中国淮山药病毒病调查、诊断和病原病毒分子生物学的研究

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固中国淮山药病毒病调査、诊断和病原病毒分子生物学的研究邹承武..J....?-:廣;:A學二〇一四年五月 分类号0939.46密级UDC博士学位论文中国淮山药病毒病调查、诊断和病原病毒分子生物学的研究邹承武学科专业微生物学指导教师陈保善教授论文答辩日期20-5-29学位授予日期2014-6-2514答辩委员会主席樊晓晖教授论文评阅人双盲评审 广西大学学位论文原创性和使用授权声明本人声明所呈交的论文,是本人在导师的指导下独立进行研究所取得的研究成果。除已特别加以标注和致谢的地方外,论文不包含任何其他个人或集体已经发表或撰写的研究成果,也不包含本人或他人为获得广西大一学或其它单位的学位而使用过的材料。与我同工作的同事对本论文的研究工作所做的贡献均已在论文中作了明确说明。本人在导师指导下所完成的学位论文及相关的职务作品,知识产权归,属广西大学。本人授权广西大学拥有学位论文的部分使用权即:学校有权保存并向国家有关部门或机构送交学位论文的复印件和电子版,允许论文被查阅和借阅,可以将学位论文的全部或部分内容编入有关数据库进行、检索和传播,可以采用影印缩印或其它复制手段保存、汇编学位论文。本学位论文属于:□保密,在年解密后适用授权。□不保密。“”(请在以上相应方框内打V)法式论文作者签名:却日期:指导教师签名:日期:作者联系电话:电子邮箱: 中国淮山药病毒病调查、诊断和病原病毒分子生物学的研究摘要_淮山药病毒病是引起淮山药减产和品质下降的主要因素之。本研究通过调查中国的广西、江西、河南、山东和江苏共五省的主要淮山药产地的病毒病发生情况,发现不同地区不同品种的淮山药的病毒病发病率差异较大。'南方的广西和江西主栽种为参薯(Aosroreaa/fltoLinn.)和日本薯蔬7%?40%之),病毒病的发病率在间;而北方的河南、山东和江苏等省份,主栽种为普通山药(DzVwcoreac^/toThunb.),ip/?59病毒病的发病率在2%.3%之间。世界上已经报道的淮山药病毒分别属于马铃薯Y病毒属(外批順)、杆状DNA病毒属(5a办av/ms)、马铃薯X病毒属(Potexv/msO和黄瓜花叶病毒属(Cwcwwov/m?)的多种病毒。本研究使用小RNA深度测序技术以及PCR或RT-PCR等技术对采自上述5个省区共365份的淮山药病毒病样本进行病原病毒鉴定,发现在中国侵染淮山药的病毒至少有2种DNA病毒和7种RNA病毒,其中有3种是本研究发现的新病毒,分别为马铃薯X病毒属(PoterWmsO的淮山药X病毒(YVX,暂命名)、香石竹潜隐病毒属(Cfl/arv/msO的淮山药潜隐病毒(YLV,暂命名)和菜豆金色花叶病毒属(5egomov/ms0的淮山药黄斑花叶病毒(YYSMV,暂命名)。其它的6种病毒分别为:杆状DNA病毒属的薯蓣杆状病毒(DBV)、马铃薯Y病毒属的淮山药温和花叶病毒(YMMV)和日本淮山药花叶病毒(JYMV)、枳檀花叶病毒属(Mac/wrav/my)的中国淮山药坏死花叶病毒(CYNMV)和淮山药褪绿坏死花叶病毒--(YCNMV),以及蚕豆病毒属(Fa—)的蚕豆萎蔫病毒2(BBWV2)。在参薯中检测出DBV、YVX、YMMV、JYMV、CYNMV和YCNMV在;I 日本薯蓣中检测出DBV、YYSMV、YMMV、JYMV;在普通山药中检测YMV-出DBV、YYSMV、YVX、YMMV、J、BBWV2、CYNMV和YLV。、其中,在参薯中检出率较高的有DBV(71.1%)YMMV(49.3%)和YVX(16.2%)(66.7%)和JYMVC12.6%);,在日本薯蓣中的检出率较高的有DBV在普通山药中检出率较高的有JYMV(43.4%)、YLV(31.6%)、DBV(19.9%)、-YYSMV(YMMV(17.6%)、BBWV2(17.6%)和12.5%);其它病毒在上述三种淮山药中的检出率小于5%。病毒复合侵染现象普遍存在,在检测_的365份样本中有138份样本为两种以上病毒复合侵染,其中在个水山药的病毒病样本中同时检出5种病毒。-Se-PCR技术应用RNAq深度测序技术结合RACE和RT,成功克隆到---WX-侵染淮山药的YMMVNC1、JYMV1、YVXWX1、CYNMVFX1、BBWV-2--YYSMV-SG、YLVSG1和FX1病毒分离物的基因组全长序列。YVX-Potexv其中WX1具有irus的基因组结构特征,与白三叶草花叶病毒rv一(膽/fec/ove/rws,WC1MV)日本分离物的核音酸序列致性最?—-r高,53.1%,/WexWrws个新种SG1具有Ca/av/ms但仅为是;YLV的基因组结构特征?mosa/cv/nHMV)澳大利亚分离,与酒花花叶病毒(//〇;p一—.,629%,是Car/av/ms个新种物的核苷酸序列致性最高为;-FXYYSMV1具有的基因组结构特征,与百香果严重畸叶病毒(Passionfruitsevereleafdistortionvirus,PSLDV)巴西分离物的核音酸序_一。列致性最高,但仅为54.2%,是个新种将本研究获得的26个YMMV分离物与世界上其它淮山药种植区报道的19个YMMV分离物的核苷酸序列进行系统进化分析,发现这45个YMMV分离物共聚成5个组,呈现出与地理位置的密切相关性;来自中国南方和北方淮山药产区的26个YMMV分离物分别聚在2个组,彼此进化关系较远,由此推测YMMV遗传变异可能是由于地理隔离导致YMMV不同群体的单独进化以及不同YMMV分离物对不同淮山药品种的宿主适应II C-性差异所致。本研究发现YMMV分离物存在重组现象,其中PI、HPro、P3、6K1和CI区域有重组热点。本研究通过表面抗原表位抗体库(SEAL)技术成功制备了JYMV的单克隆抗体,通过原核表达病毒外壳蛋白制备了YMMV、YVX、CYNMV和YLV的多克隆抗体。JYMV的单克隆抗体在检测某些淮山药样本时有微弱的非特异性反应,其它病毒的多克隆抗体的特异性较好,且效价均大于31:256000,这些抗体对稀释10倍的病叶汁液仍表现出很强的免疫反应。基--于所制备的病毒抗体,建立了相应的病毒ELISA检测方法和ICRTPCR检C-RT-PCR方法的ELISA方法的1000倍以上。本测方法,其中I灵敏度是研究还建立了可同时检测YMMV、JYMV、CYNMV和YLV的多重PCR检测技术。综上所述,本研究查明了中国五个省区的主要淮山药产地的病毒病发生情况并鉴定了淮山药的病原病毒,建立了灵敏可靠的检测方法,为将来淮山药生产的病毒病防控提供了重要保障。关键词:淮山药病毒病;病原鉴定;病毒分子特征分析;深度测序;抗体制备III DISEASESURVEY,DIAGNOSIS,ANDMOLECULARCHARACTERIZATIONOFVIRUSESINFECTINGYAMINCHINAABSTRACTViraldiseasesareoneofthemostimportantfactorslimitintheroductiongpofaminChinabcausinheavlossinieldanddeclineinualit.Ayygyyqyee-earsurveconducedthrtinthemaoramrowinrovincesofGuanxiyyjyggpg,JianxiHenanShandongandJiansurovincesinChinarevealedthatviralg,,gpiseaseswere-dwidelyistributedandanincidenceof7%40%wasobservedondvarietiesbelongingtoD.alataandD.aonicainGuangxiandJiangxiofthejpheCh-soutrninaand2%59.3%onvarietiesbelonintoD.oositacultivated,ggppinHenanShandonandJiansuintheNorthofChina.,ggVirusesofPotyvirus,Badnavirus,PotexvirusandCucumovirusgenerahavebeenfecl-reortedtointamwordwide.Inthisstudthecausativeviralpyy,--aentswereidentifiedbsmallRNAdeepseuencingandPCR/RTPCRofgyq365leafsamplescollectedfromthe5rovincesmentionedabove.DioscoreapbacillifromvirusDBVofenusBadnavirusYammildmosaicvirusYMMV()g,()andJaaneseammosaicvirusJYMVofenusPotvirusYamvirusXYVXpy()gy,()ofenusPotexvirusYamlatentvirusYLVofenusCalarvirusChineseam,),g(gynecroticmosaicvirusCYNMVandYamchloroticnecroticmosaicvirus()ofenus-YCNMVMacluravirusBroadbeanwiltvirus2BBWV2ofenus()g,()gFabavirus,andYamellowsotmosaicvirusYYSMVofenusBeomovirusyp()ggweredetected.DBV,YVX,YMMV,JYMV,CYNMVandYCNMVwerefoundinDltYYSMV..aaaDBVYMMVandJYMVwerefoundinD;,,-aonandYVXYMMV-icaDBVYYSMVJYMVBBWV2CYNMVandjp,,,,,,,IV YLVwerefoundinDoositaThunbFurtheritwasnoticedthatDBV711%...pp,(),YMMV49.3%andYVX16.2%werefreuentldetectedonD.alataDBV()()qy;66werefrettt..7%andJYMY12.6%uenldeecedonDaonica()()qyjp;JYMV434%YLV316%DBV-199%YMMV17.6BBWV2176%...%.(),(),(),(),()andYYSMV12.ittivedetectablerateofother.5%inDopposa.Theosi()pvirusesinthethesethreeamsecieswerelessthan5%.Doubleortrileyppt-infectionsweredeectedin138of365samleswhichindicatedthatcoinfectionpt-ormuliifectionrevalentinamsAamlefomDitnpy.spr.opposacv.SSYwasfoundtobeinfectedb5virusessimultaneousl.y,yt-YMV-ThecomleeenomesofisolatesYMMVNC1JWX1pg,,CYNMV-FX-----were1BBWV2SGYVXWX1YLVSG1andYYSMVFX1,,,,de--terminedbsinRNASeRACEandRTPCR.Theenomeoranizationsyugq,ggof---thenovelvirusesYVXWX1YLVSG1andYYSMVFX1werefoundtobe,,thesametothatofPotexvirusCarlavirusandBeomovirusresctivel.,g,py-tYVXWX1sharedthehihestsimilaritoWhiteclovermosaicvirusWC1MVgy()-Jaaneseisolatewith53.1%nucleotideidentitttpy.YLVSG1sharedhehighessimilarittoHopicvirusHMVAustralianisolatewith629%identitymosa(p).ya-tnucleotidelevel.AndYYSMVFX1sharedthehihestsimilarittogyPassionfruitsevereleafdistortionvims(PSLDV)Brazilisolatewith54.2%nucleotideidentity.Ahloentreewith26YMMVisolatescollectedinthisstudand19pygyyotherYMMVisolatesdeositedintheGenBankwasconstructed.Theseisolatespfellinto5rouswithgeographicorigincorelation.IsolatesdetectedinthegpSouthandtheNorthofChinabelonedtotwosearaterouswhichwerefargpgp,fromeachotherinthehloenetictreesuestinthatYMMVevolutionmapyg,gggybeaffectedbygeographicisolation,yamcultivarsandrecombinationevents.RecombinationhotsotsweredetectedinthePItoClreionofYMMV.pgMonoclonalantibodyaainstJYMVwassuccessfulleneratedbSEAL,gygyandCPpolyclonalantibodiesagainsttheYMMV,YVX,CYNMVandYLVv -wereeneratedusinthebacteriamexressedviralcoatroteins.ExcetfortheggpppJYMVmonoclonalantibodythatexhibitedaslihtllowersecificitwithagypylightbackground,thespecificitiesoftheolyclonalantibodiesaainstotherpgviruseswerehigh.Thetitersofallantibodieseneratedwerehierthanggh1:16000andwhentheinfectedleafsawasdiluted1000foldsastron,p,gimmunereactioncouldstillbeobservedwiththeviralpolclonalantibod.yy--vELISAandICRTPCRrotocalsweredeveloedirusescouldbedetectedinpp,""theinfectedleafsapdilutedupto10byELISA,anddilutedupto10timesbyI--PCRMumsCRT.ltilexPCRsstefordianosisofYMMVJYMVCYNMVpyg,,andYLVwereestablishedbusinadaterrimers.ygppInconclusionincidenceofviraldiseasesonamandtheidentitiesofthe,ycausativevirusesinthefivemaoramroducinrovincesinChinawerejypgpdeterminedthisstudy.Atthemeantimesensitiverotocalsfordetectin,pgam-ectnvrsesweretohesemeninfigiudeveloped.Combinedethertdevelotsyg,plaidasolidfoundationforamroductioninthefiiture.ypKEYWORDS:Yamviraldiseases;viralpathogensidentification;molecularcharacteristicsdeeseuencinantibodrearation;pqg;yppVI 目录msiABSTRACTIV一第章前言11.1淮山药研究概述11.1.1淮山药的主要品种和形态学特征111..2淮山药的起源21.1.3淮山药的生产和栽培21.14淮山药的用途3.1.2淮山药病毒性病害及其研究进展41.2.1马铃薯Y病毒科病毒41.2.2花椰菜花叶病毒科杆状DNA病毒属病毒121.2.3雀麦花叶病毒科黄瓜花叶病毒属病毒131.2.4未分类的淮山药病毒141.3病毒检测技术17131..生物学检测技术171.3.2电镜检测技术171.3.3免疫检测技术181.3.4基于核酸的检测技术181.3.5双链RNA分析技术191.3.6深度测序技术201.4本研究目的及意义21第二章中国淮山药病毒病调査及病原病毒鉴定222_1引言222.2材料与方法232.2.1田间调查232.2.2病毒样本的采集242.2.3生化及分子生物学试剂24vn 2.2.4病毒检测弓24丨物226.2_5淮山药总DNA的提取2.2.6淮山药总RNA的提取262.2.7cDNA的合成272827.2.常规PCR反应体系与条件2.2.9PCR产物电泳检测272.2.10克隆和测序282.2.11系统进化树分析282.2.12小RNA的深度测序282.2.13GAIIx上机302.2.14深度测序的生物信息学分析312.2.15淮山药病毒粒子的提取和形态观察31232.2.16淮山药的细胞病理观察2332.结果2.3.1淮山药病毒病田间症状322.3.2淮山药田间发病率33236.3.3小RNA深度测序鉴定淮山药病原病毒2-.3.4PCR或RTPCR检测淮山药病原病毒37239.3.5YYSMV的传播介体2.3.6YYSMV的部分田间寄主40-242.3.7侵染淮山药的YLV和BBWV2病毒粒子的形态特征2.3.8受病毒侵染的铁棍山药叶片的细胞病理变化432.3.9受YMMV侵染的桂淮5号叶片的细胞病理变化462.3.10受YVX和YMMV复合侵染的紫山药叶片的细胞病理变化47248_4讨论第三章中国淮山药病原病毒的分子生物学特性分析503.1引言503251.材料与方法3.2.1毒源513.2.2生化及分子生物学试剂56vm 3.2.3引物563.2.4核酸提取方法593-.2.5RNASeq深度测序593.2.6逆转录反应613.2.7快速扩增cDNA末端623.2.8PCR反应扩増基因组全长643.2_9克隆及测序方法643f.2.10MiMf643.3结果653-e.3.1RNASq深度测序653.3.2YMMV南昌分离物的基因组全序列测定及其分子生物学特征分析.......693.3.3JYMV温县分离物的基因组全序列测定及其分子生物学特征分析.........783.3.4CYNMV丰县分离物的基因组全序列测定及其分子生物学特征分析.....793BBWV-1.3.52寿光分离物的基因组全序列测定及其分子生物学特征分析.....83.3VX温县分离物的基因组全.5Y序列测定及其分子生物学特征分析833.3.6YLV寿光分离物的基因组全序列测定及其分子生物学特征分析893.3.7侵染淮山药的DBV的遗传多样性分析933.3.8YYSMV丰县分离物的基因组全序列测定及其分子生物学特征分析.....963.4990第四章五种淮山药病毒抗体的制备及病毒检测方法的建立114.1引言1014.2材料与方法1014.2_1毒源1014.2_2常用试剂及试剂盒102423弓10..丨物24.2.4病毒CP蛋白基因的扩增与测序1044.2.5原核表达载体的构建1044.2.6蛋白的诱导表达及表达条件优化1044.2.7表达产物的可溶性分析10548.2.重组蛋白的纯化105IX 4.2.9多克隆抗体的制备1054210106..单克隆抗体的制备4.2.11抗体效价及特异性检测108-4.2.12间接抗原包被免疫吸附测定(ACPELISA)方法检测病毒10841.2.13蛋白质免疫印记(Westernblot)方法检测病毒094.2.14免疫捕获反转录聚合酶链式反应1094.3^1104.3.1病毒蛋白基因的克隆1104.3.2重组蛋白的原核表达及纯化1114.3.3抗体效价测定1134-.3.4ACPELISA对淮山药病毒病样本的检出能力114-4-.3.5ICRTPCR检狈!山药病毒115I淮4.3.6其它淮山药病毒抗体的制备1164.3.7Westernblot验证淮山药病毒抗体特异性118--438PCR或ICRT-PCR检12..五种淮山药病毒的IC测方法的建立04-.3.9多重RTPCR检测淮山药病毒1224.4讨论123第五章总结与展望1265.1全文总结126丨5.2本研究的仓J新点1285.3工作展望129参考文献131It£147附录1本论文所用术语缩写及全称对应表147附录2本论文所用病毒缩写及全称对应表149附录3本论文所用物种拉丁名与中文学名对应表152附录5用于制备抗体的病毒外壳蛋白氨基酸序列1551致谢57攻读学位期间发表的学术论文158X 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调查诊断和病康病毒分子生物学的研究、第一章前言淮山药CDfoscoreaspp.),原名山药,又名薯蕷、山薯、大薯、延草、诸薯、薯药等,一。我国北方地区常称之为山药或怀山药,南方地区尤其是广西和广东等地般称之为淮山我国农业部和财政部批准设立的国家公益性行业(农业)科研淮山药专项中,将北方的山药和“”1[]南方的淮山等可食用及栽培利用的薯蓣属植物都统称为淮山药。病毒性病害是世界上一。所有淮山药种植区的主要限制因素之,在淮山药生产上造成重大损失因此,研究中国淮山药病毒病的发生流行情况,并对病原病毒鉴定,具有重要的理论意义和现实意义。1.1淮山药研究概述'一淮山药为百合目(Liliales)曹蓣科(Dioscoreaceae)薯蓣属(Aascomi)的年或多年生蔓性根茎类作物,在植物学分类上属于单子叶被子植物,但具有双子叶植物特性,以肉质根状块茎和零余子为主要利用产品。淮山药的块茎富含蛋白质、淀粉、多糖、矿物质及其它营养物质,依据种和品种的不同,可作药用或食用,具有良好市场前景和产业开发潜势。1.1.1淮山药的主要品种和形态学特征一淮山药种类众多,它们被认为是最原始的被子植物之。我国淮山药资源丰富,品种众l[j多,在分类学上主要有以下几个种:普通山药(D/cwcoreac^o^toThunb.)、日本薯葡Thunb.)、参薯(ZWtwcorefla/atoLinn.)、甜薯(Z^oscoreaLour.)和褐袍薯截。淮山药块莲中主要包含淀粉,不同的一2淮山药种类的块茎大小差异很大.5m.k。,小的与土豆般大,大的长度超过,重达75g2[]不同种类的淮山药的块茎形状各异,有球状、圆柱状、椭圆和扁平等。不同种类淮山、、药块茎的肉质颜色也各不相同,有灰白黄色紫色和粉红,其块茎表皮颜色从灰白到暗褐色都有。某些种类的淮山药能产生零余子,例如黄独汾raL.,aerial一yam)。大多数淮山药种类的块茎是年生,部分淮山药种类的块茎是逐年增大并木质3化形成地下茎[]。淮山药的藤状枝蔓通常围绕附近的植株或支架按照顺时针或逆时针方向攀爬,其缠一?绕方式因种类而异。叶为对生,心形、卵圆形至椭圆形,般长36英寸,从叶基开始1 广西大学博士学位论文中国灌山苗病毒病谓查、诊断和病康病毒分子生物学的研究 ̄?4nun有79条叶脉。淮山药是雌雄异体,开花不显著,花朵的直径为2,花的颜色有白色、乳白色。雎雄花均为穗状花序,雌花较少,、浅绿色或褐色,通过虫媒或风媒传粉雄花较多。必须同时种植雄株和雌株才能获得淮山药种子,但是很难保证它们同时开花。 ̄cm。淮山药零余子为干胶囊状的,长12112..淮山药的起源淮山药被认为是在公元第二世纪,由居住在马达加斯加岛的马来西亚人携带其从亚。洲横跨大草原,带到非洲的西部接着,西非种植的淮山药又在十五世纪五十年代后期,经大西洋带入到加勒比海地区。有研究证据显示不同种类的淮山药起源于热带的三个独立的地区:亚洲、西非和热带美洲。参薯和甜薯起源于亚洲后被引入西非。白薯蓣(ZWfwcorearomnrfatePoir.)、几内亚薯蕷(Dfcwcorea肌Lam.)和灌丛薯蓣(ZWcwcoreaPax.)起源于西非,而在西非家庭栽培的三裂叶薯蕷(Dioscorea7^1的起源于热带美洲。在已知的600多种薯蓣属植物当中,只有10多种作为食用48,[】、、、薯被栽培。其中最普遍用于食用的是白薯费、参薯几内亚薯蓣灌丛薯蓣黄独和7[]此甜薯等,在热带地区种植的淮山药有90%以上是这些品种。相比之下,白薯莨(Z)com!A冲此Dennst.)、薯蓣、日本薯蓣和三裂叶蓄蕷则较不常见。11.3.