLUT4mRNA表达较强。结果分析显示，与control组比较，T2DC大鼠心肌组织PPARαmRNA表达显著升高（P<0.05），GLUT4mRNA水平明显降低（P<0.05）；captopril治疗后，与模型动物比较，T2DC+Cap组PPARαmRNA表达量显著降低38%（P<0.05），GLUT4mRNA显著增加36%（P<0.05）。表5卡托普利对实验性2型糖尿病心肌病大鼠模型心肌组织PPARα和GLUT4mRNA基因表达的影响(±s,n=3)Table.5EffectsofberberineoncardiacPPARαandGLUT4geneexpressioninexperimentaltype2diabeticcardiomyopathyratmodel(±s,n=3)组别Groups过氧化物增殖体激活受体/甘油三磷酸脱氢酶PPARα/GAPDHmRNAexpression葡萄糖转运体4/甘油三磷酸脱氢酶GLUT4/GAPDHmRNAexpression正常对照组Control0.74±0.036*0.72±0.12*2型糖尿病心肌病模型组T2DC1.33±0.160.47±0.10卡托普利组T2DC+Cap0.83±0.068*0.64±0.073*注：与2型糖尿病心肌病模型组比较，*P<0.05Note:ComparedwiththeT2DCgroup,*P<0.053.讨论卡托普利为ACEI制剂，临床研究结果认为ACEI制剂可保护胰岛功能和预防糖尿病发生，特别是对葡萄糖耐受量受损的高血压病人治疗有优势[10,11]。但是将卡托普利应用于2型糖尿病患者治疗后，FPG、胰岛素、NEFA和HbA1c含量检测结果报道不一致。有研究显示卡托普利在降低2型糖尿病伴肥胖患者血压时，对以上指标并没有明显改变[12]；也有研究发现多例高血压不伴有糖尿病患者使用ACEI后，胰岛素敏感性显著增加[13]。RAAS与心血管系统功能密切相关，在心肌肥厚和间质纤维化发生中有重要意义。卡托普利是通过抑制RAAS发挥改善糖耐量和胰岛素敏感性作用的，但是机制复杂，一般认为与提高骨骼肌微循环和血流量，进而增加胰岛素敏感性组织的葡萄糖和胰岛素的摄入，促进胰岛素信号途径作用和β细胞胰岛素分泌有关[14]。实验研究提示卡托普利可以降低高脂饲料喂养的D57BL/6J小鼠体重，改善糖耐量，降低血浆NEFA含量[15]。本研究结果显示，卡托普利对于负荷小剂量STZ和高热量饮食诱发的大鼠高血糖和高血脂，卡托普利仅显示出对模型动物糖化血红蛋白升高的抑制作用，对FPG、TC和TG值没有明显的作用。卡托普利对于糖尿病心血管损伤也显示出保护作用。ob/ob 肥胖小鼠心脏脂肪酸氧化增加，糖酵解降低，胰岛素调节心脏底物利用能力以及Akt磷酸化降低，卡托普利应用后可以通过提高Akt磷酸化，恢复胰岛素对心脏脂肪酸氧化和糖酵解能力，同时抑制腺苷酸活化蛋白激酶（AMP-activatedproteinkinase，AMPK）磷酸化，改善心脏动力[16]；卡托普利治疗对糖尿病自发性高血压大鼠和STZ诱导的糖尿病大鼠，可以降低平均收缩压、心重和左心室重量[17]；对糖尿病WistarKyoto大鼠，卡托普利则可以降低其动脉压、左心室前壁厚度，并且抑制缓激肽生成[18]。本研究结果显示卡托普利可以减轻心肌损伤，降低心肌组织肌酸激酶含量；改善T2DC模型大鼠心脏收缩和舒张功能，提高心输出量；同时可以改善心脏肥厚状态，降低IST，对LVWT作用不明显。在探讨卡托普利对糖尿病心肌病保护作用机理时，已有研究证实其可以通过上调STZ诱导的糖尿病性心肌病大鼠脂肪酸β氧化相关基因、线粒体电子质子偶联合氧化磷酸化相关基因改善病变心肌的能量供应，对心肌组织起保护作用[19]。PPARα可通过增加心脏脂肪酸氧化率和降低葡萄糖代谢引发类似糖尿病心肌病变[20-23]，PPARα诱导大量基因参与脂肪分解过程，包括脂肪酸转运、酯化、连接和β-氧化过程，同时可减少多种参与葡萄糖代谢的基因如GLUT4和磷酸果糖激酶的水平，导致葡萄糖摄取和利用受损，心脏能量利用率下降[24]；PPARα也可能通过改变外周循环中内源性底物的浓度间接影响心脏的代谢[25]。本研究结果证实Wistar大鼠以高糖高脂膳食负荷STZ诱导后，心肌组织PPARα基因表达增加，GLUT4mRNA基因表达降低，这可能是造成模型大鼠心脏脂肪过度利用、积聚的基因转录作用机制。卡托普利则可以降低心肌组织PPARαmRNA基因表达，提高GLUT4mRNA基因表达，降低糖尿病心肌病模型大鼠心肌组织游离脂肪酸含量，抑制心肌组织的脂肪积聚，减轻脂毒性，改善能量利用障碍，可能是其保护糖尿病心肌病心脏损伤的机制之一。综上所述，卡托普利可以改善高糖脂膳食负荷小剂量STZ造成的实验性糖尿病心肌病模型大鼠的心脏收缩功能和舒张功能，抑制心室间隔厚度增加，作用机制可能与抑制心肌组织PPARα基因，提高GLUT4基因表达，从而减轻心肌脂肪积聚有关。4参考文献[1]林继红,孔焕育,王卫国,等.卡托普利单次和多次给药对自发性高血压大鼠模型的作用[J].中国比较医学杂志,2009,19(5):35-37.[2]Tabbi-AnneniI,BuchananJ,CookseyRC,etal.Captoprilnormalizesinsulinsignalingandinsulin-regulatedsubstratemetabolisminobese(ob/ob)mousehearts[J].Endocrinology,2008,149(8):4043-4050.[3]蒋贤忠,赵竞,金可可,等.卡托普利对糖尿病大鼠心肌细胞凋亡及相关蛋白表达的影响[J].温州医学院学报,2012,42(4):331-334.[4]ZhangJZ,GaoL,WidnessM,etal.Captoprilinhibitsglucoseaccumulationinretinalcellsindiabetes[J].InvestOphthalmolVisSci,2003,44(9):4001-4005.[5]FournierA,LalauJD.Theeffectofangiotensin-converting-enzymeinhibitionondiabeticnephropathy[J].NEnglJMed,1994,330(13):937.[6]朱铁锤.决明子对糖尿病大鼠肾脏纤维化的抑制作用[J].中国实验方剂学杂志,2012,18(24):315-319.[7]IsfortM,StevensSC,SchafferS,etal.Metabolicdysfunctionindiabeticcardiomyopathy[J].HeartFailRev,2013,[Epubaheadofprint]. 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