淮山药的生产和栽培,其产量仅次于马铃薯(2012年.)、淮山药是世界上第四大重要的的块茎作物,36亿吨9[]12012年,2.6亿吨)和甘薯(2012年1),202年世界总产量达到5875万吨。木薯(,亿吨世界范围内有超过500万公顷的土地用于淮山药生产,淮山药块莲是在非洲和亚洲的部分地区。、美洲的中部和南部以及大洋洲地区食用碳水化合物的主要来源我国淮山药已有2500年以上的栽培历史,是普遍受欢迎的药食兼用作物,广泛分布于浙江、江苏、甘肃、山东、广西和河南等地。随着对淮山药的营养价值和药用价值的认识加深,以及科技进步和市场拉动,近年来,我国各地淮山药生产发展势头良好。历史上形一成的淮山药主产区种植面积稳定发展,些新的区域也在不断引进试种和扩大种植,目前南至海南省,北至黑龙江,西至新疆,都有淮山药种植,2013年淮山药种植面积近700万亩1000万吨。、、山东、江苏和广西,是我国淮山药主要产区。,年产量超过河南河北一1口基地[]。这五个省区常年种植面积都在2万公顷以上,目前已经形成定规模的出2 广西大单博士学位论文中国淮山苗病毒病调查诊断和病康病毒分子生物举的研究、一:食用淮山药是年生作物,有两个生长周期在热带雨季,藤蔓延长营养生长和开花;在干燥的季节,茎上部分停止生长,营养素在淮山药进入休眠状态之前转移到块茎1()[]-。。淮山药生长需要肥沃并且排水良好的土壤,土壤的pH值在67之间最佳在茎上部71,1][5?6分生长阶段的个月内需要最低1000毫米的降雨或等量的灌溉用水。准备种植淮山?3药的土地首先要清除植被。清理后,从12月初到次年三月中旬准备土墩。土墩长0.6m, ̄1,宽0.9.3m。这些操作必须在雨季来临之前完成。农民通常切取淮山药的块茎进行播种?切取的块茎通常至少包含23个芽。块茎表面在播种前可以晾干,也可以用杀菌剂处理。一一播种时通常是在准备好的土墩上打一三分之到入切个大约为土墩高度半深的洞,放一。取的块茎,填满泥土即可种植的块茎经过段休眠时间才会发芽,长出光秃秃的藤蔓,°到雨季来临时才会长出叶片。收获后,淮山药块茎在平均环境温度为25C的仓库中可以4-6个月贮存。1.1.4淮山药的用途?%?、蛋白、淮山药块茎的主要成分为:碳水化合物约75.683.3质37.4%纤维'1214一[]? ̄-01.5.5%、灰分0.72.0%和脂肪0.050.02%。淮山药也富含些重要维生素,14[]尤其是维生素C在块茎含量约-2413.7mg/100g。块茎还包含丰富的矿物质和膳食纤1415维[,]、维生素B6、钾、锰、低饱和脂肪、钠和胆固醇,有利于维持人体内的钠钾平衡15[]和防止骨质疏松症及心脏疾病。另据报道,淮山药的碳水化合物被缓慢分解后,逐步释放葡萄糖进入血液,这也意味着淮山药可提供更持久的能量形式,并对于防治肥胖和16[]糖尿病给予更好的保护。淮山药在许多国家是非常重要的食物,特别是西非、东南亚、太平洋和加勒比群岛17[]和巴西的部分地区。块茎的皮是传统的动物饲料的来源。某些淮山药还可药用,如野生Dfoscoreav///aw含有可的松的前体留体皂甙和苷元,可用于治疗更年期疾病、关节18[]炎和月经紊乱。有些品种还可提取雌性激素的前体薯蓣皂甙元,以及用于制造避孕药419一一[’]i和性激素。还有些品种,如长薯葡(■Df<wcomi6atotoDeene.),作为种装饰植182()[,]物具有很高的观赏价值。3 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究1.2淮山药病毒性病害及其研究进展病毒性病害可导致淮山药减产和种质退化,对淮山药的生产和种质交流造成重大威胁。病毒侵染淮山药可引起的症状包括叶片花叶、绿色脉带、褪绿斑驳、脉间褪绿、萎2122’[]缩和畸形等。以叶子受影响最大,导致光合作用的能力受破坏,最终影响块茎产量和质量一一,甚至造成植物死亡。在生产上,淮山药般采用营养繁殖方式进行种植,病毒旦感染淮山药便会通过种薯代代相传,造成淮山药产量和品质下降以及种质退化。特别是近年来随着淮山药种植面积的不断扩大,种质交流日益频繁,防控淮山药病毒病的重要性逐渐凸显。193619年,首次在塞拉利昂和波多黎各发现淮山药病毒病,1957年和61年报道了淮、山药病毒的侵染过程,之后在尼日利亚科特迪瓦和多哥报道了白薯蓣出现中度到严重的花叶症状。至今,侵染淮山药各种品种的病毒在所有淮山药种植的热带地区都有报道。侵染淮山药的病毒主要是马铃薯Y病毒属、杆状病毒属、马铃_X病毒属(Potexv-薯zms)和黄瓜花叶病毒属(CwcMwov/ms)(见表11)。目前国际上鉴定并报道了10多种淮山药病原病毒。1.2.1马铃薯Y病毒科病毒马铃薯Y病毒科包括马铃薯Y病毒属、黑麦草花叶病毒属_(办movims)、大麦黄花叶病毒属(办moWms)、甘薯病毒属(夺o/nov/ms)、枳澄病'毒属(Mac/wraWms)和小麦花叶病毒属(7Wftwov/ms)该科的大多数病毒依靠厨虫以非持久性的方式进行传播-,某些病毒是通过真菌、螨虫或粉虱进行传播(表12)。4 钭Z穿-sAA.A'I#AMJA弇IAA糾flrgaAaaamj>>v>碌vH教aac聢忘ra4>*AAAA超#JAMsi—ias胺候Aaauaau卷运-隹s"pVVVVN砌^NNZv-¥-HflSEsssSS§fS1Se?s+++p+按彐(D.q蝌}画,0of、0fr-0gK(nli1IioosI ̄- ̄<0o-oxE>0ooS00sE66saG(VNa,s「£、psG)¥0.目sV0JEul6sN—1uisis0i0ioc英ai ̄89ei雜9u9l您l遯^桐^s1s^swK^(V^No¥iiss.is-eA+^^Mu.l^fc§lis_^p.aV?JvJNSUrIzJHS薦賓as-S/su3!lSlpu#雜.2It+JBl)SJ银.2JEM>sivV53mA0左NzJ'q^Wl;?0§浮(J3JSSyOt:s穹£s7cofJS+pMCr■舾rsiJKp「oi-^vo备UnsSJz拉OEDiJl^sE孙p#審ss+u^+u1t^oIsf社Af!Jl?cIa孙A0(uf'^A,—EIav?_Ol-f^Uqteq^3q^-^ov,/l漆^s雲l-一j 广西大学博士学位论文中国淮山药病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究1211Y...马铃薯病毒属病毒■一v■Po^/ms是植物病毒中最大的个属,共有91个种和88个暂定种。该属的大部分病一毒可以通过财虫以非持久的方式进行传播,也可通过机械摩擦接种传播,些病毒还可以通P’过种子传播。感染oKwms的植物细胞中通常出现风轮状的内含体,但是不同病毒的内含体t^?差异较大。作树my的病毒粒子为线状,无包膜,长度在680900nm之间,直径约2526’][][?11-为15nm。其基因组为正义的单链RNA(ssRNA),长约10kb,5末端共价’一一--结合个病毒基因组连接蛋白(valenomelinkedrotein,VP)3irgpg,末端包含条271一[多聚腺苷酸尾(poly(A))。基因组有个大的开放阅读框架(openreadingframe,ORF)28一[],可先翻译成个大的多聚蛋白(polyprotein),然后再通过自身编码的蛋白酶将0—--该多聚蛋白加工成1个病毒蛋0,从N端C端依次产生(见11及表12)图:第一-HC-蛋白(firstrotein,P1),辅助蛋白酶(helercomonentroteinase,Pro),pppph一ti3KK1il第三蛋白(tirdroen,P),第个6蛋白(6),圆柱状内含体蛋白(cylindrcapprotein,CI),第二个6K蛋白(6K2),病毒基因组连接蛋白(VPg),核内含体蛋‘’a(Nuc-NIa-白蛋白酶learInclusionbodaroteinroteinasePro),核内含体蛋白ypp,b‘’28Nu[](clearInclusionbodbproteinNib)和外壳coatrotein,CP)。y,蛋白(pP-IPO6K16K2NlaPro__1...Ir,,,VPP-5g1HCProP3ClVPgNibCPAn3H|卜|图-11马铃薯Y病毒属病毒的基因组结构Fiure1-1OranizationfPotvirusenomeggoyg具有中等的免疫原性,有报道,该属内得许多病毒之间存在着血清学关系一24][称种单克隆抗体能与绝大多数该属的蚜传病毒发生免疫反应。6 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病镧查、诊断和病屎病毒分子生物学的研究*%表-7>112/0如?编码的蛋白的主要功能b-Tale12FunctionsofroteinsencodedbPotviruspyy病毒蛋白病毒蛋白的氨基酸序列特征病毒蛋白的功能P-k1(3262Da)有典型的丝氨酸蛋白酶特征,序列特异基因沉默的辅助因子蛋白酶;有,进行多聚蛋白加工与胰蛋白酶相似活性;影响病毒基因组复制和宿主症状HC-P--ro(5658kDa)C末端自动裂解,与木瓜蛋白病毒基因组增殖;系统移动;自身互作;酶的半胱氨酸蛋白酶类似细胞间及长距离运输;抑制基因沉默;协生和症状表达;种传;姆虫传毒P3(37kDa)与豇豆花叶病毒的32K蛋白Rsvl介导的致死性系统过敏反应激发子;相似影响病毒基因组复制和多聚蛋白加工6K1(6kDa)氨基酸序列有疏水区域与膜结合,参与复制;在PSbMV中决定无毒性CI(70kDa核苷酸结合基序,与解旋酶复制RMA解旋酶)有();细胞间运动;症状产相似生6K2(5.5kDa)氨基酸序列有疏水区域有膜结合功能,参与病毒基因组的复制;参与病毒的系统移动VPg(NIa49kDa)病毒基因组连接蛋白,可连接与真核翻译起始因子eIFiso4E和eIF4E()’到病毒基因组的5端互作;影响病毒基因组扩增;参与细胞间移动和长距离移动:-rNIaPo(27.7kDa)有典型的丝氨酸蛋白酶的氨介导抗性的激发子;具有蛋白酶活,以顺式及反式方式起作用基酸和核定位信号性;结合RNA;有DNase活性Nib(58kDa)有RdR基序和核定位信号有依赖于RNA的RNA聚合酶活性,参与p病毒基因组的复制CP-(2840kDa)有DAG基序基因组扩增;RNA衣壳化;蚜虫传播;细胞间及长距离运输7 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病原病毒分子生物学的研究2W1目前影响范围最广[]、研究最为深入的侵染淮山药的病毒是。主要包括淮山『%药花叶病毒气淮山药温和花叶病毒YMMV)、日本淮山药花34[]YMV)-v,D/叶病毒/n?J、薯蕷绿带花叶病毒(cwcoreagreenftanJ/ng...-m(Mflzcv/ms,DGBMV)、尼曰利亚淮山药花叶病毒(A^erfa?wnmoa?cWmy,YVN)、薯j35][-D/cw截绿带病毒(■D/cwcomzree?Z>、三裂叶Srg>an<ii7gWmy,DGBV)薯葡病毒(corea^a_potyvirus,DTV)参署环斑病毒(Z)zcwcoreaa/ator/?g/woft/eWms,DARMV)和灌丛薯葡'29[]to-病毒(■Dzcwcoreat/w/nerum/w^v/ms,DDV)(表13)。YMV是研究最为清楚的侵染淮山药的病毒,自1979年在科特迪瓦被首次报道侵染黄独,32373839’][’]随后发现该病毒广泛侵染非洲的白薯蓣。YMV也侵染其它淮山药种类。YMV的接种一40[]条件。,,、宿主范围和些病毒特性也已经研究得较为清楚该病毒核酸是ssRNA长9608bp包含1个ORF,编码1个包含3103个氨基酸(aminoacHaa)的多聚蛋白,分子量为350915Da。YMV的寄主范围比较窄,仅包括若干种薯葡和烟草中的本氏烟草(Mcortana6e/i決am/a/ia)和32’41cotona]麦格隆息丰烟(Mwega/as7>Ao?)。该病毒可以通过机械摩擦、樹虫及无性繁殖传播。可观察到感染YMV的淮山药表现明显症状。根据该病毒与单克隆抗体的Westernblot分析结果37显示[]YMV的科特迪瓦,YMV分离物被分为两个血清组和四个亚组。分离物的完整核苷酸序42[],尸卿Wms的序,YMV存在Po列己经公布和其它列相比?yWn?的共有基序特征,即YMV424339’’凡_[][/腳YMV分离物之间的遗传变是。有报道将异性很高归因于重组事件和变异累积44一]。YMV分离物的遗传变异研究表明,个YMV分离物的DAG盒的突变导致其失去了传播能45一[]力,有力地证明了这病毒分离物只含封慰1无性繁殖传播。YMMV可导致淮山药叶片出现轻度花叶和斑驳症状。该病毒最初被Odu等人命名为淮山药46[]病毒1(少amWmyl,YV1),随后又被命名为参薯病毒£>hcomzatoflof>w,DAV)(p(vv47[]一48]MumSea■[。ford和l首次提供分子生物学证据证明YMMV是P〇i^v/ms的个新种,它的33]CP蛋d的核酸序列显不它与YMV和JYMV存在显著差异cracc/vora。该病毒通过丑姆(冲Ms492944833f][’[]Ko[]ch.)'亚汧传播。在非洲丨和大洋洲都有报道YMMV侵染参薯,认为是继YMV5[之后在淮山药上第二大流行的病毒lB〇usalem等在力_比和南美洲也检测到YMMV的存在,分子特征分析显示来自于哥伦比亚、马提尼克和巴布亚新几内亚岛的不同分离物之间存在显著的分子多样性。'1974年,JYMY首次在日本的日本薯葡(Z);cw(:orefl7如續Thunb.)上被分离,被报道为51一’一]YMV的[,975,A1个分离株。该病毒含条ssRNA7bp不包括3端的poly,包含个(),aa组成的多聚蛋白356793Da。ORF编码1个3130,分子量为感染该病毒的植株出现花叶和MV侵染的症状YMVYMV的科特绿脉斑症状,类似于被Y,但是J和迪瓦分离物序列比较结果3442一[,],JYM显示二者存在显著差异V是个新种。该病毒己经严重影响了日本淮山药8 广西大学博士学位论文中国淮山巧病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究一个导致轻微症状或无症状的的种植。Fuji等人发现JYMV的弱毒株并发布其完整的基因组核5211苷酸序列,研究还显示其可用于交叉保护植株免受强毒株的侵染,以期减轻该病毒对淮山药产业的危害。户吵咖狀的研究非常有限一一早期对侵染淮山药的,同是研究个病毒,麵究人员只是观一一察了症状,,些研究人员测试了不同的宿主范围些研究人员贝吩离并鉴定该病毒。但是这纷开的研究容易导致误解,无法进行正确的分类。例如,日本首先在1974年报道侵染日本薯5111蕷造成花叶和绿色镶脉症状的病毒属于凡奶,认为其与在尼曰利亚Nieria)的白薯蓣沙咖(g32[]上发现的YMV非常相似。但是,通过比较它们的的核苷酸序列和基因组特征,将其确定为34531[】]JYMV。DARMV和CYNMV侵染淮山药后也表现出非常相似的症状,但它们分别属于Potyvirus^lMacluravirus〇1.2.1.2柘?^毒属病毒Mac■/wraWms核酸为正义ssRNA,约8kb,比Po/yv/rws的基因组略小,其典型的基因组结-构与尸的基因组结构类似,但是无P1蛋012)。(图该属病毒由蚜虫以非持久方式54[]传播,但是发现缺失参与蚜虫传播的保守的氨基酸基序的DAG或DTG。该属病毒只有柘橙花叶病毒和水仙潜隐病毒的研究较为清楚,其中柘橙花叶病毒的寄主范围很窄,目前发现其一只能侵染5个双子叶植物科中的17种植物,茄科和藜科的些草本寄主容易感病,但是许多寄一[24]主仅表现出轻度症状或隐症,而水仙潜隐病毒可以侵染茄科和苋科的些植物。柘橙花叶病毒具有中等程度的免疫原性,与其他线形病毒如麝香石竹潜隐病毒属和马铃薯Y病毒属的病毒无明确的血清学关系。水仙潜隐病毒的病毒粒子形态及其他特性与麝香石竹潜隐病毒属的24[]14病毒较为类似,但与种该属病毒无明确的血清学关系。在细胞病理方面,有研究报道感染柘橙花叶病毒的寄主植物细胞在光镜下可见无定形的细胞质内含体。而在电镜下观察可见^4]柱状的细胞质内含体,横切面上可见众多薄片组成的风轮状体。55][目前已报道的CYNMV也是该属成员,但是由于病毒形态和蚜虫传播能力,CYNMV长一直被认为是香石竹潜隐病毒属期以来(Car/ov/mO成员,直到CYNMV基因组的测序结果一■4^472%表明,其CP的氨基酸与Mac/wrav/ms的氨基酸致性为1.3.,但与的氛基酸6一[21’5]6-致性仅为.022.9%,才将CYNMV归为成员。1PIPO7K9KI_■,’,—丨人—VPGHC-PPVN-laProiAn5ro3ClPgNbCP3-2图1柘橙病毒属病毒属病毒的基因组结构-iureii(tMlFg12OrganzatonofiQacuravirusenomeg9 班啬米_I钭鹚閊W左穿避丑茚§,t啉1|秭韬遨1us叙弇?奪8植,擊唞蓉氽?截貂ncIfii蘇胡&辑窗滅H3截_wS翠避,截?鹚驿柃?Yy,?鞍8举#迆,|^细邂pI截奪MH繫截箄靼箄蕻*箄軍?r苌把运截nNt:钯奪运艇^运靼运忘0暴运奪兵4W菊靼这蜇,彔铟锻联i左彰t,,匡,轮羞珈婼制靼,s靼链5璇圮盏哳鸯嗞£扣,亡s截職崁跦镟-酜,隊,联闵£茑盏s§,盏嵌长按聆扣瓶夂赋^轮璇篓彐宾璇,蜜锴撇左0银氐娲,-,,銻0,,团州古祖4¥"蕺銻古0赋脏择运0^截^稃撇^桴狯s撇^g商鄱要屮,lr_糊頰,擗稱叫,,囤铷吻__唪掛頫,,_,^猓-要_頫要吳左,齡£12耷迟挪W魏叫拽/瞾1,画ist、鄭稃,蘅,E酕,,缺要概W,,頫将途_,IE瓣要要齡挪,峨茬擴志锊左川扣允頫州驴n,,挪§g,联,搣_挪袒要頫t钟lgfr罢瞾,t盔迟H:瓣联翠_?,tn蕻0-Ins幽锊tn1S0洚讲阇fr带趾雜11m挪择¥g聒飧,sJ¥,,_#餱#2,蹈頫^#l瓣挪_挪,s雜匀碎t概,w州,鲠振联_頫總w蟀頫,挪0fr左瓣_ioI黎瓣頫m锊0E頫?錤tM0皿-mm^翻MJl_雜挪#m30f>(I^AoA0#银#^Av0l0ffsm#)a0^l(m0(遯(C(0A概fA#(AC¥A¥—sA挪(lsKAMm2卻mWa-a0tNoo¥_WWMAAvA&2#§Ar¥aA0a0a錤QwOISAW)))))))))Jm00IK^H偃00II规 赃与?运p钭膽s步CN-*揠你耻呎w輞?哝体-*c8oi:眾彔^轫I伥I伥.s玻I1Im3|Z迪o,IaE0EEIsnI_e?IJ?志M志0茬志#0裝雕#雕0###xi.ts時遯塍塍媒候候f>裝AAA0AAa#p_挪_0__挪遯3兵^J.2电-l#敢敛銥#翕瑯u糸0lrirrir坷^tirCIr啡堤6"J0琳i>..t?;i0A坧uo8ilo1M着sU8iciE-——e0 ̄0l裝oioU80i0qi?£ss9S99CNSeI:按c/a£ooslf1,l9l4w一K呆>彐?^半桐^候^解^解半艉伥半%n餵“i&夺cnJO^>Jo3bPbSJIPPpPlAsB.s0 ̄Is0JPS99v9^l9m泛-9泉泵3 ̄IP ̄0OOqX2 ̄0p ̄b0 ̄uS1伥p>0-s"AS张uS:9css9:S<ri:..:::::o:gd::d:d呆尿--tAA*JAdfeAddA3aI3llLlw&QnLiTaHsQT长伥.s1allpIl1IPo/Q.^,p-JFr^^gc^rr街u,HJoc鉍Zc/EE雔J0oa祕l厂l|ta,spn-趔iJg盼5/r2,Qps苌f路3辑f:-^阁&祕,dl_s3e佃,趔Q-B£.凶,碎uS9茕?^uSl?TsoU纰l:麻dJ_-A,&[n,UU佬uOIl杉,码件mUB/3sC农0Br,E,&S^AJuIO--爾rBraJ#锊?fe,t跑Hs^SUOB茕llacn张飧^阖祕闽祕tnk^-mPUSiPn^wBPaQUIHiJA#-BaIlAl(KQHA^:?#tff念(ap腰A&妇svaHs0亡)I:uf孙faul桴讎书u00嘛.2o韬(遯(l^蔣((A膝AfB猞(ASIJA¥(-5|AAM頫MuaJ'Z-卻imaHNq谅NSL瓣^mMoVLAq#§彐AaqaAr0aa匀DvB))X遯0蚝)m)0)川)规)| 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病凰病毒分子生物学的研究1..22花椰菜花叶病毒科杆状DNA病毒属病毒5—的病毒粒子是环状dsDNA基因组被包裹在无碰的杆棚粒。核酸大小通常 ̄x?为7.38,毒粒大小通常为130。.0kb2930nm常见的为内部褐白斑杆状病毒(Internalbrownspotbadlliformvirus,JBSV)和参辜杆毒(Dioscoreaalatabacilhformvirus,57]DaBV),咖aBV更为常见,最常侵染宿主是参嘗〇DaBV可被相橘粉蚁(i^moco謂d时5757[]R[]DBVisso)传播或摩擦接种。DaBV侵染参薯导致严重的叶子扭曲、皱缩和斑驳。a尼日利亚分离物(Nigerian)和DaBV贝宁分离物(Benin)的全基因组核苷酸序列已经进行分析5859’一[]二者的致性为,基因组大小分别为7.4kb和7.26kb,核苷酸61.9%。与已经猶的__Badnavirus^tb>这两个病毒均与口J口』肿枝病毒(Cocoaswollenshootvirus,CSSV)的核苷859一^,]酸致性最高。DaBV和DsBV分别拥有3个和4个ORFs。这两个病毒的ORF3预测的氨基58,一[酸序列编码个假定的多聚蛋白,包含的若干保守基序特征'淮山药的内部一褐白斑病被认为是由于SfldwaWms与种/混合感染导致,最初是在参薯发现并报道,5859’[]之后在黄独±也发现了相同情况。5—的核酸序列和血清学水平的变异性非常大,该属内在不同种之间的病毒基因组的核苷酸序列相似性非常低一,甚至同个种的不同病毒分nan离物之间的基因组的核苷酸序列相似性也非常低,如GeBk中公布的香蕉杆状DNA病毒属。病毒的6个不同分离物,不仅基因组长度相差近500bp,它们的核苷酸序列变异也超过30%洳―已在甘蔗、香蕉、芋头、柑桔、薯蓣和可可树等多种热带和亚热带的经济作物上、被发现,其弓丨起的症状包括花叶黄化、条状褪绿、褪绿斑驳、脉明、叶缘卷曲、肿瘤、脉坏死、叶斑和落叶等。肋办Mms主要通过带毒的寄主植物的无性繁殖材料进行传播,传播60]方式包括嫁接和汁液接种,传毒的昆虫介体主要为粉阶,有触可通过姆虫进行传播(见表14)。的基因组由3个ORF(ORF-。1、ORF2和ORF3)组成(见图13)的ORFI和ORFII的编码产物的功能尚不清楚。目前己发现ORFI编码的蛋白与未成熟的病61一]ORFn则与成。ORFm毒颗粒相关,而熟和未成熟的病毒颗粒均相关的编码产物包括--^cseinerichzincfinerlikbindindomain个富含半胱氨酸的铸指t^RNA^合结构域(ytgeRNAg,CYS)、天冬氨酸蛋白酶(asparticprotease,PR)、病毒逆转录酶(reversetranscriptase,RT)、核糖核酸酶(ribonuclease)和RNaseH(RH),所有已鉴定的花椰菜花叶病毒科的成员麵6263[>]。PCR有这些结构域病毒的基因组变异很大,所以大多数检测引物是根据12 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病厩病毒分子生物本的研究64[]RNAORFm中的相对保守的区域设计的,这些区域主要是转运结合域(_Abinding6566’[]doma)RHRT-(13)in、和见图。0RF1Z0RF2::rj/\CYSRB图的基因组结构Met:假定移动域;RB:RNA结合基序;CYS:半胱氨酸保守区;PR:天冬氨酸蛋白酶;RT:逆转录酶;RH:核糖核酸酶H-nFure1rizationoBadnavirusenomeig3OgafgMET:putativemovementdomain);RB:RNAbindingmotif;CYS:cysteinconservedregion;PR:aspartateprotease;RT:reversetranscriptase;RH:RNaseH1.2.3雀麦花叶病毒科黄瓜花叶病毒属病毒CMV属于雀麦花叶病毒科黄瓜花叶病毒属,,等轴病毒粒子直径约30nm是经济上最重67一至少包括[]8365。CMV要的植物病毒之,具有很宽的宿主范围,5个科个属的植物已经被67][报道广泛侵染全球范围内的植物种类,但是在淮山药病毒的研究中,只有报道称在瓜德罗普岛(Guadeloupe)、科特迪瓦和尼日利亚种植的参薯上发现了CMV的侵染,其它地方未见29,36,68CMV侵染淮山药的报道[]。该病毒通过多种蚜虫以非持久性的方式或通过机械摩擦在大'ML.范围的寄主植物中高效传播,特别是在黄瓜(Cwcwm/uaftvw)、粘毛烟草(cor/araL.)、本氏烟(A^和藜麦(0^〇/76^/_(7以職7Willd.)症状尤其显著(见)RNA病毒,病毒基因组由RNA1、RNA2和RNA三条ssRNA构成表14。该病毒是正义313 广西大学博士举位论文中圔淮山苗病毒病调查、诊断和病屎病毒分子生物举的研究697)69([’][]一3.4诎31*.2吐。,大小分别为、和2个亚基因组外壳蛋白信使1^0^4)被认7172[’]为会随着RNA3的复制而产生。根据血清学关系、外壳蛋白的肽指纹图谱、核酸杂交和67一CMV分为两],。这两个亚组在血清学上密切相关核苷酸致性,将个主要亚组即I和tf,与73[]一多克隆抗体会发生交叉反应。些针对CP蛋白亚组I和n的单克隆抗体才能够将这两个亚组7374一[’]。区分开来,暗示每个亚组存在独特的表位最近,CMV分离物的系统进化分析进步将576[7,][77]亚群I细分为IA和IB。这些高度的变异存在可以解释为何其拥有广泛的寄主范围。而且,该病毒对植株造成的影响可以从无症状到死亡。1.2.4未分类的淮山药病毒来自淮山药的很多病毒至今没有分类是因为将它们作为单独株系的地位进行的研究尚未。urse结束,或者因为它们与先前在淮山药上发现的病毒相同如Coy首次在巴巴多斯的参薯上"发现的一IBSV,这可能是h新的成员,包括非包膜杆状的病毒粒子,长130nm,8’卩_]。宽29nm,导致感染的植物出现褐色斑点薯賴斑驳病毒CDzasoweawoft/ev!n?DMoV),29一豆花叶病毒属[]一可能是个II(CbwoWms)成员,DDV可能是个Pov/ms成员。另外,^y还包括在波多黎各(PuertoRico)首次报道的在墨西哥菊叶薯蓣和多花薯蓣上发现的薯蓣潜隐79一[]>teWms ̄病毒DZascomz/aten?vzw,DLV,该病毒拥有尸oc(4)。DLV()的些特征见表18()[]基因组为ssRNA,线状,无包膜,病毒粒子弯曲,长445nm,宽llnm。Fukumoto和TochihamC_^于1978年在曰本的长薯截上首次发现了中国淮山药坏死花叶病毒(/HVieseyam?ecroftc/nosc81[]一£¥>^¥-><抑>1?),该1366〇11111。,在日本流行广泛线状病毒粒子大小约为12另,个尚未分类的DTV在瓜德罗普岛的三裂叶薯蓣上首次被发现并报道,该病毒感染导致宿主表现出花叶、褪绿斑驳、脉带和叶片变形等症状。该病毒可以通过棉蚜(却to职卿种)以非持久性的方式传播,并且也可以通过机械摩擦接种进行传播14 £-s-试愁宇s5^#吳0#?截韜截糾-傘£^^恶茧--yS避1楚0繼蠢s4欠-f0螗l^^00徵徵避^9靼髮0s0寒箄x.妇fl一1-e娄^^^S##画*:瑠rf藤I,.其f电锻sf竭彰隹^镝舾5钼■¥"^£_?砌S職_踩sk踩IJJ?時诔,堰州,,,3辑烂峰锃^左钜舾m恶霞礙抝^洋闳■_按「r彐夂,0r^沢s|頃響1^您古左m盏狀洋耕If寐谳左,s&姊HS5,昼nu#3ig3:°目g°頫M1S_7、,#1_t琳<^?M00?迨,SwIMS蚺,?H¥,肆83葚a翠慑Ut,tP舾_要闺iUB,,迟铷浮ngW州揠頫<,煜?鯽跸,辄,縣猛蓝?化录浮rji昼雜势錄锄4K祕^浮§遯M左,#屮頫遯頫x,_??頫左浮1t:挪蕻说1l0+/cr一.,,:1P],,B揠-,頫lt議慑I挪振?mt萬e吳^挪左s翁州概缴-0*m^责遯A,靼,,,乖V頫N目锭獅》頫商挪X皿换J鹆涛_5UOiS°fe-CS舷锭sC抝3遯罢P彐?Vv?§Nz裝IJU^^aa(保(( ̄>i^^A^|-叮..A}.>mls&fcmfc>I"u.mBmJSrsQaa1I^鉀莒QUra))W锵§挪鹆弒)^裏)l ?辦-0穿赃^§岧#耘弈翁讲偃^fr体擗fr-^£-a8rt:w/峰l^!£sll竑0l職/?/r^ltB讎ra###0遯揠s遯?#遯0?-*V遯V堰Vi±*NMx4NS#a械a妹a/挪稃糸0-^肆^*误*S0^4K¥lM0ife诨t样s碘,^?0011S1寸- ̄0鹤§诲按-半伥彐sn1租*供0£sii铷^iHs^oooo6frMmfszcc?:l¥il^^sl-桐候r靼0ol1fltwi;n*經l堰*sS运域l1_^^U1铤00枨?p解*-u22-遯B芸-刼irms-/u择/s半半划撕^Wl/00辄aI.蔣*jl#赌l/:<lt^遯UjMi:§f9膽^铤u)-Sa?5X0X^o峨aB0lB腰3S-踩loP ̄Pp遯0o5ooe<r>0#-s5s0 ̄b90ss-s迷#p£l7zaIfr.r<;.:^女^:%:a:.2髮SdA>#W,lIfe3Q#适bIt:Psl自lHan"sA遯tMuj浓no;^志職a.^duI蕾虼fi雜^^oM,¥1候a^lVj3?o!#£S!_E>Ns珑s■-^£-EH,Exo^ll猓Trts§-柜<&c癍0J^坩i"c/lI^!ta农?Idsp飧麻,廉0毗lw^爾EJ,fl,,避Ma£谅彐mWaJ麻匡街街S长sSut^a.H热(璉p获3#n度瑯f;u餚uf(#撕oZ"od帐Q(媒塍l)((激寸l#(A趣(tlA_)gAiAaA3w總3sdglmN&ir?2Slaaa擴arU頫B)))))懈X遯—挪辄一- 广西大学博士学位论文中国淮山充病毒病调查、徐断和病康病毒分子生物学的研究13.病毒检测技术快速准确检测淮山药病毒在病害管理和控制中极其重要,但是目前在淮山药病毒检测方一面还存在系列问题。由于环境因素改变引起的症状变异,不同的淮山药品种或变种的症状。多样性导致淮山药病毒的田间诊断不可靠养分缺乏弓,丨起的症状也容易与病毒病症状混淆8283’[]而且有些无症状的植株也可能存在病毒病。免疫学、生物技柳分子生物学已经在快速、灵敏和特异性检测植物病毒领域起t极其重要的作用。1.3.1生物学检测技术传统的的植物病毒检测方法主要有鉴别寄主反应或指示植物法,还有交叉保护,通过84[]透射电镜观察胞浆内包涵体和病毒粒子等检测方法。这些方法在许多及其株系的划分中起到了显著作用,淮山药花叶病毒(YMV)分离株就是通过症状、免疫印迹37[]一法和单克隆抗体进行鉴定的。自然宿主上的症状被认为与在系列指示植物经机械摩擦85[]接种或介体传播接种后的症状相似〇虽然这些方法仍然有效,特别是在新病毒研究的初步阶段是非常有用的,但是采用这些方法的研究效報低,不适合用于病毒的常规鉴定和检测。132电..镜检测技术一。遞电子显微镜常用于植物病毒颗粒的观察,并已开发出了系列的病毒粒子检测方法8657A[][]lmeida和Howatson首先开发了叶浸技术,随后被广泛用于淮山药病毒的表征分析。该方法快速,以观察粗组织提取物为基础,特别适合于细长病毒颗粒的检测。不便之处是汁液成分可能千扰病毒粒子与铜网的结合。采用改良的叶浸法和纯化的病毒浓缩液(clarifiedviral87[]concentrateCVC。,)用于电镜观察可以获得较好的效果88mmun[]免疫电镜(IoSpecialElectronicMicroscope,ISEM)观察最早是由Derrick提出,已广泛应用于植物病毒学研究。ISEM结合血清学检测和电子显微镜的可视化功能的特异性,46一[]可以检测出低浓度的淮山药病毒。ISEM也可以使用混合抗血清进行检测,这对于在同个。样本中检测多个病毒是非常有用的在这种技术中,首先在铜网上涂覆特异性抗体,经过温一育和洗漆后,段时间使病毒与抗体结合,然后再次洗漆和染色,,将粗汁液加到铜网上孵育观察。17 广西大学博士学位论文中国浪山药病毒?病调查、诊断和病厫病毒分子生物学的研究1.33免疫检测技术.免疫分析是检测和监控病毒病害的有用工具,特别是用于常规检测,利用动物产生的抗体来捕获感兴趣的病毒。在植物病毒检测中应用最为广泛的是酶联免疫吸附测定89[](Enz-ymelinkedimmunosorbentassay,ELISA)技术,具有灵敏度高、操作简单、重现。性和通用性好的优点,可用于筛查大规模样本彳吏用ELISA法作为病毒血清学检测方法时,9()[]采用多克隆抗体可以提高病毒检测的灵敏度。随着单克隆抗体的开发,使得病毒检测更为9192[,]特异和灵敏。ELISA的原理是将提取的汁液中的抗原(通常为病毒)包被到聚苯乙烯或聚乙烯板的孔的表面上,漂洗未结合的物质,留下感兴趣的特异性抗原,然后用酶職体检测抗原。ELISA93[]主要是用来确认是否存在病毒蛋白和估计病毒蛋白在植物汁液中的浓度。目前已经开发出许多ELISA方法,主要分为两种类型。直接ELISA过程是利用酶标记的特异性抗体直接检测抗EL一ISA先用原,而间接个特异性的抗体与抗原作用,然后用酶标记的抗免疫球蛋白抗体针对与抗原作用的特异性抗体进行免疫检测。虽然ELISA做为检测病毒的常规工具有许多优但也有一些局限性点,如高效、高通量、易操作等:首先,ELISA需要高质量的抗血;清才能实现高灵敏及高特异性,而抗血清的制备需要进行病毒CP蛋白或其它蛋白纯化等漫长的过程,与PCR检测对比,成本也更高,尤其是单克隆抗体的制备成本更高。其次,由于CP蛋白在同一属中的病毒非常保守,ELISA不能鉴定病毒的种间差异。再次,ELISA、在检测病原病毒的过程中,不能同时检测细菌真菌或线虫等其它病原。om-在此基础上还发展了斑点免疫结合测定法(Dtenzyelinkedimmunosorbentassay,94[]-ELDotISA)用于植物病毒检测。其技术特点是直接将组织印迹在膜上,既保持了ELISA的特异性和灵敏度,又简化了操作程序,能够简单快速高效地检测病毒,检测结果能直观地显示出病毒感染的部位,而且印迹在PVDF膜或硝酸纤维素膜上的样本可以保存较长时间,特别适用于大规模普查植物病毒。1.3.4基于核酸的检测技术随着分子生物学技术的进步,采用分子生物方法进行植物病毒检测更为普遍,该方法通过检测病毒核酸来证实病毒的存在,具有着极高的灵敏度和特异性,操作方便,检测速度快。与ELISA比较,基于核酸的检测技术更具有耗时短、可同时检测细菌、真菌或其它虫类病原以及成本低等优点。最常见的基于核酸的检测方法是聚合酶链式反应(PCR)-PCR)。该或反转录聚合酶链式反应(RT技术也可以结合血清学检测方法,例如免疫捕获18 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病屎病毒分子生物学的研究48’95【]-ICPCR方法PCR检测的高灵敏性和血清学的快速简便的,具有优点,使植物病毒的检测更为方便-。其技术原理是先用抗体来捕获病毒,然后再进行PCR或RTPCR检测。该方法不但节省了核酸提取的时间和成本,还能去除抑制物质而改善检测环境,保证高特异性和I--,比常规的核酸检测方法更为简便、可靠C灵敏度,应用前景广大。目前已成功采用RTPCR48[]YMV和YMMV-检测J等淮山药病毒。近些年来,环媒等温扩增技术(LoopmediatedIsothermalAmlification,LAMP)也被广泛应用于病毒检测领域p。其工作原理是针对DNA靶序列的6个区域设计4条特异性的检测引物(两条内引物和两条外引物),在链置换DNA°me ̄聚合酶Bst酶(BacillusstearothermohilusDNAolrase)的作用下65ppy,于60Cf亘温环境1.5h)中可以短时间(内实现对目的DNA片段的高效率扩增,然后通过琼脂糖凝胶电泳检测;或直接向LAMP扩增产物中加入双链DNA染料(如SYBRGreenI)可使有扩增反应的反应液呈翠绿色,而无扩增反应的反应液呈暗红色;也可以通过观察扩增副产物焦磷酸镁白色沉淀的量来判断LAMP反应(使用肉眼观察或浊度仪检测)。由于植物病毒复合侵染现象比一较普遍,多重PCR技术逐渐显露出其优势,应用该项技术可以在同个反应中检测出多种病96[]毒。而采用荧光定量PCR技术来检测病毒,不但灵敏度更高,而且可以对病毒进行定量%实时荧光定量PCR技术(qPCR)通过引入荧光化学物质使PCR扩增反应产物随循环数增加而信号强度等比例增加,可通过荧光信号强度变化监测产物量的变化,从而可以对起始模板进行定性和定量分析,通过溶解曲线可以分析扩增产物的特异性,不需要进行电泳检测,因此具有比常规PCR技术更为灵敏、准确和快速的特点,而且可以实现定量分析,被广泛应用一于病毒检测和其他科学研究一。基于核酸的检测技术还有个优点就是扩增产物可以用于进步的分子水平研究-,如RFLP分析或测序。但是采用PCR或RTPCR技术需要掌握待检病毒的一序列,从而设计特异性的检测引物。在病毒检测方面面临的个重大挑战就是某些病毒变异4598非常快[,],有丰富的遗传多样性,基于特异性引物进行植物病毒检测就有可能导致产生假阴性的结果。因此有必要加强对植物病毒的遗传多样性分析,不断更新病毒检测引物和抗血清,以保证病毒检测结果的可靠性。目前解决此类问题的主要技术手段是在进行病毒遗传多样性分析的基础上设计简并引物用于该种病毒的检测。1..35双链RNA分析技术-在检测未知病毒方面可以采用双链RNA(DoublestrandedRNA,dsRNA)分析技术,其技术原理是RNA病毒和类病毒等在植物体内会形成ssRNA的特异复制中间型,即dsRNA。而通常植物体内不存在dsRNA,因此,可用该技术进行植物病毒的检测和19 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调釜、诊断和病康病毒分子生物学的研究99[]RNA还可用诊断。提取到的ds于病毒的抗血清制备或分子克隆,通过序列测定可以分析新病毒的分子特征。该技术的缺陷是不能用于DNA病毒和负链RNA病毒的检测。1.3.6深度测序技术近几年发展起来的深度测序技术不但可以用于基因组和转录组测序,还可以用来检041(XM[]测病毒甚至发现新的病毒。目前利用该技术已经发现多种新的病毒。由于深度测上可以对样本中的病毒一序技术不依赖于已知病毒的信息,理论网打尽,弥补了ELISA和PCR等技术只能检测已知病毒的局限性,在病毒检测方面特别适合用于高通量检测病毒种类和发现新的病毒。特别是小RNA深度测序技术(smallRNAdeepsequencing)在新病毒的鉴定方面发挥着重要的作用。JanF.Kreuze等通过小RNA深度测序的方法,在甘薯上不但能同时鉴定两个常见的侵染甘薯的甘薯羽状斑驳病毒(SWee炉oteto<SWe〇加〇c/f/moft/eWms,SPFMV)和甘薯褪绿矮化病毒(吨i/oroc,SPCSV)玉米线条病毒属(Mwfrev/ms)和杆状DNA病毒,还鉴定到了两个分别属于_属的新病毒。QingfaWu等则通过小RNA深度测序分别在果蝇、蚊子100[]和线虫细胞中共发现了五种病毒。一uenaner测xneraisecin早期的Sg序成本高,直到下代测序技术(Neteton,NGS)gqg-的出现,如Roche的GSFLX基因组测序仪,使得大规模宏基因组研究变得现实且更有价值。通过宏基因组方法诊断植物病毒使克服传统方法预测病原的困难成为可能,可以一。RNA检测来自于受感染植物的包括任何个存在的病原序列提取受感染植物,利用随机引物合成cDNA,通过测序获得包括潜在病原的所有序列。RNA病毒、类病毒以及激活复制DNA病毒的RNA产物都能够被直接测序。该方法能获得样本中包括植物菌原体、细菌或真菌的mRNA和rRNA序列。序列处理通常需要如下步骤:首先,去除低质量序列和引物序列;将序列进行组装并与已知数据库进行比对,通常使用Blastn或Blastx方法;最后,在有效数据库中比对到相似序列的存在。理论上,序列相似性搜索类似于体外的核酸杂交实验,如基于微阵列分析的诊断,然而存在于公众数据库的序列要比微阵列多得多,因而比对的灵敏性更高。而且,相似序列的搜索力度要远远胜于体外杂交。,不需要像微阵列的搜索还需要建立强大的统计学工作基础Ian等人通过GS-FLX基因组测序仪成功鉴定了侵染番茄的PeMV病毒p,通过测序获得的65691reads中,有13183reads为病毒片段,与已经公布的序列比对后,能够组装出〇一该病毒的基因组全长序列[除去ply(A)为6382nt]。而另个来自于山麦冬的病毒,此前20 广西大学博士学位论文中圔灌山苗病毒病调查诊断和病尿病毒分子生物学的研究、7一1146reads95reads并未鉴定过,在测序获得的中,发现有290与公布的病毒序列具有定的相似性,以此为基础进行组装,在完全未知该病毒序列的情况下,获得该病毒三组分的基因组全长。新鉴定的病毒与CMV病毒抗体在ELISA检测中的反应非常弱。聚类分Wm一析发现该病毒与来自于雀麦花叶病毒科a/cwmoy的la复制酶同源性聚为组,序列比v一对发现与番煎不孕病毒(romatoospermy/ms,TAV)的核酸致性为59.04%。将该病一系列指示宿主植物毒纯化后摩擦接种于,其宿主范围与TAV宿主范围最为相似,但是’V产生的局cM/mm在黄瓜产生的症状与TA部褪绿小斑不同,与G/ms的其它成员在黄瓜1()1[]产生的症状差异更大,故将该病毒命名为蛇鞭菊科温和斑驳病毒,归为CMCMmoWms。1.4本研究目的及意义植物的病毒性病害是仅次于真菌病害的第二大病害,淮山药病毒病严重制约淮山药的生。产,造成重大经济损失而农民側感染病毒的薯块或引进未检疫的种质进行种植,导致淮2932,[]山药病毒的更广泛的流行。我国对淮山药病毒病的研究较少,特别是对于淮山药病毒病的发病率以及地理分布信息,在国内还是空白。因此,研究中国淮山药病毒病的发生流行情。况,并对病原病毒鉴定,具有重要的理论意义和现实意义本研究是农业部公益性行业研究专项一《中国淮山药高效栽培技术与示范》的个重要组成部分,重点研究淮山药的病毒性病。201020121害及其检测和控制方法本研究拟在年至年间,()调查广西、江西、河南、山东和江苏等淮山药主产区的病毒病发生情况;(2)采集淮山药样本,选取部分病毒病症状明显的样本,采用高通量测序技术对病原病毒进行全面的鉴定及分子特征分析,并分析这些病毒分离物的遗传变异和寄主的品种及地理分布之间的相关性;(3)基于高通量测序结果,制备多种淮-八、1(-(1山药病毒的抗体,并用于數针对中国淮山药病毒的丑1^:孑01、1:111?0和0(^1〇1一。,等检测方法本研究致力于调查中国淮山药病毒病的发生情况,鉴定其病原病毒建立整套针对这些病原病毒的检测方法和控制策略,为在生产中监控和防治淮山药病毒病提供技术支持。21 广西大学博士学位论文中国浪山药病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究第二章中国淮山药病毒病调查及病原病毒鉴定2.1引言世界上对淮山药病毒病的研究主要集中在非洲、日本、南太平洋地区、印度的部分地区和中美洲的加勒比海地区等,中国的淮山药病毒病的研究相对较少。不同病毒侵染、不同品种的淮山药引起的症状各异,包括花叶斑驳、黄化、畸形和坏死等,主要通过。降低叶片的光合作用效率影响块茎的产量和品质受病毒侵染的块茎活力降低,不容易发芽。淮山药生产上常用薯块进行种植,这种无性繁殖的方式容易导致淮山药病毒的积累。常年种植带毒品种可导致淮山药种质退化。国际上已报道的侵染淮山药的病毒主要exWmswcMmov-涉及/W和C/ms(见表11)〇而在106YCNMV11中国报道的侵染淮山药的病毒只有,尚不清楚是否还有其它病毒侵染中国的淮山药,中国的淮山药病毒病发病情况也未见报道。因此,全面调查中国淮山药病毒病的发生情况并鉴定其病原病毒具有重要的意义。病毒检测和鉴定领祿规的技术手贼小RNA深度测其原理是植物可一s以利用小千扰RNA(iRNA)机制干扰植物体内RNA病毒的复制,在这过程中植物体内产D ̄生的icer酶或类Dcer25nt的i酶可以将病毒复制中间体的双链RNA切割产生大小为21_siRNA,通过测定这些siRNA的序列可以获得病毒的序列信息。该方法不依赖于已知病毒序列信息,可以賴物体内的所有病毒进行鉴定。因财论:小RNA深度测雜术对受病毒侵染的淮山药的SmallRNA进行深度测序,通过生物信息学方法决速、全面地鉴定受测的中国的淮山药样本中的与病毒相关的核酸序列信息,以期发现新的侵染淮山药的病原病毒。本章主要阐述中国淮山药种植面积较大的五个省份的主要淮山药产区的病毒病发生情况,以及通过深度测序和常规PCR或RT-PCR鉴定的淮山药病原病毒种类,为淮山药在生产上的病毒病监控和防治提供参考。22 广西大学博士学位论文中国淮山碎病毒病调查、诊断和病雁病毒分子生物羊的研究2.2材料与方法2.2.1田间调査20??本研究分别在10年7月9月、2011年810月和2012年9月对广西、江西、河南、山东(采样地点如图2-)和江苏的淮山药主产地的淮山药的病毒病发生情况进行调查1所示,并采集疑似受病毒侵染的样本进行病原病毒鉴定。田块一田间发病率的调查方法:每个采样地点选取若干进行调查,每个田块代表个一一品种或种田块类型,。每个田块随机选取五个点每个点观察百株样本,分别记载各种症状类型的病株数。K!^m:E图2-1淮山药病毒病调查釆样地点分布图I:广西壮族自治区II:江西II:河IV:山V:江;省;I南省;东省;苏省F--iure21InvestiatonmavrusnftaminthreachgiofiiecinissergpgyIuanxPrII:xProvinIIIHenanPrieIV:nProvnce:GgiovinceJiangiceovncShandoi;;;g;Vi:JangsuProvince23 广西大举博士学位论文中国淮山箱病毒病1W查、诊断和病康病毒分子生物举的研究2.2.2病毒样本的采集每个调査点采集若干疑似病毒病的症状明显的淮山药和无病毒病症状的淮山药叶片或植株、地点、淮山药品种和症状类型等信息,用保鲜袋封装后,分别标记采样时间 ̄放入冰盒。35,,带回实验室进行病原病毒检测将采集的每种症状类型的病株各株在广西大学亚热带农业生物资源保护与利用国家重点实验室的温室进行种植,用以保存毒一。源,以作进步研究2.2J生化及分子生物学试剂复杂植物基因组DNA提取试剂盒(SurePlantDNAKit)、植物RNA提取试剂盒n—x(RNApurePlatKit),SuperRTcDNA^ESTaqMasterMix(^14)?-K-购自康为世纪公司。坤ASTTlCloningit和TranslTl感受态细胞购自全式金公司。柱?Glractionit)。式DNA胶回收试剂盒(E.Z.N.AeExtK购自OMEGA公司质粒DNA小提试剂盒?WEST-B购于天根生化科技有限公司。琼脂糖BIORegularAgaroseG10购自IOWEST公司。??GelRed核酸凝胶染料购自BIOTIUM公司。GeneRulerlOObpDNALadderGenemler、??GeneRu丨erlkbDNALadder和Genemler1kblusDNAladder和T4DNAi^接酶购自p--ThermoScientific公司。SmallRNASamlePreKit(FC10210093)购自Ulumina公司。MinEluteppPCRPurificationKit、QIAuickPCRPurificationKitf口QIAquickGelExtractionKit购自QIAenqg公司。其它普通化学试剂及生化试剂为进口或国产分析纯。2.2.4病毒检测引物使用国际上已经报道的侵染淮山药的病毒的检测引物或根据已有的淮山药相关病毒的序列信息使用PrimerPremier6软件设计引物用于淮山药病毒检测,同时根据淮山药的核酮糖---二/sCOlaresubunitr6cLRTPCR15加氧酶大亚基基因(RuBi)设计引物用于,磷酸羧化酶g,c-验证DNA的质量。引物信息见表21。引物为生工生物工程有限公司或Invitogen公司合成。24 广西大学博士学位论文中国淮〇4苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究-表21本研究用于病毒检测的引物信息T-able21Primersusedforvirusesdetectioninthisstudy*’’引物名称引物序列(5—3)产物大小b(p)检测病毒参考文献Badna-FParaaBtccittiitiaaygcicc579adnavirus107gygg[]Badna-RPccayttrcaiacisciccccaiccDBV-Ftcggggtgaaaaacgcgcctag548DaBV本研究DBV-RccaccaatggttcacaaccatctatcgPAtaatattacckgwkgvccsc500Geminiviridae[108]PBatggacyttrcawbccttcacggYYSMV-FcaYYtcatgcggaaggcgtgtg446SMV本研究YYSMV-RcattattcttcaaaatagggggggggCIForggiwigtiggiwsiggiaartciac700Potyvirus[109]CIRevaciccrttytcdatdatrttigtigc-YMVFatccattacaata586YMV48ggggggg[]-YMVRtggtcctccgccacatcaaaYMMV-Fggcacacatgcaaatgaargc262YMMV48[]YMMV-Rcaccatgtagagtgaacaag-24JYMVFttatataattcaatcaa1JYMV110gggg[]JYMV-Rgtcatatacctttttcggg-FtacaccaCYNMVatggaycggtcgtgc1098CYNMV本研究CYNMV-Rcctctatggaacaggawaarttycge-YCNMVFaatttacaccact170YCNMV本研究ggggggggYCNMV-RattctactcaggggggggggYVX-FccaYVXggtccatcagtcacttct692本研究YVX-RctaatctaccagcagtcacttcataYLV-Fagtgccacttactcctccgcctg158YLV本研究-YLVRcgtccttgtaccaaccgccgtgBBWWSSPgtbtcdagtgctytdgaagg322BBWV111[]BBWVKMRMtdwdccatcvagickcattttgBBWV-FaaaBBWVtaggatgtttatctgtgggtgg1795本研究BBWV-Rtccacccttctgtccacggg-CMVRgcctaactatacaa487CMV112gggggg[]CMV-FtatataaaactttttccggggggrbcL-Fgacaactttactgat515内参基因本研究ggggggg-RrbcLtcccttatttcccttttcgggg*========简并引物代码:RAGYCTKGTSGCMACWATBGCTVAGC,;,;,:,;,;,;,,;,,;=AGT=A==neD;HCT;NAGCT;1inosi,,,,,,,25 广西大学博士学位论文中国淮山药病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究2.2.5淮山药总DNA的提取使用复杂植物基因组DNA提取试剂盒提取淮山药叶片总DNA,操作步骤参考说明:书,略有改动剪取淮山药新鲜叶片约100mg,加入液氮充分研磨;立即将研磨后的粉末收集到1.5mL离心管中,加入400jiLBuferGFl和4fiLRnaseA(100mg/mL),涡旋振荡lmin使其充分裂° ̄解65(:11111111^^孵育1〇,期间涡旋混3;3060?2,混勻,冰浴511細;于勻2次加入1吣000?x立即充分于14im(20000)离心1〇min;吸取上清,加入1.5倍籠的BuferGF3,,p,gctionubeinumn混勻;将混勻反应液全部加入到已装入收集管(ColleT)的吸附柱(SpColDM)一m?xi中,若次不能加完溶液,可多次转入,于10000(1150O)离心lmin,,p,g倒掉收集管中的废液,然后将吸附柱重新放回收集管中;向吸附柱中加入500叫BuferGW,于10,000m一imin,离心1倒掉收集管中的废液,再将吸附柱重新放回收集管中000p;重复次;12,m?xt(13400)离心2min,倒掉收集管中的废液。将吸附柱置于室温数分钟,以彻底晾干;p,g一-1.5mL50100er将吸附柱放到个新的离心管中,向吸附膜的中间部位悬空滴加nLBufGE ̄或灭菌水,室^^置25論,于100001111111,收^^脱液即为淮山药总0似溶液,啊离心。。-20。保存置于。2.2.6淮山药总RNA的提取使用植物RNA提取试剂盒提取淮山药叶片总RNA,操作步骤参考说明书,略有改动:剪取淮山药新鲜叶片约100mg,在液氮中迅速研磨成粉末,立即加入600jiLBuferRLC,祸旋振荡使其充分裂解;将全部反应裂解液转移至已装入ShredderSpinColumn的2mL收集管RNase-Free),于13000x2min,小心吸取收集管中的400L上清液至(中g离心p新的RNase-Free离心管中加入0.5倍体积的无水乙醇(200吣)后立即混匀,然后转移600心;混合液至已经装入收集管中的吸附柱(SinColumnsRM)上;于800〇x心30sec,p,g离弃废液,50iLBuferRW1,于13000x心将吸附柱重新放回收集管中;向吸附柱中加入3jg离lmini,弃废液,将吸附柱再重新放回收集管中;向吸附柱中直接加入新鲜配制的80Ljase(-reeaerxacDNI混合52iLRNaseFWtionfer液,8L10RetBu和20LDNaseI(1(pp。入35〇队8><11/))25〇孵育15111^110&11\^18〇〇〇眛,混勻,于;向吸附柱中加,于8离心1min,弃废液,将吸附柱重新放回收集管中;向吸附柱中加入500jiLBuferRW2,于8000x30一x离心sec,,3000心1g弃废液;重复次;将吸附柱放回收集管中于1g离26 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究m-心管in1.5mLRNaF,将吸附柱置于室温数分钟,以彻底晾干;将吸附柱装入新的seree离35RNase-FreeWarx中,向吸附膜的中间加入卟te,室温放置1.5min,于13000g离心1°m-70C。in,收集的洗脱液即为RNA溶液,保存在防止降解2.2.7cDNA的合成一一使用SuperRTcDNA第链合成试剂盒合成cDNA第^,操作步骤参考说明书进行,略有改动:erMRT-Free将RNA、Primix、dNTPMix、Bufer、SuperRT和RnaseWater溶解并置于冰上备用;配制20^L反应体系:2.5mMdNTPMix4|xL,PrimerMix2|_iL,RNAtemplateX5xuferARnase-jL200U/iLSuerRT1FreeWater至终为20LpL,RTB4,,加;|^p4p°C-X涡旋震荡混匀,3050min,85:孵育,短暂离心使管壁上的溶液收集到管底;于42孵育一5min。反应结束后,短暂离心,置于冰上冷却,即为cDNA第^物。产物可直接用于PCR。PCR反应-20。长。破和荧光定量,或置于期保存2.2.8常规PCR反应体系与条件使用2xESTaMasterMix进行PCR反应。qPCR反应体系:2xESTaqMasterMix10pL,10pMForwardPrimer1iL,10iM||<入Dnase-reeReversePrimer1pL,DNAtemplateXL(1),加/RnaseFWater至终ppg体积为20成。°??(:PCR反应条件:94C预变性2min94:30secX:60t30sec;变性,55退火,°°72C延伸?lmin(按照2kb/min,根据不同片段大小设置),3035个循环;72C延伸2min。2.2.9PCR产物电泳检测x取2仏PCR产物.5TBE缓冲系统中,于1%琼脂糖凝胶(含GelRed,在0核酸??染料)进行电泳。使用GeneRuler100bpDNALadder或GeneRulerlkbDNALadder?或Generuler1kbplusDNAladder作为分子量标准,在5V/cm电场强度下电泳,最后用凝胶成像系统分析电泳结果。27 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究2.2.10克隆和测序?PCR的^Uy-T根据结果,如果PCR产物为目的条带,直接使用;lCloningKit进行连接反应。如果PCR产物有其它条带,则切下含目的条带的凝胶,使用胶回收试剂-盒进行纯化后再进行连接反应。连接反应体系为:1iLPCR产物,1pLEasyTlCloninfpgm-ectorddH0。in。ransv,32轻轻混合,室温反应5将连接产物加入50队TlTl感°-立即冰浴2m受态细胞中,轻弹混匀,冰浴2030min后,42C热激30sec,in。加入°250吣SOC或LB培养基,于200rpm37C震荡培养lh。取8500mMIPTG和40L吣p20-LA-mg/mLXgal混合后涂布平板,待IPTG及Xgal被吸收后,取100叫菌液涂板,°C。于37倒置培养过夜挑取白色克隆至l〇nL无菌水中,涡旋混勻,取lpL混合液用作PCR反应的模板。20成PCR反应体系中,依次加入10叫的2xESTaMasterMix,qase/-rer1HL模板,M13F和M13R各1nL,7nLDnRnaseFeWate,采用以下程序进行°°°°卩01鉴定:94(:预变性51^11;94(:变性3〇86(:,55(:退火3〇36〇,72(:延伸(根据片°段的大小确定延伸时间),25个循环;72C延伸5min。电泳分析PCR产物大小,从/而确认阳性克隆并扩大培养,用引物M13FM13R测序分析PCR产物。将测序获得的序列信息利用Blast、DNAman和VectorNTI11.0系列软件进行生物信息学分析。2.2.11系统进化树分析采用MEGA6进行系统进化树分析,将不同病毒分离物进行聚类分析。将测序获得的序列输入GenBank(http://www.ncbi.nlm.nih.gov)进行BlastN或BlastX检索,获得多个物种相似的核苷酸序列或同源蛋白的氨基酸序列。使用MEGA6软件的邻接法(NeighborJoining,NJ)、最大似然法(MaximumLikelihood,ML)、最小进化法(MinimumEvolution,ME)和最大简约法(MaximumParsimony,MP)分别构建进化树,建树过程选择bootstrap检验1000次。比较后选择最优树用TREEVIEW进行展示。2.2.12小RNA的深度测序采用SmallRNASamplePrepKit按照说明书进行SmallRNA测序文库的制备,操作步骤略有改动:分别在200PCR薄壁管(nuclease-ftee)pL中准备试剂盒要求的相应浓度的vl.5’°sRNA3adepter、SRARTprimer、100mMMgCl2和1.25mMdNTPMix,置于22C预-xeasefiee)-:l5总RNA5pL热。在20〇nL离心管(nucl中加入连接反应体系ng,l28 广西大学博士学位论文中国淮山药病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物掌的研究°’Cvl5sRNA3t1L,混匀后置于70,.adeperp赌育2min迅速置于冰上冷却。继续加入如下试剂:10xT4RNL2TruncatedReactionBuffer1xL,100mMMCh0.8〇L,T4jg|°’RNALigase1.5pL,RnaseOUT0.5L,混勻后置于22C孵育1h以进行3端adepterp°’连接反应。连接反应将近结束时,将5adapter置于70C孵育2min,迅速置于冰上冷’。:10mMATP1LSRA5Adater1T4RNA却向连接反应混合液中加入如下试剂p,p叫,°L’’’iase120C1h5adeter3g卟,混匀后在孵育以进行端p连接反应。反应产物为5端°RNA直接用于RT-PCRC,也可于4端已连接的,可保存过夜。’’一200LPCR薄壁管l-fre取个n(nuceasee),加入如下试剂:5端3端已连接的RNA°4pL,SRARTprimer1pL,混匀后短暂离心,于70C赌育2min,置于冰上冷却。依x:5FirstStrandBufer2xL12.5mMdNTPMix0.5iL100mM次加入如下试剂,,jf°C孵RDTT1LRnaseOUT0.5L,混勾后于48in。erscritIIeverse卩,p育3m加入Supp°Transcriptase1iL,总体积为10pL,混勻后44C反应1h,进行反转录反应合成cDNAj一第链。一L-取200PCR壁管(nucleasefiee),加入如下试剂:Ultraurewater27L个p薄p卩,5xPhusionHFBuffer10iL,PrimerGX11iL,PrimerGX21L,25mMdNTPMix0.5f|^一混勻后按照下述程序进行|aL,PhusionDNAPolymerase0.5(xL,cDNA第链10pL,°°°°卩〇1(((::98:3098:6(:,60退火3036<;,72(:延伸1586(扩增预变性86(:;变性103:,°°12个循环;72C延伸10min;于4C终止反应,cDNA双链合成。取制备好的cDNA双链在6%的PAGE胶(Invitrigen公司)中进行电泳,电泳缓冲液为1xTBE。将1吣的25bpladder与1队的DNA上样染液混合后加入第1个凝胶上样孔50cDNA双链与10L的DNA上样染液混合后,分成2等份加入第,将以的p2和3个凝胶上样孔。在200V电压下电泳至溴酚蓝前沿完全移出凝胶。取出PAGE胶, ̄〇611^(1核酸染料(81(^11111公司)染色23111111255匕(1(^,通过凝胶成像系统观察到卩25一5在条带25bp到450bp之间每隔bp有条带,其中12bp最亮,据此用手术刀小心切下100bp和93bp大小的两条带。一mLnucas-ee用注射器针头,将个0.5离心管(leefr)的底部刺穿后套入2mL离心管。将切下的胶块放入底部刺穿的〇.5mL离心管中,于14000rpm离心2min至所有x凝胶落入下面的2mL离心管。加入100L1elelutionbufer,室温下轻柔的旋转离pg一S-心管2h,或者放置过夜。将洗脱液和胶碎块转移到个pinXfilter的上部,于14000mm-ip离心2in,弃收集液。继续加入1吣糖原,10pL3M醋酸钠,325队的2(TC预29 广西大学博士学位论文中囯淮山药病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究14000r20min。500L70%乙冷无水乙醇,立即室温下于pm离心去上清,加入p醇洗漆沉淀。开盖室温瞭干后,加入10iLresuspensionbufer,即为测序用的SmallRNA的fcDNA文库。I-使用lluminaGAIIX测序仪进行单端测序(SingleRead),测序读长为35nt,上机操作步骤见2.2.13。2.2.13GAIIx上机开启cBot,按照提示,检查废液瓶;开启GA主机和PEMmodule,检查GA控制SBS2-.8。运行GA2PEMPrWahi电脑磁盘空间,打开软件esrece,量取液体体积是否_p在18mL±10%范围内。0=xnM浓:nMdNaOH将样本稀释到1度,换算公式为值(ng(sDNA)l515)/bp;用N变性样本,将样本浓度稀释到1nM:10nMDNA2pL+2NNaOH1nL+EB或HybBufer()i-17L,室温变性5min;用预冷的HbBuffer将DNA稀释到终浓18M:1iL?jy变性后度pjL装-nMDNA+999120L到八连管中,从左到右为18Flowcell的条形码边为n;分n,-第8条lane。提前融化96wellreagentlate和HbBuffer;做完Clustereneration之前pyg配好SBS试剂,注意防止6号试剂(cleavaemix污染其它试剂g);LFN加入IMX之后过滤,然后加高保真DNA聚合酶,充分混匀。-w标记96ellreagentplate试剂高度;按提示装入flowcell,运行wash程序,选择recipe生成cluster;运行结束之后检查试剂所剩余的量,如液面不齐或残液过多,暂停一下步操作。运行PreWashrecipeV8,量体积是否为18mL±10%,若体积异常,暂停后续操作,-7e调整体积合适后再继续进行。放置1号试剂,运行PrimrecipeV8,量体积是否为6.4mL±10%;在manualcontrol界面下选solution28,vol0,60/2000,按回车键之后取下棱镜和旧的flowcell,取时尽量用左手操作,不可以碰到右侧激光头、调控杆等。用酒精和无尘纸擦洗棱镜,小心细致的擦尽残油,放回相应位置;小心的把做好clustergeneration的flowcell装好,在manualcontrol界面下选solution5,vol100100/2500,按8003ll回车键,量体积是否为pL±10%,重复次,检查有无漏液;在manuacontro界====G面下选Lane4colltile30按回车键,然后选z0,,选reen/None/3检,,按回车键查====x0y0和x0y36000状态下flowcell是否放直。小心的把130pL油从flowcell左后侧往前推加至flowcell底部全部被油浸润且棱镜边缘无油渗出;选Thermoon/of三次,30 广西大学博士学位论文中国淮山筘病毒病调查、诊断和病屎病毒分子生物单的研究用手电筒检查Thermostation底部是否有油渍,如果有油溃,取无尘纸沾酒精小心擦拭后重复步骤4至步骤8。关好门,选择V8recipe,机器开始运行。确认firstbasereport和calibrationresult,oodnessoffit爸0.9900,Sensitivit兰350,符合标准后选择确认进gy。行测序,如不符合标准,联系应用工程师观察机器运行状态,运行期间及时补充试剂。运行完单端测序后如需要进行read2测序,按步骤13至步骤16进行,如果只是单端测-序,直接跳到步骤17操作。提前融化pairedendclusterenerationkitV4Read2,在试管g壁上标注体积。根据recipe提示进行prime,检查体积是否正常,按提示把试剂装在相应位置。运行recipe,确认FirstBaseReport。根据recipe提示,取下试剂,检查用量,相应位置换回水。运行PostWashV8recipe,运行期间将Intensity文件夹上传到服务器上,新文件夹以flowcellID、运行时期命名。完成PostWash之后关闭PEM和GA,文件传输完成之后关闭控制电脑。2214..深度测序的生物信息学分析(Reads)过CLCGenomicsWorkbenchVersion6软件去除接测序所得的读段,通adseads头、去除低质量Re、去除污染等过程,从而获得符合分析条件的R,然后采用Trinity算法对合格的Reads进行办ziovo组装拼接获得Contigs,再将这些Contigs与NCBI的病毒数据库进行比对分析,从而发现病毒序列信息。2.2.1S淮山药病毒粒子的提取和形态观察°采集淮山药的新鲜叶片3于4C预冷后,置于液氮中1min并研磨成粉末。加入g0-mM30mL预冷的0.05MTriscirateH7.40mMG.05M柠檬酸盐缓冲液[t),1DEDT,5(pEDTA04%-VitaminC0_5%TGANa2%PVPH5.84000xi〇,.,,,勻浆后于(p)],g离心min。1/100aCl1/200.2M,经两层纱布过滤向上清液加入体积的1MC2和体积的-Na2HP〇4,20min。于6000x心1〇min,取上清液并加入TritonX100(5%搅拌,g离V/V),搅拌均匀并于136,000xg离心lh。用0.1M磷酸盐缓冲液0.1%TGA-NaH[(p°6.0]悬浮沉淀,加入崩溃酶(1%W/V;Sigma公司),混勻并在28C搅拌孵育2h。)于6000x离心10min之后取上清,小心加入用0.1M憐酸盐缓冲液配制的蔗糖20%(,gx-W/V)之上,于90,000g离心2h,用0.05M硼酸盐缓冲液[5%TritonX100(pH8.0)]重悬沉淀,即为纯化的病毒粒子悬液。31 广西大学博士学位论文中国灌山苗病毒病调查、诊断和病屎病毒分子生物学的研究一rmva取小滴纯化的病毒粒子悬液滴在腊片上,将覆有For膜的铜网扣在液滴上孵 ̄5min2%25min铜网表面的液体,自然晾干,用育,然后经磷钨酸负染,用滤纸吸千-tach-80KV。日本Hii公司的H7650型透射电镜进行观察拍照,加速电压为602.2.16淮山药的细胞病理观察x取健康和感病显症的淮山药叶片切成13mm的小叶块,分别放置于用0.1M的磷°C酸缓冲液(pH7.0)配制的2.5%戊二醛的固定液中,抽气至小叶块完全下沉,在4条件下固定3h以上。吸去固定液后,用0.1M的磷酸缓冲液(pH7.0)漂洗3次,每次15min。然后吸去漂洗液,在通风橱中加入用相同的磷酸盐缓冲液配制的1%四氧化饿,固定lh。再吸出固定液,加入0.1M的磷酸缓冲液(pH7.0)漂洗3次,每次15min。吸去缓冲液,然后依次用50%、70%、80%、90%、95%的乙醇进行梯度脱水,每次15min,=然后用无水乙醇脱水20min,再100%丙酮脱水20min。用包埋剂A(丙酮:包埋剂1:1)=lhB(丙酮:包埋1:33h6h浸泡,包埋剂剂)浸,纯包埋剂浸泡以上。最后将材料置于°eppendorf离心管底部,在70C条件下聚合过夜。Re-ichartJunULTRACUTE型超薄切片机上进行切样本经过定位和修块之后,在g ̄为6080nm,。然后将切片用醋酸铀和柠檬酸片,切片的厚度用200目有膜载网收集?铅溶液进行双重染色,最后用ddH20清洗2030次,用滤纸吸去残余的水滴,自然晾-ch-80KV。干后,用日本Hitai公司的H7650型透射电镜进行观察拍照,加速电压为602.3结果2.3.1淮山药病毒病田间症状一淮山药病毒病般在淮山药生长中后期才表现出明显症状。症状或因品种或因感病时间或因侵染病毒的种类和数量的不同差异较大。多数淮山药病毒病在初发病时出现明-2B)的花叶症状伴随叶面畸形显的褪绿斑,后发展形成典型的花叶症状(见图2;有-2-2(见图C);有的出现黄化、花叶症状(见图22D);有的叶片发生变形扭曲,皱(见图2-2E)的叶片出现萎黄缩畸形并伴有褪绿斑;有、叶缘卷曲并伴随有坏死斑(见-图22F),严重时整株萎蔫。有些淮山药病毒侵染植株会导致生长缓慢,整株矮化,地下块茎明显小于健壮植株的块茎。32 广西大举博士学位论文中国》山药■病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物举的研究1論图2-2中国淮山药病毒病主要症状类型A:无症状B:花叶C:畸形、花叶D:;;;:黄化、花叶;E褪绿斑、皱缩畸形F:萎黄、坏死;Fiure2-2SmtomsofvirusinfeciofamningyptonyiChaA:asymptomatic;B:mosaic;C:malformationandmosaic;D:yellowingandmosaic;E:chloroticspots,crinkleandmalformationF:chloroticnecrosis;2.2.3淮山药田间发病率2010年7月至9月分别对广西的南宁市武鸣县、桂平市金田镇和鹿寨县寨沙镇等淮山药主产地以及南宁市广西大学农场的淮山药种植区的淮山药病毒病发生情况进行调査,并采集样本进行病原病毒鉴定。广西以种植桂淮系列等山药品种为主,其次为当地的淮山药品种,以及少量北方品种的淮山药,如铁棍山药(■D/oscoreaoppoi^acv.TG)等。?田间调查结果显示山药的发病率在7%40%之间-(见22A),广西淮表,其中广西大学33 广w大來博士举位论文中mafe■山苗病?病调查、诊断和病康病毒分子生物举的研究农场和广西农科院武鸣种植基地的淮山药发病率较低,桂平市金田镇和鹿寨县寨沙镇的淮山药发病率明显较高。2011年8月中旬扩大了淮山药病毒病调査采样范围,除了继续调査广西大学农场的淮山药种植区的病毒病发生情况,还对河南省温县和山东省寿光市淮山药病毒病发生情-况进行调査,田间调査结果显示(见表22B),以种植铁棍山药为主的河南省温县淮’?%之间山药种植区,发病率在16.6%18.5。以种植日本大和长芋(1)1〇15£;0?^077〇1?7〇(^.//DHCY)为主的山东省寿光市淮山药种植区,大量植株出现黄化和扭曲坏死的症状,平均发病率为59.3%,部分田块的发病率髙达100%。广西大学农场的淮山药发病率较前—年也有提高。2012年对江苏省徐州市、宿迁市、丰县等地的淮山药病毒病的发生情况进行了调查,一徐州市农科所和丰县大沙河镇种植的淮山药品种较为单,调査结果显示,徐州市农科所和丰县大沙河镇发病率分别为3.5%和2%,而种植品种较多的宿迁市的发病率为29%(-2C。见表2)对不同品种的淮山药的病毒病发生情况进行统计,结果显示铁棍山药 ̄o的发病率为19%37%,徐农紫药(£>/sromza/atocv.ZY)和徐农白药(ZVoscomata/ato ̄?cv-。.BY)的发病率为2%5%,其它品种的发病率在6%15%之间(见表23)34 广西大学博士学位论文中国推山苗病毒病调杳诊断和病康病毒分子生物学的研究、表2-2201卜2012年调查的淮山药病毒病发病率Tbl-ae22Theaearentincidenceofamirdiseasesin2010t2012ppvusesoy畸形黄化褪绿斑萎黄调査地点花叶病株率花叶花叶皱缩畸形坏死(A)2010年南宁武鸣县里建武帽农场2%3%2%007%桂平市金田镇金田村19%3%5%4%1%32%桂平市金田镇彩村17%5%1%3%026%桂平市金田镇茶林村16%2%1%2%2%23%柳州市鹿寨县寨沙镇寨沙村13%17%2%6%2%40%广西大学农场2%4%3%2%011%(B)2011年.河南温县祥云镇下庄村1.2%22%4.9%10.2%018.5%06%5%62%32%1.6%166%河南温县黄庄镇南韩村....山东寿光市稻田镇3%7%010..3%39%593%广西大学农场11%7%3%2%023%(C)2012年江苏徐州市农科所1%2.5%0003.5%江苏宿迁市郊区7%9%3%6%4%29%江苏丰县王沟镇2%1%07%2.5%12.5%江苏丰县大沙河镇2%00002%广西大学农场5%3%2%2%3%15%35 广西大学博士学位论文中国浪山药病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究-3表22012年调查的淮山药各品种病毒病发病率b-Tale23Theaearentincidenceofdifferentamseciesvirusesdiseasesin2012ppyp序号淮山药种类淮山药品种宿迁市徐州市丰县王沟镇丰县大沙河镇AZ■->.opposita铁棍山药37%19%?--BD,opposita大和长芋山药12%CDoos---ita麻山药15%.ppDD---,opposita淮山药11%EDala--2%ta5%.徐农紫药FD■--.alata徐农白药2%GDoos-6%-ia水山药8%.ppt2.3.3小RNA深度测序鉴定淮山药病原病毒为全面鉴定中国主要淮山药产区的淮山药病原病毒种类,我们从2011年采集的淮’山药样本中选择不同品种[广西的桂淮2号(D.aomcaCV.GH2)、桂淮5号(D.a/fl/flypcv.GH5)、桂淮6号(D.a/ateCV.GH6);河南的铁棍山药(D.c^oj如cv.TG)、太谷山药(Z).opjcw/tecv.TAG)和紫山药(D.fl/atocv.ZY);山东的大和长芋;江西的/、桂淮6号]和不同症状类型(无症状;花叶;畸形花叶;黄化、花叶;褪绿斑、皱缩畸形;萎黄、坏死)的淮山药样本提取RNA,按照2.2.12所述方法分别构建小RNA的测序文库。取1ML构建好的cDNA文库克隆至pCR2.1载体进行测序验证文库质量,随机挑取5个克隆进行测序,发现其中有3个克隆的测序结果显示为microRNA相关序列,说明构建的小RNA测序文库质量较好。将这些测序文库混合后,采用基于IlluminaGAIIX平台的高通量测序技术进行深度测序,通过CLCGenomicsWorkbenchVersion6b8n?。t30nt软件去接头和去低质量数据,最终获得了400M的高质量数据筛选1的reads,通过Velet软件组装,获得的Contigs与NCBI的nr数据库进行BLAST比对分析。从WnavYMMV、JYMV、BBWV-2和数据分析结果初步证实这些样本中存在/n^、CYNMV一,另外还发现有个具有的典型特征的新病毒,暂命名为淮山药潜隐'一m病毒YLV),有个具有Potems的典型特征的新病毒,暂命名一为淮山药X病毒(yawv/msJf■eo/noWms,YVX),还有个具有Sg的典型特征的新病'毒,暂命名为淮山药黄斑花叶病毒veiTiwcwfl/cvzms,YYSMV)。小RNA深度测序并未鉴定到YMV和CMV。36 广西大学博士学位论文中国灌山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究2-.34PCR或RTPCR检.测淮山药病原病毒2010年分别在广西大学农场、广西农科院经作所资源圃、广西南宁市武鸣县里建武帽农场、广西桂平市金田镇、广西柳州市鹿寨县寨沙镇共计5个地点33个采样点采集淮山药样本138个。由于当年对侵染淮山药的病毒信息了解有限,只能根据文献报道的_5油av-!ms、YMMV、JYMV、BBWV2、YCNMV、CMV和YMV的简并引物或特异性弓丨物进行淮山药样本的病原病毒检测。检测结果显示共有106个样本可扩增出病毒条带,其中DBV的阳性率最高,106个样本中有100个样本携带DBV,其次是YMMV(106个样本中有38个样本携带YMMV),有32个样本同时检测出上述两种病毒。在上述样本中未--检测到JYMV、BBWV2、YCNMV、CMV和YMV。病毒检测结果见表24。2011年分别在广西大学农场、广西南宁市武鸣县里建武帽农场、广西柳州市融安县、江西省南昌县、河南省焦作市温县祥云镇下庄村、河南省焦作市温县黄庄镇南韩村、山东省潍坊市寿光市稻田镇共计7个地点19个采样点采集淮山药样本138个。通过小RNA深、JYMV、BBWY-2、CYNMV度测序发现样本中存在及YMMV、YVX、YLV和YYSMV,为扩大病毒检测种类,根据小RNA深度测序获得的病毒序列信息,设计了YYSMV-PCR、YLV、YVX和CYNMV的病毒检测引物。PCR或RT检测结果显示,105个样本被病毒侵染,仍以DBV的阳性率最高,105个样本中有57个样本检测到DBV,其次是YMMV(105个样本中有38个样本检测到YMMV),再者是JYMV(105个样本中有33个样本检测到JYMV)。在105个样本中检出13个样本感染YVX,11个样本感染YLV,。-17个样本感染YYSMV,有59个样本为病毒复合侵染BBWV2只在铁棍山药和大和长>芋山药上被检测到。上述样本均未检测到YMV和CMV。病毒检测结果详见表24。2012年分别在江苏省徐州市、宿迁市和丰县3个地点10个采样点采集淮山药样本89一个。使用的病毒检测引物与2011年致。结果发现78个样本被病毒侵染,其中YLV的阳(7832YLV)JYMV(7831性率最高个样本中有个样本检测到,其次是个样本中有个样JYMV)DBV(78个29个DBV)和YMMV(78本检测到,再者是样本中有样本检测到个样本中有29个样本检测到YMMV)。在78个样本中检出11个样本感染YVX,32个样YLV-12BBWV2。CYNMV和YYSMY78本感染,个样本感染检出率较低的是,在个样本中的阳性样本分别只有2个和1个。有47个样本为病毒复合侵染。在所有采集的淮山药样。病毒检测结果详见表2-4本中亦未检测到YMY和CMV。37 试tfespsao9#JU#ISI鉗U!/i9io0L寸0S>uti们jzsvo寸e6们1P19ZZ9WP3.290z£A9堪izlS6,1^oooZ06nl128eI(L6S時艇AS巷N4?UAooo0〇0001o〇〇000〇000〇0-參,>1aaaQaQQQ6e喇Azzzzzzzz0o〇〇000S901〇i¥驿堪>2蛛N堰AaaaQQnaQuzzzzzzzz0o〇〇0010寸00〇Z-r按彐3-A销M画afrCQoo00ooo00ooO000InL0寸0%n>IAlA9寸f0000o0loit000300L3ooZ(NAIAIsS1/1eCNAi66^9ou0noe〇01(N00168S.Z2EXu>aaaQaaaa?f寸stoo0zzzzzzzz7〇09N19z-nA(00SadAu!.srasSsuAooo0ooo0〇oo〇00o0000000joogMiAa3毅JqSM爷Iu运Uooo0ooo0〇oo〇00o0000000un把鰹oznAs^p蓐loS鹏s鋁jS^dAaaaCIaaaa张szzNzzH-赋UAzzz0o〇Q100Z0o0l2il遯e=sAArz^JsVOuCQOo一-(NN「(i=alw一nz0oo£l2摇B(N〔s9(Neg6们6e寸ld_u酬uniE.£is1S一ls061e6s頦S惩i一1U<(NNIi6寸6sl1々9Zfjz<eeZS1s哦琛3osJa靼s3s3ssa3s;.n摩m.、 ̄--'—isq>sssaooo张lMaolsoaoSs3su—svadadad-an?lad ̄llS ̄ad=l£ilv>vov—民—pfzE-a、afa/-af—、afPaoao.....'....「.Alz:K摇acdaQd?sQdiiJaaaQQaQQadQddzAIO=Ip-(UH輙装Oz二009寸IzcspW89(N寸£n3I蛏J孙畝Puq3J二.迤3-:E=JSI1J揪<?T州^幾I3pt.3:-ls.*-E霱适震-E5I寡pH蠢;iQT'l-;」Ha寸、H1H雲£IE玲■S*■oJ...:n:?'.轴——.?—zn萆f-JJM-U->.V<NJ.U>{<来-t31“:(N「ooo0Eq=lZzz°.ilU=IlG-El,oXos0oOoz/^szziziZNsSzZsz ?病毒病调查广西大学体士学位论文中国淮山JS、诊断和病服病毒分子生物学的研究病毒检测结果显示,在采集的所有淮山药品种都受到DBV的侵染,南方种植的山药品种中DBV检出率较高(参薯中DBV检出率为71.1%,日本薯蓣中DBV检出率为°66.7/。)北方种植的普通山药中DBV的检出率较低19V.9%。YYSM,,仅为在北方种植的普通山药的检出率为12.5%,在南方种植的参薯中未检测到该病毒,在日本薯蓣中的检出率只有1.1%。YVX只在参薯中检测到.2%。YMMV在参薯中的检,检出率为16出率较高(49.3%)。JYMV主要侵染普通山药,检出率为43.4%,在日本薯蓣中的检3WV-出率只有.4%。BB2和YLV只在普通山药%和。中检测到,检出率分别为7.63.16%1CYNMV的检出率比较低,在参薯的检出率为0.7%,在普通山药中的检出率为4.4%。YCNMV,在参薯中检测到检出率为0.7%。在检测的淮山药样本中发现普遍存在两种44.4%及两种以上病毒复合侵染的现象,其中参薯中检测出的病毒复合的比率为,在日4-138%,6.3%23。本薯蓣中为.而在普通山药中为(见图)80.0n_7711DBV^700■-VYVMV^-|60.0■?VVX■5〇—-.〇YMMV!■■..I^40-_JYMV.0■I■■■■B-3〇-BBWV2.oIIIIIhI2。。-i■』l■^mi:■YCNMV:.taDa.oostaD.ala.jponicaDppiYamseciesp图2-3淮山药病毒检出率-muFiure23PostvedetectabrateofvrundtntonsnnagiileisesalipleifeciiChi2YYSMV.3.5的传播介体一些铁棍山药植株上发现有粉蚧存在田间调查时,在,并且表现出比较明显的病毒病症状,经PCR检测到这些植株被YYSMV侵染。取病株上的粉蚧提取DNA,用YYSMV的特异性检测引物进行PCR检测显示为阳性。从病株上取若干粉蚧放置在YYSMV阴39 ■广西大学t謇士学位论文中国谁山药病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究(-)性的铁棍山药植株上迸行传毒,两个月后植株表现出明显的黄脉花叶症状见图24A,MV侵染-A进行(见图取叶片提取DN检测,证实其被YYS24C)。M123AABC图2-4YYSMV的传播介体:传播YYSMV的粉蚧A:用粉蚧传毒后铁棍山药叶片表现出明显的黄斑花叶症状;B;C:PCR检测经粉蚧传毒的植株和传毒粉蚧的带毒情况M--:GeneRulerfr2:itv:lOObpDNAladder;hYYSMVee植株,YYSMVposie植株,3传毒粉蚧-mYYVFiure24TransissionvectorofSMgA:ellowsotmosaicsymtomappearedontheleavesofD.Oppositacv.TG(YYSMVPositivewhichypp)transmittedbymealybugs{Planococcuscitri)\B:mealybug(Planococcuscitri);C:virusdetectionofinfectedlantsandmealbuPlanococcuscitriM:GeneRuler1kblusDNAladder\;pyg()pV-V-w1:YYSMfreelant2YYSMoiivlt3:lbuPlanococcusciriithYYSMVp:steanmeast;p;ypg{)2.3.6YYSMV的部分田间寄主鉴于粉蚧可传播YYSMV,为明确YYSMV的田间寄主,采集若干常见的生长在淮YYSMV70%?山药周边的田间杂草,使用带毒率为90%的粉蚧进行传毒试验,待接种-的淮山药叶片显症后,发现杂草并不表现出明显病毒病症状(见图25)。提取待测植SMVSMV-F株的总DNA并用YY的特异性检测引物YY/R进行PCR检测是否感染YYSMV,结果显示马唐、反枝苋、皱果苋和牛筋草中均存在YYSMV(见图24)。40 广西大掌博士学位论文中国淮山药病毒病调查、诊断和病服病毒分子生物学的研究^ir1图2-5用于YYSMV检测的植物—?A:铁棍山药S:S(YYMV阴性);B铁棍山药(YYMV阳性);C:叶荻,D:马唐E:反枝苋F:::红:;;皱果苋;G牛筋草;H花酢浆草;I小叶冷水花Fre-tsutonigu25PlansedforYYSMVdeteciA.iav.i.osiv.TGve:DOostcTGYYSMVNeatveB:DOtacYYSMVPositipp(g);pp(;)C:FlueasuruticosaPall.Bail.D:DiitariasanuinalisL.Sco.E:AmaranthusretroflexusL.flgg;;;()gg()pF:AmaranthusviridisL.G:EleusineindicaL.Gaertn.;();Hi.ii.:OxalscorbosaDCI:PleamcrohllaLLiebmym;y(p)41 国灌山药■病毒病调音广西大学彳荨士学位论文中、诊断和病康病毒分子生物学的研究500—bp2-6MV的电泳分析图PCR检测YYSBYYMV阳一A:(YYMV阴性):铁棍山药S);C:;铁棍山药S;(性叶荻D:马唐;E:反枝苋;F:皱果苋;G:牛筋草;H:红花酢浆草;I:小叶冷水花-MVttFre26YYSdeecionPCRntieltrressbyideifdbyeleecohoiigugpM:GeneRuler1kbDNAladderA:D.Oositacv.TGYYSMVNeative;;pp(g)B:D.Oppositacv.TG(YYSMVPositive);C:Fluggeasujfruticosa(Pall.)Baill.;D:Digitariasanguinalis(L.)Scop.;E:AmaranthusretroflexusL.;F:AmaranthusviridisL.G:EleusineindicaL.Gaertn.;();HxaiscormbosaDC.I:PileamicrohllaL.Liebm:Oly;py()2YLV和BBWV-2病毒.3.7侵染淮山药的粒子的形态特征-Y-DT-1)取经RTPCR检测YLV和BBWV-2为阳性的日本大和长芋山药CDHC的-2.2.47A).2.3,然后按1新鲜叶片(见图2,按照21所述方法提取病毒粒子并进行纯化照YLV的病毒粒子为线形15nm、所述方法观察病毒粒子形态,,直径约。观察结果显示-(-长约700nm见图27B,a)和直径约30nm的球形病毒粒子(见图27B,b)存在,分别符合香石竹潜隐病毒属(Car/av/my)和蚕豆病毒属的病毒粒子形态特征。42 山药■广西大学■博士学位论文中国淮病毒病调查、诊断和病厩病毒分子生物学的研究\、?气,纖/議1"Wm%邏200nm|AB2-7YLV的病毒粒子图形态A-2:被YLV和BBWV侵染的大和长芋的症状;B:纯化的YLV病毒粒子(箭头所示2%,200nm)用磷钨酸负染右下角标尺长度为Fre-YLV27trmcrorhofvrustilsofiguEleconigapsiparceA.StomsofD.oositacv.DHCYinfectedbYLVandBBWV2ympppy;B:PurifdvirurtilesofYVnowwasstainedwith2%PTA.Thebarreresents200nmiespacL(a)p2.3.8受病毒侵染的铁棍山药叶片的细胞病理变化2-.3_8_1受BBWV2侵染的铁棍山药叶片的细胞病理变化取生长中期的受BBWV-2寿光分离物侵染的铁棍山药叶片进行细胞病理超微结构-2的观察铁棍山药叶片的细胞严重空泡化,叶绿体解体,片层,结果发现感染BBWV-结构紊乱(图28B)部分细胞出现明显的膜增生,逐步形成特殊的膜增生区域(图;--28C),基质增多,产生周边小泡(图28D)还有些细胞的叶绿体膨胀变圆;病变;一2-细胞中的叶绿体内多产生空泡结构(图8E);还在些叶肉细胞中观察到大量病理-8F)性囊泡结构,周边存在大量病毒粒子(图2。43 广西大举博士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究F犠雇:_狐_图2-8感染BBWV-2的铁棍山药细胞超微结构变化A:正常的叶细胞;B:细胞严重空泡化,叶绿体解体,片层结构紊乱;C:细胞中的膜增生区域(箭头)D:叶绿体膨胀变圆,基质增多,产生周边小泡(箭头;);E:病变细胞中的叶绿体内产生空泡结构(箭头);F:细胞产生大量病理性囊泡结构,周边存在大量病毒粒子;CH:::::叶绿体;CW细胞壁;M线粒体;N细胞核;S淀粉粒;V:病毒粒子-wV--Fiure28Ultrastructureof.it.gDoppsacvTGleafcellsinfectedithBBW2SG1isolatesA:normalleafcellB:severecellvacuolizationchlorolastdisinterationandlamellarstructuredisorder;,pg;C:cellroliferationinmembraneareaarrow);D:chlorolastexansion,matrixincrease,smalleriheralp(ppppbubbles(arrow);E:chloroplastvacuolizationinabnormalcellsarrow;()u-F:alargenumberofvirusarticlessurroundinatholoicalvesiclarlikestructurespgpg;CH:chlorolastCW:cellwallMmitochondriaN:ncleusS:stahraiV:isticlep;;:urcnsvruars;;g;p2.3.8.2受JYMV侵染的铁棍山药叶片的细胞病理变化取生长中期的受JYMV温县分离物侵染的铁棍山药叶片进行细胞病理超微结构观察,结果发现感染JYMV的铁棍山药叶片的细胞空泡化或细胞器解体,细胞结构紊乱(图44 ?病毒病调音诊断和病康病毒分子生物牟的研究广西大学体士举位论文中国淮山药、2-9B)部分细胞产生膜增生区域-(图29C)有的细胞的叶绿体肿大变圆,内部产;;-9-生空泡结构(图2D);大部分病变细胞中的叶绿体膜结构松散,甚至消失(图29E);一还在些细胞中可观察到病毒粒子富集区-(图29F)。:囔__图2-9感染JYMV的铁棍山药细胞超微结构变化A::细胞空泡化,细胞结构散乱或解体:正常的叶细胞;B;C膜增生(箭头);D:叶(绿体肿大变圆,内部产生空泡结构箭头);E(:病变细胞中的叶绿体膜结构松散,甚至消失箭头)F:;;细胞内出现病毒粒子富集区CH:叶绿体;CW:细胞壁;M:线粒体;V:病毒粒子-D-Futrtru.sv.TenttYMVWX1igre29UlasctureofoppitacGleafcllsifecedwihJisolatesA:normalleafcellB:cellvacuolizationcellstructuresscatteredordisinteration;,g;C:membranehyperplasia(arrow);D:chloroplastexpansionandvacuolization(arrows);E:chloroplastmembranestructureloose,orevendisappear(arrow);F:vrusilnrzoneinthevalizipartceseichedcuoedcell;CH:chlorolastCW:cellwallM:mitochondriaV:virusarticlesp;;;p45 广西大学?博士学位论文中国浪山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究2.3.9受YMMV侵染的桂淮5号叶片的细胞病理变化取生长中期的受YMMV南宁分离物侵染的桂淮5号叶片进行细胞病理超微结构观察,结果发现感染YMMV的桂淮5号叶片的细胞严重空泡化,叶绿体膨大,增生(图-2-(10C10B);部分细胞的叶绿体周边产生大量病理性囊泡结构图2);还有些叶绿-,10D)也观察到叶绿体周边出现大体膨胀变圆,基质增多片层结构紊乱(图2;同时一-2-量病毒粒子(图10E);还在些细胞中的线粒体发生畸形,空泡化(图210F)。_罾變隱國2-图10感染YMMV的桂淮5号细胞超微结构变化:正常的叶细胞:,,A;B细胞空泡化叶绿体膨大增生;C:叶绿体周边产生大量病理性囊泡结构(箭头);D:叶绿体膨胀变圆,基质增多,片层结构紊乱;E:叶绿体周边出现大量病毒粒子(箭头);F:线粒体畸形,空泡化;CHCWMSV:叶绿体;:细胞壁;:线粒体;:淀粉粒:病毒粒子;--Fiure210UltrastructureofD.alatacv.GH5leafigcellsnfectedwithYMMVNC1isolatesArlellB:llvalizatihlorolhrli:nomalafcececuooncastexand,andeasa;,ppypp;C:alareamountofatholoicalvesiclessurroundinchlorolastarrows;gpggp()D:chlorolastexansionmatrixincreasedandthelamellarstructuredisorderpp,,;46 广西大本博士举位论文中国淮山药病毒病调查、诊断和病厥病毒分子生物学的研究E:alargenumberofvirusparticlessurroundingchloroplasts(arrows);F:mitochondriamalfortionandvacuotmalizaion;CH:chlorolastCW:cellwallM:mitochondriaS:starchrainsV:virusarticlesp;;;g;p2.3.10受YVX和YMMV复合侵染的紫山药叶片的细胞病理变化取生长中期的受YVX徐州分离物和YMMV徐州分离物复合侵染的紫山药叶片进行细胞病理超微结构观察,结果发现感染YVX和YMMV的紫山药叶片的部分细胞畸--还有些形和结构散乱(图211B)有的细胞严重增生,内含病毒粒子(图211C);;一(-D还有图21,E)细胞的叶绿体周边产生大量结构松散的泡状结构1;些细胞严重-畸形皱缩,细胞器解体(图211F)。調_mm2-MMV的图11感染YVX和Y紫山药细胞超微结构变化A:正B:C:细胞严重增生,内含病毒粒子常的叶细胞;细胞畸形、结构散乱;;D:叶绿体周边产生大量结构松散的泡状结构;E:叶绿体周边产生空泡结构(箭头);,细胞器解体F:细胞严重畸形皱缩;CH:叶绿体CW:细M:;N:细胞核;S:;V:;胞壁;线粒体淀粉粒病毒粒子47 广W大黎博士举位论文中国淮山苗病毒病调査、诊断和病屎病毒分子生物举的研究--ttlYlf-Fiure211UltrasrucureofcellsictedwithXZ1dYMMVXZ1isltgD.aatacv.ZeanfeYVXanoaesA:normalleafcell;B:cellmalformationandstructuresscatered;ferat-CitDllflikt:severecellroliionwithvrusaricles:aareamountofooseoamesructuresurroundin;ppggchlorolastE:vacuolarstructuressurroundinchlorolastarrowsp;;gp()F:severecellshrinkageandorganelledisintegration;CH:chlorolastCW:cellwallM:mitochondriaN:nucleusS:starchrainsV:virusarticlesp;;;;;gp24.讨论10YMV、JYMV、YMMV、目前己经报道的侵染淮山药的病毒超过种,包括CYNMV-、。、YCNMV、BBWV2DBV、DbBV、DLV和CMV等本研究采用深度测序技术对采自中国主要淮山药产区的具有典型病毒病症状的淮山药混合样本进行深度测序分析,从中检测出的病毒至少有9种,其中包括2种DNA病毒(DBV和YYSMV)-2和7种RNA病毒(YMMV、YVX、JYMV、BBWV、CYNMV、YLV和YCNMV)。YYSMV、YVX和YLV为本研究首次发现的新病毒。在广西和江西只发现DBV、YMMV和YVX侵染桂淮2号、5号和6号等桂淮系列淮山药,在河南和山东发现JYMV、BBWV-2、CYNMV、YLV侵染铁棍山药、太古山药和日本大和长芋等北方山药品种(见表_。26)113一提的是[]值得,YMV在非洲和美洲普遍存在,而且常造成严重减产,本研究并[m][8()一未检测到YMV侵染在中国种植的淮山药。而CMV和DLV¥前仅在南非些国家的淮山药有发现,本研究也未检测到CMV侵染在中国种植的淮山药。据国外研究报道DLV属于但是未见其核苷酸序列的报道,因此无法分析本研究发现的YVX与DLV的同源性。由于本研究采样范围集中在五个省区,分析样本量不大,是未检测一到YMV和CMV侵染淮山药的可能原因之,也有可能是中国与国外的淮山药种质资源交流比较少,这两种侵染淮山药的病毒还未传入国内,还有可能是中国当地的淮山药品种对这两种病毒有抗性。就我国而言,DBV和YMMV在全国各地均有发现,而其它一病毒的分布具有定的区域性,如目前YCNMV仅在云南和广西有发现。在河南和江苏。的淮山药上发现的病毒种类最多,均达到8种在调査中国的广西、江西、河南、山东和江苏等地的病毒病发生情况的过程中,发现不同地区不同品种的淮山药的病毒病发病率差异较大。其中广西和江西主要以种植参48 广西大单博士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究、薯和日本薯蓣为主,感染的病毒主要为DBVYMMV和YVX,而且这三种病毒共侵染的现象很普遍,甚至在部分田块的病毒病发病率可高达40%。河南、山东和江苏等北方省份主要种植铁棍山药、太谷山药、水山药、麻山药、日本大和长芋山药等普通山药品-2种,感染的病毒主要为DBV、YMMV、CYNMV、BBWV、JYMV、YLV和YVX。病毒共侵染的现象很普遍,其中紫山药易受YMMV和YVX共侵染,铁棍山药易受-YMVYYSMV、BBWV2、JYMV和YVX共同侵染,水山药易受J、YLV、YMMV和BBWV-2共同侵染。中国各淮山药产区根据各自的地理位置和气候特点选择种植的品,因而各产区种植的淮山药品种差异较大种,病毒病发生情况差异也较大。例如,2012 ̄年的田间调査发现江苏省宿迁市、徐州市和丰县的铁棍山药的发病率在19%37%之间,?5%6%?而徐农紫药和白药的发病率较低,在2%之间,其他品种的发病率在15%之间。有些淮山药老产区的病毒病发生情况严重,在山东寿光市稻田镇的部分田块的病毒病发病率高达100%。在南北方由于气候不同,种植的淮山药品种存在差异,淮山药病毒的种类和序列相似性存在差异,但是随着南方和北方淮山药种质资源的交流日益频繁,可能导致淮山药病毒的复合侵染现象更加普遍,病毒病的发生情况更加严重,对淮山药的生产威胁更大,因此需要在淮山药病毒病的监测和种质检疫方面予以重视。本研究发现粉蚧可传播YYSMV,而且存在多种田间寄主植物,应在生产上重视防控粉阶,同时注意清除田间杂草,特别是马唐、反枝觅、皱果苋和牛筋草等可传播YYSMV。的杂草今后还需要对侵染中国淮山药的病毒的寄主范围和传播方式进行研究,为防控这些病毒提供指导。-2不同淮山药品种受不同病毒侵染引起的细胞病变较为相似。BBWV、YMMV、JYMV和YVX侵染淮山药均可引起线粒体和叶绿体异常。线粒体异常可能与病毒侵染所需的能量有关,而叶绿体异常则是由于病毒侵染破坏了寄主的光和系统。在这几种病毒侵染的淮山药的叶细胞中均发现膜增生现象,通常认为膜增生结构是由内质网(endoplasmicreticulum,ER)衍生出来的。YMMV和YVX混合侵染导致的淮山药叶细胞病变程度加重,这与植株的花叶症状表现加重是相关的。目前国际上对病毒侵染的淮-2山药细胞的病理学变化研究几乎是空白,本研究从细胞和亚细胞水平展示BBWV、YMMV、JYMV和YVX侵染淮山药造成的病理学变化,为相应病毒的细胞学水平上的诊断提供参考,也为更深入地了解和控制这些病毒奠定了基础。49 广西大学博士学位论文中国灌山苗病毒病调查诊断和病康病毒分子生物学的研究、第三章中国淮山药病原病毒的分子生物学特性分析3.1引言测定病毒的基因组全长序列和表征其分子生物学特性是进行分子病毒学和分子流42[]行病学研究的基础。YMV是最早进行全基因组测序的淮山药病毒,在非洲广泛流行。Verdaguer等分析了6个YMV分离物的PI、HC、P3、Nib和CP区域,发现YMV存44一[]。M在种内的遗传多样性.Bousalem等进步分析了YMV的27个分离物的复制酶’’’b--(Ni)的3端、外壳蛋白(CP)和3非翻译区(3UTR)的遗传多样性,并提出YMV的起源和传播假说,认为YMV起源于非洲的几内亚薯蓣和白薯蓣的混合种,在进化过程中逐渐变异,最终独立传播并适应新寄主45参薯和三裂叶薯蓣[]Mm。.Bousale等还根据YMV的遗传多样性数据建立了YMV的39[]检测和分型的方法,可用于该病毒的分子流行病学研究。分子生物学研究显示,6566,[]有很高的遗传变异性,同样在侵染淮山药时也表现了丰富的遗传多样性,其中有两个株系(DaBV尼日利亚分离物和DsBV贝宁分离物)已经进行了全基因5859,一组序列测定[],序列比对分析结果显示它们之间在核苷酸水平上的致性只有61.9%。即使杆状DNA病毒属病毒的逆转录酶(reversetranscriptase,RT)和核糖核酸6365,115[,]11(41)〇1111(^〇861111^记11酶,)区域是高度保守的,要保证该病毒检测的可靠性,还是需要深入研究其遗传多样性。RNA病毒的重组在其进化和修复等方面至关重116一[]要,是病毒学研究的热点之。在马铃薯Y病毒属中重组发生特别频繁。病毒通过重组引起植物病毒自然种群的变化,甚至可以获得新的基因,从而増加对寄主的适应性117[]终能增强病毒的致病性和克服寄主的抗性从而扩大寄主范围。,最-本章主要阐述在深度测序获得的病毒序列的基础上,通过RACE和RTPCR技术获取侵染中国淮山药的病毒的基因组全长序列一,进步通过序列分析了解中国淮山药病毒的分子生物学特征,并对部分病毒的遗传多样性进行研究,为深入研究这些淮山药病毒的侵染、变异、进化和建立相应的检测方法提供重要参考。50 广西大学博士学位论文中国灌山苗病?病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究3.2材料与方法3.2.1毒源在广西大学亚热带生物资源保护与利用国家重点实验室的温室种植的采自全国各--淮山药主产区的感病植株,经RTPCR检测确认病毒类型后,挂牌标记(表31)。取°症状明显的带毒植株的新鲜叶片样本置于-80C保存备用。用于遗传多样性分析的毒源°-80C为各淮山药病毒的阳性样本,保存于。表3-1用于病毒基因组全长克隆的毒源Tabe-r-nl31Virusesusedfocloningtheirfulllethseuencesgq样本名称采集地点品种用于全长克隆的病毒D----111117NCYB31江西农业科学院桂淮6号YMMVNC1D----MV-110812WXXZTG3河南温县夏庄村铁棍山药JYWX1D---MV-120904FXSSY3江苏省丰县王沟镇水山药CYNFX1--NH----D110812WXZY1河南温县祥云镇紫山药YVXWX1、CYNMVWX1D----120903XZZY1江苏省徐州市徐农紫药YVXXZ1--D-DT-DHCY---110814SG1山东寿光市稻田镇大和长芋BBWV2SG1、YLVSG1D----120904FXTG22江苏省丰县王沟镇铁棍山药YYSMVFX1表3-2用于遗传多样性分析的YMMV分离物-Table32YMMVisolatesusedforeneticdiversitiesanalysisg病毒分离物采样时间采样地点侵染的淮山药种类Accessionno.AIsolatesseuencedinthisstud()qy8Luzhai2010广西鹿寨Z).o^oszYaJF357963/LZ12010广西鹿寨D.alatacv.GH5KJ789114?Nannin2010广西南宁D_oosiaWi51962gppt_aonicacvWM12010广西武鸣Djp_GlUKJ789121NCI2011江西南昌Z).fl/atocv.YB3KJ125476NC2201./.41江西南昌DaatecvYB3KJ12577>1NC32011江西南昌£.a/atacv.GH6KJ25473>NN.a/aa412011广西南宁£/cv.GH5KJ1257251 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究病毒分离物采样时间采样地点侵染的淮山药种类Accessionno.NN22011广西南宁cv.GH2KJ789115NN32011广西南宁D.fl/atacv.GY38KJ789116NN42011广西南宁D.atoacv.GY101KJ789117NN52011广西南宁Da/a.J7.tecvGYlOlK89118WX12011河南温县D.oppositacv.TGKJ125475.a/fltocvWX22011河南温县D.ZYKJ789122WX32011河南温县Z).a/atacv.ZYKJ125478WX42011河南温县D.oppositacv.lkGKJ789123WX52011河南温县D.oppositacv.TMiKJ789124WX62011河南温县Z).cwwiYac.TAGKJ789125p/vWX72011.oositacvK河南温县Dpp.TAGJ789126.oositacvAGKJ12WX82011河南温县Dpp.T7897SGI2011山东寿光D.oppositacv.miCYKJ789119SG22011山东寿光D.oositacvDHCYKpp.J789120FX12012江苏丰县D.oositcv2ppa.SSYKJ15474FX22012江苏丰县D.oppositacv.SSYKJ789113.alatacvTYKXZ12012江苏徐州D.J125478XZ22012江苏徐州D.a/atecv.BYKJ789128(B)PreviouslysequencedisolatesBrazil2009BrazilD.alataJX470965CN12014ChinaD.oppositaKC407674CR11999Costa.riRicaDtfidaAF548499-DaCDI19IvoryoastD.alataAJ305470Cmn2-DaC4CameronD.alataAJ305468-1GuineaD.alaaAJ305467DaGuitDaTog2TogoD.alataAJ305462-GhanaDDaUga1.alataAJ305460-anaDDaUga3Gh.alataAJ30545952 广西大学博士学位论文中圔31?山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究.病毒分离物采样时间采样地点侵染的淮山药种类Accessionnob--CameronD.carot456DrCmn11y.AJ305b--DrGuiGuinD.ca.rot.3054551eayAJ-ndG1IiaD.alataKJ463416Guad41998GuadeloupeD.trifidaAF548503Guad51998GuadeloueD.trifidaAF548504pGu11998FrenchGuanaD.tridaAF548506yyfi-DIndia3Da2008India.alataFJ390024-Ind.ia4Da2009IndiaDalataHQ231894Mart21998MartiniueD.alataAF548494qTogo22003TogoDioscoreadumeturumAF548527表3-3用于遗传多样性分析的DBV分离物Tab-le33DBVisolatesusedforeneticdiversitiesanalysisg病毒分离物采样时间采样地点侵染的淮山药种类Accession.noA)Isolatesseuencedinthisstud(qyFX12012江苏丰县£>.o/7/wwfteKJ854411GP12010广西桂平D.j叩onicaKJ854412LZ12010广西鹿寨D.alataKJ854413NCI2011江西南昌D.alataKJ854414NC22011江西南昌D.alataKJ854415NN12010广西南宁D.japonicaKJ854416NN22010广西南宁D.japonicaKJ854417NN32010广西南宁D.alataKJ854418SGI2011山东寿光D.oppositeKJ854419SQ12012江苏宿迁D.oppositeKJ854420WM12010广西武鸣D.alataKJ854421WM22010广西武鸣D.aonicaKJ854422jpWX12011河南温县D.oppositeKJ85442353 广西大学博士学位论文中国灌山药病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究病毒分离物采样时间采样地点侵染的淮山药种类Accessionno.WX22011河南温县£).〇即〇9此KJ854424WX32011河南温县D.dataKJ854425WX42011河南温县D.alataKJ854426WX52011河南温县D.oppositeKJ854427WX62011河南温县D.oppositeKJ854428WX72011河南温县D.oppositeKJ854429(B)PreviouslysequencedisolatesPG-a102dDaPpuaNewGuineaD.dataAM072675-PG117aDePauaGuineaD.esculentaAM072679pNewPG-Pa102aDapuaNewGuineaD.dataAM072674B394Ds2BeninReublicD.sansibarensisDQ822073_p-FFj60bDriiD.rotundataAM072659_j-PG117cDeua.escuenaPapNewGuineaDltAM072680PGl-lObDePapuaNewGuineaD.esculentaAM072677-PHllaDaPhiliinesD.alataAM072691_pp-uadeuiDBV8GlopeD.trfidaKF829952-FJ60aDrFijiD.rotundataAM072658_-SomonSB15bDloIslandsD.pentahyllaAM072695_pp-PGllOcDeaua.PpNewGuineaDesculentaAM072678-onSBlOaDnSolomIslandsD.nummulariaAM072692PG-Pa102cDapuaNewGuineaD.alataAM421690表34用于遗传多样性分析的YYSMV分离物b-Tale34YYSMVisolatesusedforeneticdiversiitiesanalssgy病毒分离物采样时间采样地点侵染的淮山药种类Access.ionnoWX12011河南温县D.oppositeKJ854430WX22011河南温县DitKJ854431.opposeWX32011河南温县D.oppositeKJ85443254 广西大学博士学位论文中国乘山苗病毒病调查、诊断和病尿病毒分子生物学的研究病毒分离物采样时间采样地点侵染的淮山药种类Accessionno.WX42011河南温县D.oppositeKJ854433WX52011河南温县D.oppositeKJ854434SG12011山东寿光D.oppositeKJ854435LZ12011广西鹿寨AowcflKJ854436y印FX12012江苏丰县D.oppositeKJ854437表3-5用于遗传多样性分析的b-Tale35irusdfotidirsitiesanalsisBegomovuserenecveyg病毒/采样采样地点寄主植物Accessionno.分离物时间CYVMV2005Grenada:ParadiseCrotonbonplandianumAJ507777IndiaMaYSV2011China:FuianPhaseolusvulgarisKC004115jBR:Oaf7:llFPSLDV2001IranPassijloraedulisf.J972767BR:LNS2:Pas:01flavicarpaPYMV2007Brazil:MinasGeraisSolariumlycopersicumFR851299Grenada:Paradise:2007RaMoV2006Brazil:PernambucoNicotianatabacumEF125190F3TCTV2009GrenadarParadiseBrassicarapaGU456686IR:Homl:2k:09TGW2004China:FujianSolariumlycopersicumJF803259DFBR:Ara3043:04[g]ToICV2004IranSolariumlycopersicumJF803252PEBR:Mdc2681:04[]55 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究3.2.2生化及分子生物学试剂复杂植物基因组DNA提取试剂盒(SurePlantDNAKit)、植物RNA提取试剂盒urlantxaMasterM(RNApePKit)和2ESTqix(含染料)购自康为世纪公司。高保真cDNA’合成试剂盒(TranscriptorHighFidelitycDNASynthesisKit)和573RACEKit(2nd?Generation)购自Roche公司。SMARTerRACEcDNAAmplification试剂盒购自?TAKARA公司。Phusion热启动DNA聚合酶II、GeneRuler100bpDNA???LadderGeneruler、GeneRuler1kbDNALadder和Generuler1kblusDNAladder和p?3£/15T-BluntKit-T4DNA^接酶购自ThermoScientific公司。>Clonin和TranslT1感受态/g?-细胞购自全式金公司。琼月I^BIOWEStRegularAgaroseG10购自BIOWEST公司。GelRed?核酸凝胶染料购自BIOTIUM公司。柱式DNA胶回收试剂盒(E.Z.N.AGelExtractionKit)购自OMEGA公司。质粒DNA小提试剂盒购于天根生化科技有限公司。TruSeqRNASamplePrepKit(V2)购自Dlumina公司。MinElutePCRPurificationKit、IAuickPCRPurificationKit和QqQIAquickGelExtractionKit购自QIAgen公司。其它试剂为进口或国产分析纯。3.2.3引物根据深度测序获得的淮山药的病毒序列信息设计病毒基因组全长克隆用引物,引物3-6序列信息见表。在生工生物工程有限公司或Invitrogen公司合成。表3-6用于淮山药的病毒的基因组全长序列克隆的RACE和PCR引物Tab-rsundPCRle36PrimesedforRACEaamplification’,PrimerSe-Pquence53roductssizesb(p)YMMVUPMctaatacgactcactatagggcaagcagtggtatcaacgcagagt--YMMV51Rcgccagaaagtgtccgctagtagtggatggtgctataac950NUPaacattatcaaccaatggggggg’YMMV-5-2Rcaaactcacaaac?gttgcgtgttctgtt900YMMV-2FccaatggtatagcaccaatccaYMMV-2Rcaccaatccaaccgttctctg2334YMMV-3FggatgaggactggtgttaggatYMMV-3Rtgactacggaatgtggtattgc1947YMMV-4Fccagggggttcttgagtt-4RtYMMVctgttccagatccatgagtagtt221456 广西大学博士学位论文中国淮山箱病毒病调奎、诊断和病尿病毒分子生物学的研究’9Priuence5-3ProducibmerSeqtsszes(p)-YMMV5Faagcagcacaccatcagaac-5RYMMVtccgaagagcgtattcagagat1517YMMV-3FaaaaMgggggcggattgttgcN 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广西大学博士学位论文中国逢山苗病毒病调查诊析和病尿病毒分子生物学的研究、’,uence-PrimerSeq53Productssizesb(p)N?1accacctatcattcac1300ggggggUPMctaatacgactcactatagggcaagcagtggtatcaacgcaatgg,BBWV-RNA2---115lRcctgtgcatcggaaagtaaatgacgtgtgagggaact50NUPaagcagtggtatcaacgcagagt,----BBWVRNA252Rtcagccttggctcgaattctatcag1000BBWV--2FcaaRNA2gcagtggtatcaacgcagagt-BBWV-RNA22Rtcagagccaaattcccatacaaca3364g--MBBWVRNA23FttttttttagcccagaggtggaacccN?1gaccacgcgtatcgatgtcgac1200YVXUPMctaatacgactcactatagggcaagcagtggtatcaacgcagagt,YVX-5■R-1aatggttggcacctagactttcaatcatttggcatgtgatgtag900NUPaagcagtggtatcaacgcagagt’YVX--2R ̄5gggtgttggatctgagggattgt500-YVX2FacatacccatgccgcctgtaaagYVX-2Rcaccccc1gttgtgttgagattgat379-YVX3FcgtccgccgtcgaagttcaaYVX-3Rcacctcaatctcttactctc2771gggg’YVX_3-1FtgctcgtcgttctctggctgcN-1gaccacgcgtatcgatgtcgac600,YVX-3-2Fcctcctgctaactgtctctctcggaccacc?N1gggtatcgatgtcgac500YLVUPMctaatacgactcactatagggcaagcagtggtatcaacgcagagt5YLV-5-?lRtcaccttccagcgaccagttgagcacatc1450NUPaacattatcaaccaatggggggg'YLV-5-2Rtct?gggggtatccttcactcctt850-YLV2FcgcctcggacgaattgttcaagYLV-2Rct2812gtgtaccacttcgcatcattgtYLV-3Fcaacggaggtgcgacgatca-YLV3Rgaactttccacggatgacccaatc2208YLV-4FgcagcgaccattgagaatcatagtgYLV-4Rtcttacacacaattacaatct2787ggggg-5FcacYLVggcggttggtacaagga-YLV5Rggagtggatggtatcacctcagtt1648YLV-31Facccacccaagagtcaaagtcag58 广西大学博士学位论文中国淮山箱病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究,’PrimerSeence5-3Productsqusizesb(p)N-1gaccacgcgtatcgatgtcgac1350YYSMVYYSMV-Fcc1tcaatctttcctcagtttatggggYYSMV-1Raacttcaccaaatatccttcat1196gggg-YYSMV2FttgaggcgttagcatacacagttgYYSMV-2Rcacattacatacac4ggttttcc208ggg3.2.4核酸提取方法淮山药的DNA提取方法见2.2.5RNA提取方法见2.2.6。,32-Se深度测序..5RNAq采用TraSeRNASamlePreKitV2cDNA文库,操作步骤略qpp参照操作说明书构建有改动:°预热PCR仪至65CPCR薄壁nuc-,在200管(leasefree)中稀释总RNA至50L叫卩,°65C温育5m1-置于in,然后迅速置于冰上冷却。分装5pL磁珠(SeraMagolio(dT)gbeadsmlc-)于1.5离心管(nuleasefree)。用100jLBeadBindinBufer洗beads两次,|g小心移去上清。用50aLBeadBindinufer重悬磁珠,加入前面步骤获得的50L总|gBnRNA样本。将装有样本的离心管置于垂直混合仪上,室温旋转孵育5min。用200pL-WashingBufer洗两次并小心移去上清。加入50pL10mMTrisHCl于磁珠中,置于80孵育2min,将mRNA从磁珠上溶解下来。立即将离心管置于磁力架上,转移上清(mRNA)至备有50jiLBindingBufer的新的离心管中。不要丢弃使用过的磁珠。将样本°一放在边,用200吣WashingBufer洗涤磁珠两次。将样本置于65C水浴锅中温育5min以打开二级结构一,然后迅速置于冰上。将上步获得的样本再次加入到洗过的磁珠中,在室温垂直混勾5min,然后小心移去上清。用200pLWashingBuffer洗漆两次并小心°移去上清L-C。加入17p10mMTrisHCl于磁珠中,置于80孵育2min,将mRNA从磁珠上溶解下来。立即将离心管置于磁力架上,转移上清(mRNA)至新的200xL薄壁jPCR管中。最终获得的mRNA的量大约为16gL。°C预热PCR仪至94。在200pL薄壁PCR管中加入4pL5XFramentationBuferg°C预热的和16nL的前面步骤纯化的mRNA,体积为20吣。在94PCR仪上孵育5min。加入2pLFragmentationStopSolution。将PCR管置于冰上。将溶液转移至新的1.5ml59 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究-心管中Rnasefree离。加入2L3MNaOAC(H5.2)、2LGlcoen和60jL100%乙醇,nppyg(°°--80C沉淀至少30min。C。混勻并置于如在此步骤暂停,可将样本置于20保存其余步° ̄0>骤不可暂停。在4,140001!120200^25111丨11。小心移去乙醇,避条件下,印(,)离心免吸走沉淀(沉淀可能透明不可见)。加入300nL70%乙醇洗涤沉淀,12,000rpm离心吸走70%乙醇-心1min。室温千燥10min。用11.1LRnasefreewater重悬RNA。,小pandomrimers和mRNA在200pL的薄壁PCR管中加入1RP11.1pL,总体积为°然后迅速置于冰上12。65C的PCR仪上温育5min。设置PCR.1吣将样本置于预热的,°C一x仪至25。在另管中加入4pL5FirstStrandBufe、2pL100mMDTT、0.4pL25mM11(?^?1^;和0.5叫111^6111111^〇1:,总体积为6.94。混勻后将样本置于?£1仪中,25°°C孵育2min。加入1pLSuperscriptII于样本中,并按如下程序进行反应:25C反应10°°°min,42C反应50min,70C反应15min,然后降温至4C后将样本置于冰上,获得cDNA一链文库第。°C一预热PCR仪至16。加入62.8pLultraurewater与第链cDNA合成mix。在pmix中加入10pLGEXSecondStrandBufer和1.2pL25mMdNTPMix,混匀并在冰上L°孵育5min以上。再加入1nRnaseH和5吣DNAPolI,混合均匀并在16C孵育2.5h。用QIAquickPCRPurificationKit纯化样本并用50的QIAGENEBbufer洗脱。此叫"一sDNA-C或者继时,20,样本已经是d可以将样本保存于续进行下步。°C-MixL将PCR仪预热至20。在1.5mLRnasefree管中准备下列试剂的:27.4x(Water、10iL10XEndReairBuffer、1.6|xL25mMdNTPMix、5pLT4DNAPolmerase、|py1pLKlenowDNAPolymerase和5nLT4PNK,分装至装有ElutedDNA(50吣)的PCR°1aL。20C的PCR30min。IAuickPCRPurifiti管中,终体积为00仪上孵用caon(在育QqKit纯化样本,并用32L的QIAGENEBbuffer洗脱。p-L-在1.5mlRnasefree备下列试剂的M:5ATailinBuffer、101mM管中准ixng’’dATP和3fiLKlenowexo(3to5exominus),分装至装有ElutedDNA(32pL)的PCR管°中,终体积为50^L。在37C的PCR仪上孵育30min。用MinElutePCRPurificationKit纯化样本,并用23iL的QIAGENEBbufer洗脱。jmlRnase-freeMix:25^L2xRaidT4DNALiase在1.5管中准备下列试剂的g|pBufer、1iLPEAdapterOligoMix和1pLT4DNALigase,分装至装有23吣ElutedDNAj的PCR管中,终体积为50pL。室温孵育样本15min。用MinElutePCRPurificationKit纯化样本并用10叫的IAGENEBbuffer。,Q洗脱60 广西大学博士学位论文中国淮山充■病毒病谲査、诊断和病康病毒分子生物学的研究x用distilledwater和1TAE制备50mL的2%琼脂糖凝胶。按照下列顺序加样:第一0Lx孔加入1p100bpDNALadder。第三孔加入10LDNA和2L6DNALoadinppgDye的混合液。第五孔加入10pL100bpDNALadder。以此类推。120V电泳60min。在200bp(±25bp)范围内切取胶块。用QIAquickGelExtractionKit纯化样本,并用30卩L的QIAGENEBbuffer洗脱,获得纯化的ligationmix由于回收的片段较小,需在Bindin(gbufer中加入异丙醇)。在200L薄壁PCR管中准备下列反应液:10iL5xPhusionBufer、1PCRhfpLPrimerPE1.0、ljiLPCRPrimerPE2.0、0.5pL25mMdNTPMix、0.5pLPhusionDNAPolymerase和7pLWater,终体积为20pL。加入30gL的纯化ligationmix于200i^L°卩01管。用下列?011程序进行扩增:98〇反应3〇36(;;981:1〇86(:,6513〇36〇,°°°72C30sec1572C反应5min4C。用QIAuick,个循环;最后在;反应结束后降温至qPCRPurificationKit纯化样本,并用30吣的QIAGENEBbuffer洗脱。即为测序用的SmallRNA的cDNA。文库取lpL的重悬样本于AgilentTechnologies2100Bioanalyzer上,用DNAspecificch-ip(例如AgilentDNA1000)进行检测。电泳检测样本的片段大小、纯度以及浓度,最终的产物大小应该在200bp(±25bp)。或用Qubit检测文库的DNA浓度。-x使用IlluminaGAIIX测序仪进行双端测序(PairEnd),测序读长为281,上机操作步骤见2.2.13。3.2.6逆转录反应?2总RNA为模板cDNAodT取1,使用高保真合成试剂盒及01i()引物或病毒ngg18的特异性引物进行反转录合成cDNA。操作步骤参考该试剂盒说明书:一-se-ee(取个1.5mL离心管(nucleafr)置于冰上,加入如下试剂:总RNA200400ng/VL)5吣,01igo(dT)18引物(50pmol/nL)或病毒的特异性引物(10pM)1吣,°立即置于冰上冷却?〇^^(^\\^615.4叫,混勻后短暂离心,于65(:孵育10111111,。xH依次加入:5TranscriptorighFidelityReverseTranscritaseReactioonBufer4iL,40pjU/iLProtectorRnaseInhibitor0.5xL,10mMdNTP2iL,DTT1L,TranscritorHihjjf^pg°FidelityReverseTranscriptasel.l^L,混勻后短暂离心,于50C解育30min,转置于85°C-。孵育5min,将反应产物置于冰中冷却终止反应,立即使用或保存于2(TC61 广西大学博士学位论文中国灌山苗病毒病调查、诊断和病屎病毒分子生物学的研究3.2.7快速扩增cDNA末端,?cDNA:SMARTRACEDNAAmlifiti快速扩增5末端使用ercpcaon试剂盒,按。说明书进行操作,略有改动一x-rst-randBuffer取个200iLPCR薄壁管(nucleasefree)加入以下试剂:5FiSt2(jiL,20mMDTT1叫,10mMdNTPMix1pL,混勻并短暂离心,放置在室温作为一^-入以下试剂?BuferMix待用。H〇0LPCR薄壁管(nucleasefree)加:RNA12取p.75’L-x(可加入1LofControlMouseHeartTotalRNA1i/L作为阳性对照),5CDSjp(fgp)°PrimerA1L入Ultraurewater至总体积为3.75xL,72C孵p,加混勻并短暂离心;于pj-育3min转至42C孵育2min。于14000x1〇sec;SMARTerIIAolio,g离心加入,gl|iL;依次加入BuferMix4pL,40U/pLRnaseInhibitor0.25pL,100USMARTScribe°°ReverseTranscritaselxL,轻柔混匀并短暂离心于42C解90min,于70C0p;育孵育1|一-m-in停止反应100TricineEDTABuffer稀释上述第链cDNA产物,保存于20;用pL°C或直接进行以下PCR反应。配制5〇nLPCR反应体系:依次加入ddH2O30^L,5xPhusionHF缓冲液10卟,10mMdNTPMix1Phusion热启动DNA聚合酶II2U/L0.5L混勻叫,(^)p,轻微振荡,短暂“”混合物-离心,标记为。按照表37加入如下试剂,PCR反应程序如下设置。’表--RACE375反应*T--RACEnable375reactio组分反应体系,-RACE样本G+GUPM5SP1SP2PC)(NC)GSP1(NC()2.L2cDNA5\L2.5.52.5iL\p[UPMx-5L?105L^()mGSP-1(10_l^L1^iL1GSP2---101L(_n’5-1引物0----狀〇£丁?1(1_dd0-LH24i1iL5iLjfi混合物41.5L41.5L41.541.5iLpp^50pL5050iL50L总体积fp62 广西大学博士学位论文中国灌山?病毒病镧查、诊断和病康病毒分子生物学的研究’’快速扩增3cDNA末端RACEKit(2ndGeneration),按说明书进行:使用573。操作,略有改动在20卩iddH〇RNase-Free,415xDNAsnthesi1的体系中加入7p2()卩的cys,,-bufer1NIT10M5GACCACGCGTATCGATGTCGACTV-35,()()),总…n(170RNA(约onolneo-iD1pg,可加入CtrRNA)和2peoxynucleotidemixture,1pi°°TranscriptorReverseTranscriptase,混勻,55C反应60min,然后在85C反应5min使逆°一。用-fferc-转录酶失活100MLTricineEDTABu稀释上述第链DNA产物,保存于20C或直接进行以下PCR反应。x配制50LPCR反应体系:依次加入ddH2030iL,5PhusionHF缓冲液10pL,pj10mMdNTPMix1nL,Phusion热启动DNA聚合酶II(2U/jxL)0.5nL,轻微振荡混勻,“”-短暂离心,标记为混合物。按照表38加入如下试剂,PCR反应程序如下设置。’表--RACE383反应’Tab--RACEle383reaction组分反应体系’3-PoRACE样本sitiveControlNeativeControlgcDNA2.5^iL2.5^iL2.5Nl(10_1l\iL1-neo3-/for1--GSP1(10iM1iL|)\’---■3RACETF1I^^0^M()ddH0-?L21ii混合物45.5iL45.5L45.5iL^pj总体积50吣50xL50iLjf°?°PCR反应条件:98C预1min98(:ec60C退15(为变性;变性10s,火sec根据引物°一Cmn ̄Tm值调整退火温度),72延伸1i(根据片段长度调整,般1530sec/kb),30°个循环;72C延伸5min。PCR产物于1%(W/V)琼脂糖凝胶进行电泳分析。如果PCR产物特异性差cne-er,可以用TriiEDTAbuff将PCR产物稀释50倍作为模板,继续进行巢式PCR。63 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病尿病毒分子生物学的研究3.2_8PCR反应扩增基因组全长 ̄hu取L的DNA(HMOOn)或cDNA(l50n)作模板,使用Psion热启动DNA1Hgg聚合酶II进行PCR扩增,50pL反应体系为:模板1jiL,10上游引物2.5吣,xlOpM下游引物2.5pL,5PhusionHF缓冲液l〇nL,lOraMdNTPslHL,Phusion热启动DNA聚合酶II(2U/L)0.5iL,PCRGradeH2032.5L。pjn°°°PCR反应条件为:98C预变性1min;98C变性10sec,55C退火15sec(根据引物°一 ̄Tm值调整退火温度),72C延伸1min(根据片段长度调整,般1530sec/kb),30°个循环;72C延伸5min。PCR产物采用浓度为1%的琼脂糖凝胶电泳检测。3.2.9克隆及测序方法-Bran-通过凝胶回收目的PCR产物后,与坪必rlunt载体连接,转化大肠杆菌TslTl感受态细胞,挑取转化子,通过菌落PCR鉴定阳性转化子,提取阳性转化子的质粒并进行相应的限制性内切酶消化,凝胶电泳分析酶切产物大小是否正确,选择鉴定正确的重?组质经生工生物工程(上海)有限公司测序分析,获得的序列采用VectorNTIAdvance11软件进行比对分析。3.2.10重组分析首先用ClustalW软件对病毒基因组序列进行比对,保存为.meg格式的序列比对文118RDP[]件4(RecombinationDetectionProram,RDP),,然后将该文件导入重组分析软件g11912)121([][][]用该软件包中的7个重组分析算法(RDP、GENECONV、BOOTSCAN、122123124125MAXCH[][】[][]I、CHIMAERA、SISCAN和3SEQ)分别进行重组事件分析。_va分析过程使用系统默认参数,设定置信值(Plue)为0.05。重组分析结果中有4个以6“x上的重组分析算法支持的重组事件.〇T,并且P<ll(时该病毒分离物才被认为存在明确”“”的的重组位点(clearrecombinationsites),否则为暂定的重组位点(tentative126127一[,]recombinationsites)。非重组的病毒分离物如果有部分序列与重组的病毒分离“”物的序列相似,则该非重组病毒分离物为相应非重组病毒分离物的亲本分离物(parentalisolates)〇64 广西大学博士学位论文中国液山苗病毒病调查、诊断和病屎病毒分子生物学的所究33.结果-3..31RNASeq深度测序我们在对淮山药样本进行病毒检测的过程中发现有9个淮山药品种的样本具有典型-发现的所有病毒种类(见表3-9。(31))由于小病毒病症状见图,并包含本研究所RNA测序读长较短,,组装获得的病毒序列信息有限不能完全覆盖病毒基因组,为了一获得这些病毒的更多的序列信息,用于进步克隆这些病毒的基因组全长序列,我们对RNA-Se测序这9个样本采用q深度,测序获得的序列去除接头和去除低质量序列(Trimming)后,用Trinityassembly算法进行Z)e?ovo组装获得Contigs,将其与NCBI的病毒序列数据库进行BLSAT分析-PCR只能检测到桂淮2号样本中。结果发现用RT一存在JYMV-Se,而通过RNAq测序分析,发现其中个Contig与YVX在核苷酸水平一一8一的致性最高为2%,但是覆盖度只有11%,推测其可能是个新病毒,需要进步验证。在桂淮6号样本中获得了YMMV的近全长序列,与最近报道的YMMY巴西分离一enBan651)>k.cv.B物(G:JX4709.在核苷酸水平上的致性为83%。粤北3号(£Y3)样本中获得的YMMV的近全长序列与YMMV巴西分离物(GenBank:JX470965.1)在一83%核苷酸水平上的致性也为。另外还发现粤北3号样本中存在的YVX与凤果花叶'an病毒US1分离物(■Pe/wTJOTMfwafcv/ms,PepMV,GenBk:FJ940225.1)在核苷酸水平一>69%一〇如〇^>?1上的致性为,是个新的/5病毒。紫山药样本中获得的¥\0(的部分序’列与黎花叶病毒X(CAemjpcx/iMw/wojaicv/myX,GenBank:DQ660333.1)在核苷酸水一致性为一平上的87%,但是覆盖度只有13%,推测其可能也是种新病毒。在徐农紫药(Z).a/atocv.ZY)上获得YVX的近全长序列,与?PotecWnw白三叶花叶病毒日本分离teYecWmenank:物(?PocWmsw/n/overwoja/cs,WC1MV,GBX06728.1)在核昔酸水平一一致性最高为77%25%的序列能够匹配上,因此也有可能是。上的,但是只有个新病毒在水山药(Z).〇沙〇汾acv.SSY)和大和长芋上均获得YLV的近全长序列,都是与酒花花叶病毒澳大利亚分离物(ifop/nowncvims,HpMV,GenBank:EU527979.1)在核苷一致性最高为77%BBWV-2的全长基因组酸水平上的。而在铁棍山药上除了获得序列夕卜,还获得了YYSMV的部分序列,其与百香果严重畸叶病毒BR:LNS2:PaS:01分离物>-(/〇^〇?1治5^^^/6<2沿对〇/?/〇;1仍>1?)^〇6118£111](:?1972767.1)的核昔酸水户/,?81^1\,一一平上的致性最高为69%盖度为58%,是。,覆个新的菜豆金色花叶病毒属病毒65 广西大学博士学位论文中国灌山充■病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究表3-9用于RNA-Se度测序的淮山药样本q深Tab-u--le39YamsamplessedforRNASeqdeeseuencinpqg样本名称采集地点品种RT-PCR检出病毒种类GH2-WM-2广西武鸣县桂淮2号JYMVGH6-NC-1江西农业科学院桂淮6号YMMV--YB3NC1江西省南昌市粤北3号YMMV、YVX-ZY-1河南温县样云镇紫山药YVXWX、CYNMV--ZYXZ1江苏省徐州市徐农紫药YMMV、YVXSSY-FX-3江苏省-2丰县王沟镇水山药YMMV、YLV、BBWV、CYNMV、JYMVDHCY-SG--LV1山东寿光市稻田镇大和长芋BBWV2、YTG-WX-3河南温县祥云镇铁棍山药JYMVTG-FX-22江苏省丰县王沟镇铁棍山药YYSMVBBWV-2、66 广西大举傅士学位论文中国浪山葯病毒病调音、诊断和病康病毒分子生物学的研究,顯声s顆]VyLI處3-RNA-e图1用于Sq深度测序的淮山药病毒病样本症状表现:2,、花叶:6,:3,A桂淮号黄斑;B桂淮号轻花叶;C粤北号褪绿花叶;D:紫山药,:,,褪绿花叶;E:徐农紫药斑驳;F水山药褪绿花叶;G:大和长芋,皱缩畸形;H:铁棍山药,花叶;I:铁棍山药,黄斑、花叶F-mRNA-iure31SymptomsofamviraldiseasesalesusedforsegypqAD.aonicav.Hwtmoac.aatav.Hmdmosa:jpcG2ellososiB:DlcG6ilic,yp,;,;C:D.alatav.YB3chloroticmosaicD:D.alatacv.ZYchloroticmosaicE:D.Alatacv.ZYMottledc,,,;;;F:D.Oppositacv.SSY,chloroticmosaic;G:D.Oppositacv.DHCY,Malformation;H:D.oppositacv.TG,mosaic;I:D.oppositacv.TG,yellowspot,mosaic67 °zc鉍£s穿s0lIl■1l一l1lll1°1..1l.....rIrI-rsuTo.卜69-L690--£v0卜-l1ss0e8oe8寸5s99sl釙sSil06-&o6-S--660S/z0S0oZs^o卜99ou50s1sl9z^--弇1L9/af0寸SgsKSsoKs-q56al^钳n8&Sxfsl0xu'xaaa8naaaHsV1HadXMKfvvvavvvEV「「*vrV中为-"#spl礙O。。。。。x?r/\/%%%0%%%%/%%%%O/0%%。%。/0%0/168L1r0>s卜t19806晓2寸8ss298S8LI68US8S6口88698犋兵0-9£89cS1对右0'Z9'1T0-00-0000070o0C000-...........隹33u-。-^03002Zz寸000000c0o000与3'J砌IMOO^x3\。X0000。%o。%0。^0a%%%\%\/0o%°%\%coo%00。峰n°669£0o£6寸00二9鵂o5661slss—l_卜一1I5l-泛—搲rrUMMu#2p°iu>aS;n9--S°"lZi-bLr.sSeM^..96e8eSsL-93-90e....r.-s2S90s9寸-W..0sX-sL-U=-?d>262/-9s8zg0586i03X-1U69s6-S90so92-a->-Ve寸G9£ess£sSNW3elS1e2apxSqPsuSJ}--pz1OS.u6-8寸父1odz69—-SSo々S对S卜9sK"sg0-0-S656e'-0&i姿e0919S88165o1SS/^9s2e9—)i900寸--us98£gz寸-s3l5s^1,Z9寸Ss^s'5fqA-lSKETJTIAau'-ddd--addd-ddddaddd------usqq-°qqqqqqqqqqqqJat°^°l8ss-X8-6-e6寸6-JU-Jl寸9a--寸-6es6"6KJa^gsZ.-g-pss6./^50y696&996sss006s一begG寸lpEq^OlJJKIT°-&a°-s-addd&-d---dddddd--^aqqqqqqqqqqqqqqqqul—l996°9〇g寸-l〇寸---uu°n°二Ss869〇ao5-寸Z.12lS—S6-s6寸Lnu66i9寸19ssS2ss86¥I8e5bos^aI3IEVVv<ZzoNuS>iIyAa>-->A--sIAS>A>ASAAII^>>WIsIiXXAZnlXNxMMAiMsMSMsi^yl>i>A5>MHHH1AH2aAAAAA>AAA°^8rAAA3?AH8AArarfA3EdjoMJ1备u'-a1'9s-elSs扫E—33'-XX-XU-MMNzH部-AAxd-.-Mx-UVld-9l--A--屮u1yBSAASHDcZ55AZNSUX痺xQ釙I-v--saqcEz3u卜V8uG丄0H1 广西大掌博士学位论文中国淮山药病毒病供查、诊断和病風病毒分子生物学的研究3.3.2YMMV南昌分离物的基因组全序列测定及其分子生物学特征分析-NC6淮山药温和花叶病毒南昌分离物(YMMV1)来自在江西农科院采集的桂淮-号样本,症状表现为轻度花叶(图31B)。经高通量测序组装获得该病毒的近全长基-PCR和RACE技术进行克隆验证高因组序列,根据获得的序列信息设计引物,采用RT3-2通量测序结果,克隆策略见图。CE和RT-PCR对YMMV-NC8b、经RA1进行分段扩增,依次获得大小分别为92p-32334b、1947b、2214b、1517b和1290b的片段,凝胶电泳分析结果见图3。ppppp-EASY-B回收纯化YMMVNC1的6个片段,分别连接至plunt载体并转化感受态细YMMV-胞3个。测序拼接结果显示,NC1不,随机挑取阳性克隆的质粒进行序列测定包含Poly(A)的病毒基因组全长为9538nt(GenBank:KJ125476),包含1个大的ORF,一一编码3084aa的多聚蛋白351.27kDa,以及1个小的ORF,编码个,蛋白分子量为128[]提出的马铃薯Y病毒科的多聚蛋白切割位点个67aa的PIPO蛋白。参考人(1〇1113等预测标准和植物病毒简述网站上对马铃薯Y病毒属病毒多聚蛋白切割位点的统计分析DescritionsofPlantViruses,ht^)://www.dpvweb.net/potycleavage/),并结合NCBI蛋白质(p-NC1的多聚蛋白酶切位点进行预测功能预测,结果发现该多聚蛋白,对获得的YMMV(-32):可被毒自身编码的蛋白酶切割成10个病毒蛋白见图,从N端到C端依次为P-)K1(、I(6aa、6K21(320aa)、HCPro(457aa)、P3(348aa、651aa)C43)(52aa)、a(19、NlaP240aa)、Nib(516aa)和CP(266aa)。NIVPg1aa)ro(-HCPro中存在FRNK基序,这在,在Nib中存在GDD基序,在CP中存在DAG基序3-2些保守的基序都是特有的(见图)。将预测的蛋白酶切割位点与本实验室克隆的7个YMMV分离物和已报道的YMMV巴西分离物以及新近登录NCBI的YMMVCN1分离物进行比较,发现来自不同地方不同品种的YMMV分离物的蛋白酶切割位点-11)的氨基酸序列存在多样性(见表3。,可能与病毒的变异和宿主适应性相关69 广西大举博士举位论文中国淮山苑病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物掌的研究FRNKmotifGDDmotifDAGmotifP.IP06K16K2v,3’5i____Ln_Jr一一VP-roVP-P1HCP3ClroAflgPlgNaPNibCPtuU—H1,Fragment1Fragment3Fragment5--0.9kb2kb1卜,5kb)()()---????-,UPM5--RACEYMMV3FYMMV3RYMMV4FYMMV4RmerprisFrament2Frament4Frament6ggg---...(23kb22kb13kb)()()’YMMV-2FYMMV-2RYMMV-4FYMMV-4R3RACEN1TNprimers13-2V-图YMMNCl的基因组结构和全长序列克隆策略-F-igure32GenomicmapofYMMVNC1andthestratetoamlifandseencethecomleteenomegypyqupgM16M2345-----'nrfr;rr2f1.5kb—1.5kb07kb—.07kb.I■IHi3-3-图YMMVNCl的基因组序列分段PCR扩增电泳图lkbALM:GeneRulerlusDNadderp;’’??ACE16:YMMV基因组序列分段扩增的片段1片段6(1和6分别为YMMV的5和3R产物)--Figure33GelelectrophoresisanalysisofPCRproductsamplifiedfromYMMVNClenomegM:GeneRulerlkblusDNALadderp;’’??1:nt1V5RAtYMMV6fragmes6ofYMM(&3CEproducsof)70 -lno£cMr2£-2A盖l義iss麵ss_zsSXssirJvvvvvvv<ssvz^SA鉍/、///^v///Vvu./Oaf'dacyaaacyOa}穿cuHHHHH6HHIHHHr>i5/lIllHl-mAS§u\lAz^//>>aAAA>rnz?\>;.q.-All?xl???JAs钋l寸rq0zaaaaaaaaa5ll35「#l&.04tl>1/-趔Sr0sssSsSssst2sS目屮ssSssssss;^QqlggSssorlsssfJp5i、//、//I、-s、f/-欠SlNy/a6aaa>aa0c_:§la6^-5(蛛mg33333H35wy_tsJ27CQA>>>,/°>a^2_联rt>?A?>>?>?>>>7gca.ylJJdda.ddfcJ5ID..d?o嗥:llC>A>>>>>.s_3N)NIHJ胺nldIjX兵mu2S(u-J---来M--"srti^§<右-S?sIe-Eg^I ̄I(n(aAIi§isE隹fiO:00o/DOD-)c/)/////CQSs//3/3333m3aSJu3^333l寸-cHhHS3S1JHHH'.H...-H1oJNmI1.ll.E(Al..LN0A.//A1XoAV)l>AV>>>Alp铒-i-lxLM-l0l11l(^2胺NsdSdSsSsslMx§>=^d"3跦ac-rNPpp名rt>ss3slSsscxs3-i一-2----i^塒謹BmIrsucu0oocoQDacajoDV_///-u抝>///////As:Hlyr-5aaa5acycyIcgcfse0-pI5sAl1H^-H3lHHHH:HIsc=,'---A-M*<.)^_餅°51Xlff(hH14A/>>>A>A(N\AA>A「t:>u&B2>(lsSa1lSsS/sSSuzep3gU3Su3,M3H33J!9G—Bfr力TnSz^nJlo0=o=s5l0qBodssgssIci年N-lI-i----liSsi.EngSg5gss(u///'、/^^、、—^xoa6aaaacya6cy0卜.I:;xoa1卜-II工1HH寸00Ss-555J-l535_AAHO21sJ9A>>>>AA>S5J-^^1/.£H-H¥¥VVLXefHvoCUAuIUJ3^ugggm3Ia3S(sU2-xIZi?U-z.=2>z55uEpEpppp一S-s---==--名-----Ez§!產fNSsV)cslly3s/s5ssslO/、//、////-//CQyalcyb5aacycyO0a0/u-12^aeH1HgsIHHHH^13:IIHHK-Au^u<AMA<\AAASoHs=^/zQl>>A>>>>>>)nl>>l0HAM:*s>d1clp-d0-dJdio.!sJ9Mvu§>uM333UJsu.V-fG>(^OCQsu6^Zz-Z.^-5gs3ussssx寸gs--sss-l—rn--s--==--ta>i=鬆-7s-§--<<vS)tNa<<<v<<v</ols、//、v/欢^da、/^ao-0e.AH0cyaaaaaasAlIHIH=uHxQyS555w33UJHA>Hss3s3^MC;w'S9^>>>>AA/>>>>>>>l0(PeJda.ad?->>3y(N§E.:〔-A£-/5ss_lJ-l_:iladlN1ao^->y(u3oss3a*lrJo(NsszE0fP泛lOg卜卜PJ>)l-JoaDIlos-//UIJl/、J/2/zyO£9§aoOO/9zDld-/>>^El>>AA>x^^o--adsSa;oiDiMna2§A>>-AAAAc>p-A11fpHIHH=cau3:usd::'sHM^^MM22§¥l3aH2^d!UoACQ)---6C------§lcJSS3^5Pppp!sSSSgdSSzs//u-SSssssSSA.os///////1sltuAA/)NIu^AAAAAAA0-A(KuHHHHHHHHH.2°=o/FHal>lHf--11Hfl11l卜溆d11tlAll1U-I\xsf寸Glss5A担oMIM1A-dSAJ/*#BUa'l'O.Ue_nrqI^^书As<nf11x2II3-:xHn§uuXZX/23sN0社WE^u-y.XMu-9izzUMoU3_.Ao/////////s2/f>^^U釙slf-l>>A.AAA>//lAH§/k/£VSSisSSS2\i>^u8T->1!Eli2J5eSsisSSSS\sM1E§feqI0JXAA.J-B-^>AAAaAAAAAArrAeS9J0J)-H I-钭-rI?.llrl「3Ioorsr寸步^9oonlsTllgs659-8zSz6sp632卜0fssn££JsH869SzsIo6lI62J669ZoofsuzoZ0Suo寸,^釙l6ol^o00qo產A6oSoiSs:0i0losfsSoS———I丨#lS9asm6mu£uSuU^siu3faaAD奶vuz23VavvWvVQoNvzVNZ5-l8oog6898o9£SS9s£「.?._,.?I009Tds寸1Tzlo9X3SSaoSslrs£SSSSSSs的i5lSss ̄ ̄兵u4(*90l°0s1o卜对oSO09fs8m....%..r....-彔).卜s5o<Nl9一e2e92对S§1t汔?:穿对csZrfe9^严^PG ̄999l9对os9l1卜w5C..p.....3i..P对S5S3寸I900Svo9oo!55S5S5gK力Ss5Ssss?^3联P峰 ̄u联m£oo00一0^「fN0.o?..「‘1_桕£<N!々Z^I,pi筘妄5彡5s5^ss5>-7ll-ll900^ONg-「v)ON卜O...,U.9esVo口-M/寸寸K3s>rl2寸5,d寸5s5呑s{io0'2oo069St ̄卜ov?寸寸oosP卜......?2--dJfs06S5.Z9i>s一(N5s95Slntss3995ss^u7ulsS2Zs°OOI,5el?卜卜T?r〇06?o0)/...?q.lZ1A一ZA09oo56卜ooo;6vo98lLzl9Ss9lrl5ssssS99S氏Vo9v^v 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广西大学博士掌位论文中圔嫌■山苗病毒病调查、诊断和病尿病毒分子生物举的研究-码的外壳蛋白roteiCP)JYMVYMMVNC1编(Coatpn,与同是的YMV和一%的CP蛋白氨基酸序列致性分别为51%和56.7,其多聚蛋白与野生番茄花叶病毒'c一(奶Wtowatomtwaivirus,GenBank:NC009744.1)_的多聚蛋白氨基酸序列致性最一高,为52%,与其它14个马铃薯Y病毒属病毒的多聚蛋白的氨基酸序列致性在一4-1.552%之间,而与YMV和JYMV的多聚蛋白氨基酸序列致性则分别为46.6%和-45.7%(表312)。一目前GenBank共收录10个YMMV分离物的基因组全长序歹!J,其中个为巴西分离物,其余9个为中国分离物,其中有8个YMMV中国分离物(NN1、NCI、NC3、FX1、NC2、XZ1、WX1和WX3)的基因组全长序列来源于本研究的工作基础。分别’’用它们的基因组全长核苷酸序列和3端的部分核苷酸序列(部分CP和3UTR区域)构建系统进化树,结果显示,两个系统进化树的树形比较接近,来自中国南方、中国北方3个分3-4和巴西的YMMV分离物分别聚成支(图),表明采用YMMV分离物的部分‘CP和’UTR区域构建的系统进化树可以在一3定程度上反映其进化关系。对105个来源于广西、江西、河南、山东和江苏的主要淮山药产区的YMMV阳性’263-2)样本的部分CP和3UTR进行克隆测序,发现存在个YMMV分离物(表。将—其与NCB3-3)起构建最I收录的来自其它国家和地区的19个YMMV分离物(见表-m-enecree大似然进化树(Maximulikelihoodphylogtit)(见图35),结果显示,YMMV分离物在进化关系上可以分为5个Group,GroupI的YMMV分离物来自中国南方的淮山药产区;GroupII的YMMV分离物来中国北方的淮山药产区;GroupIII的YMMV分离物来自印度;GroupIV的YMMV分离物来自美洲中部的加勒比地区和巴西等地;GroupV的YMMV分离物来自非洲西部的多哥、喀麦隆、法属圭亚那、瓜德罗普岛和马提尼克岛和几内亚等地。YMMV的系统进化树清晰显示,其进化上的多样性和遗传变异性与所处地理位置密切相关,推测YMMV可能由于地理隔离导致不同群体的单独进化。采用重组分析软件包RDP4中的7个算法对已有基因组全长序列的10个YMMV分“”离物进行全基因组核苷酸序列重组分析,共发现了9个重组事件,其中有4个明确的“”3-重组事件和5个暂定的的重组事件(表13)。重组事件主要发生在病毒基因组的--Pro3。PI、HC、P3、6K1和CI的部分区域(图6)73 广西大学博士黎位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究—A100NN1|100I—INC1122.NC3_FX1NC2BrazilLI-—XZ1,wx1^d_r1WWX3i10.02B98NN1,LNC1?0|^NC3FX1NC2BrazilLIXZ1「^iiWX3I1002.’图34YMMV分离物的基因组全序列(A)和部分CP+3UTR序列(B)构建的系统进化树使用MEGA6软件对9个YMMV分离物的基因组全序列(A)和部分CP+3HJTR序列(B)分别构建最大似然树。建树过程设置bootstrap值为1000次重复。3-Fiure4PhloeneticanalsisofcomleteenomeA)andartialCP+S^TRBofYMMVisolatesgygypg)(p(-meMaximumlikelihoodhloenetictreebasedonthecomleteenoseuenceandartialcoatroteinpygpgqppS-MVCPlus3UTRseuencesof9YMisolateswereconstructedbMEGA6.Nummberatthenodesof()pqythebranchesreresentercentaebootstravalues1000relicates.p,pgp(p)74 ■广西大学博士学位论文中国淮山病毒?病调查3?、诊断和病康病毒分子生物举的研究82,Luzhai\44TLLZ1NC1I[_r— ̄—8?NN1IWM16965LNN227NC2iGroupISouthChinj,aPNC354L97FX1. ̄—26LFX2|NN48889lI^-NN5INN3ICN167「SG1'SG2XZILf”XZ25266WX1j|WX399iGrouIINorthChinap,—WX8——WX7WX282-WX4—WX5I—WX6/-India4DaI]IG1>GrouIIIIndiap,g8*-India3Da92j934、iGuad3〇JiGuad528IBrazil ̄CR1>GroupIVCentralAmerica,||L5,Gu2_1y_|1p^Ma37rt2——IGu1yt—52DaCmn42\丨^66D27rCmnl1|DaUgal*-99DaUga3128GrouTo2pVWestAfricago,IDaTo2g68IL—DaCDI1979 ̄—,DaGuil—D/rGuilI10.02’图3-5YMMV分离物的部分CP+3UTR构建的系统进化树75 广面大举博士黎位论文中m浪山苗病毒病调查、诊断和病厫病毒分子生物掌的研究626(-2V使用MEGA软件对个来自中国的YMMV分离物表3)和19个来自其他国家的YMM分’3-3CP+3UTR序列构建最大似然树离物(表)的部分。这45个YMMV分离物在进化关系上可以分为5个Group。建树过程设置bootstra值为1000次重复。p-Fiure35PhloeneticanalsisofpartialCPlusofYMMVisolatesgygyp9--MaximumlikelihoodhloenetictreebasedontheartialcoatroteinCPand3UTRseuences259pygpp()q(-to262nucleotidesof26YMMVisolatesfromChinaTable32and19otherYMMVisolatesseuenced)()q-reviouslTable33availablefromGenBank.Thefivemainmolecularrousareindicated.Clusterspy,)(gpcontaininisolatesbelonintoItoVrouareshownhg.Nummberatthenodesoftebranchesreresentgggppercentaebootstravalues1000relicates.pgp,(p)表3-13YMMV重组位点分析-Tabel313RecombinationcrossoversitesinYMMVenomedetectedbP4gyRDRecomb-inationSupportingRecombinantMaorMinorAv.PValRecombinationjeventsoftwareparentparentsites-14x ̄No.lRGBMCNCINN1NC24.668l0147'ux-No.2RBMCS3WX1WX3CN1NN12.4071〇1967,,,XZ19357-9530'933CNC^-No.RBMCSWX1WX1N39.866109791949,,,XZ-19792069'10NNCNNx-oRBS17.432WX14.17〇l〇2133385'5Nox-.5RGMWX1XZ1Brazil1.994l〇1746"4No3490-.6RGBMCSNCINC3CN1NC23658X103725,,.,NN-381343233'3-CN1FX1><No.7RBSNC24.9631034613952'3Nx-o.8RBNC3NCICN15.343l〇467586'2x-No.9RWX1NC2NC342109WX3.579l02372,,XZ1注:RGBMCS3分别为RDP4软件包中的RDP、GENECONV、BOOTSCAN、MAXCHI、CHIMAERA、SISCAN和3SEQ软件。红色粗体的字母代表获得尸值最小的软件。76 山药■广西大学博士学?位论文中国浪病毒病调查、诊断和病服病毒分子生物学的研究I6K2N-PlaProIPO6K1士I_i—i1)|丨’,VP-An--5VPP1HCProP3ClgNibCP3g^IIBrazil^“山CN1|FX1_丨il1VI■NC2tC2||1NC2iv1HNN1viifxiIIVIIIICN1VIHiNC2VI■rJc2WX1Il|■IUIINN1IX■NC3_|VBrazil,lIIHI■■■NC3丨"IIix■NC3*^MnN1I^I1mmmmncsX"III^M1I—NC3__nN|■■INC3--n1I?13952ntM1?39539356t<non-nrecombinationregionrecombinationregio图3-6基于YMMV分离物的基因组全长序列的重组分析使用RDP4对10个YMMV分离物的基因组全长序列进行重组分析,采用不同的颜色对各YMMV分离物进行标识9个独立的重组事件,分别用不同的颜色进行标识。。共发现F-Rec-YMMVnomeseuinatfulllentheencesiure36ombioninggqgu-thethuenLocatnfuniuembinationeventsidentifiedbyRDP4inrelationtoflllenseqceiosoqreco,gu-nrerandtanmentofMMVilate.Eachflllethenomeisreresentedbaloncolodbahelig10Ysosggpygirecomitioncorresnnameventotheleftr.Tiureshowttlof9unuebnatofhebahefsaoapondiisolateiqg,ggcinrentshavebeeninteratedinto.eventsdemarcatedbythebarsbelowthenomesthereombantfagm,geg77 国淮山药■病毒病调查诊断和病康病毒分子生物学的研究广西大学博士学位论文中、3.3.3JYMV温县分离物的基因组全序列测定及其分子生物学特征分析-WX日本淮山药花叶病毒温县分离物(JYMV1)来自在河南省温县夏庄村的铁棍山3-1H)。经药样本,症状表现为重度花叶(图高通量测序组装获得该病毒的基因组的RT-PCR和RACE技术进行克隆验证高通近全长序列,根据获得的序列设计引物,采用-量测序结果37。,克隆策略见图-73、经RACE和RT-PCRYMVWX1进行分段扩增大小分别为11b对J,依次获得p7563-817。2124bp、3089bp、2498bp、1bp和5bp的片段,凝胶电泳分析结果见图FRNKtfGDDmotifDAGmotifmoiPIP06K16K2I\/,5,3Bii!An-VPgP1HC-ProP3ClVPgNlaProNibCP ̄1I1Frament1Fragment3Fragment5g-kb.8kb1.23.1卜1>kb卜)()-^->■?,--M-JYMV-3RJYMV5FJYMV5RUP5RACEJYMV3FrimerspFrament2Fragment4Fragment6g----2.505kb2kb().1kb()(),--JYMV-2FJYMV2RJYMV4FJYMV4R3RACEN1TprimersN1-YMV-WX图37Jl的基因组结构和全长序列克隆策略--37GenomlifanduthlteenFicmafJYMVWX1andthtetoamseenceecomeomeiurepoestragypyqpggM123456屬3-8-图JYMVWXl的基因组序列分段PCR扩增电泳图d’M:GeneRulerlkblusDNALader1:片段1(5RACE);p;产物’RACE)2::56:6(3:片段23:3;片段4;5片段;片段产物;片段478 广g大掌博士举位论文中圔來山苗病毒病供查、诊断和濟Jgl病毒分子生物学的研变--WXFigure38GelelectrophoresisanalysisofPCRproductsamplifiedfromJYMV1genome*M:GeneRulerIkblusDNALadder1:5RACEroduct;;pp*-2345:framents234&5ofJYMVWX16:3RACEroduct,,;,g,,pJYMV-EASY-BWXl的6lunt回收纯化个扩增产物,克隆至p载体并转化感受态细胞,随机挑取3个阳性质粒进行序列测定。对测定的病毒片段序列进行拼接获得--JYMV:KJ789138)。WX1的基因组全序列(GenBank序列分析结果显示,JYMVWX1A’’不包含Poly()的病毒基因组全长为9733nt,其中5UTR168nt,3UTR208nt(不包括Poly(A)),经结构域预测和同源序列比对分析,结果显示其编码1个大的ORF,编8aa355一的多聚蛋白.5kDa1个包含59aa码311,分子量为,以及个小的ORF,编码的PIP0蛋白-。该多聚蛋白可被病毒自身编码的蛋白酶剪切成10个病毒蛋白(见图37),-从:P1(313aa)、HCPro(458aa)、P3(355aa)、6K1N端到C端的顺序分别为(52aa)、Cl(644aa)、6K2(53aa)、NIaVPg(192aa)、NIaPro(243aa)、Nib5-(18aa)和CP(290aa)。在HCPro中存在FRNK基序,在Nib中存在GDD基序,在CP中存在DAG基序,这些保守的基序都是特有的。其基因组结构与YMMV一56.5%极为相似,但是全基因组的核苷酸序列致性只有,而编码的多聚蛋白的氨基酸一45。序列致性也只有.7%3.3.4CYNMV丰县分离物的基因组全序列测定及其分子生物学特征分析-FX中国淮山药坏死花叶病毒丰县分离物(CYNMV1)来自在江苏省丰县的水山药3-样本1F)。经髙通量测序组装获得该病毒的近全长基因组序,症状表现为花叶(图列-PCR和RACE技术进行克隆验证高通量测,根据获得的序列信息设计引物,采用RT-。序结果,克隆策略见图39_CYNMV的病毒基因组为ssRNA-,如图39所示,经RACE和RTPCR对CYNMV-FX1进行分段扩增,依次获得大小分别为1098bp、7365bp和858bp的片段,3-凝胶电泳分析结果见图10。79 广西大学彳專士举位论文中国浪山苗病毒病调查、诊断和病服病毒分子生物学的研究roteasemotfhelicasemotfVPtrosineroteasemotfRmotifpiigidRpypP5’’\i3T,v,z——-^-— ̄■11HX'rHh—_VPGHC-ProP3C-lVPgNlaProNibCPAn ̄ ̄—-L- ̄ ̄ ̄'uL'\HiH1Frament1Fragment3g--1.1kb0.8kb()()-?<-**UPM5RACE3RACEN1TrirpmersmpimersN1aentFrg2-7.4kb()-??-CYNMV-2FCYNMV-2R-YNMV-图39CFX1的基因组结构和全长序列克隆策略Fure-YNMV-FXm1andtttnduencethetenomeig39GenomicmapofChesraetoaplifasecomleeggyyqpM2M131—1kb.01.0kbfl■Hi--图310CYNMVFX1的基因组序列分段PCR扩增电泳图M:GeneRulerlkbDNALadder;’’11()223:3(3RACE产物):片段5RACE产物;:片段;片段F-m-igure310GelelectrohoresisanalysisofPCRroductsalifiedfromCYNMVFX1enomepppgMGeneRuDNA:lerlkbLadder;’’men-1fra15RACEroct:2:aent2ofCYNMVFX1:frament33RArodct:gt(pdu)frgm3CEu;g(p)V-FX-回收纯化CYNMl的3个片段,克隆至pEASYBlunt载体并转化感受态细胞,3-FX随机挑取个阳性质粒进行测序。对测定的病毒片段序列进行拼接获得CY^MVlBKJ7)YNMV-lA的基因组全序歹iKGenank:89135,序列分析结果显示,CFX不包含Poly()’’的病毒基因组全长8228nt,其中5UTR135nt,3UTR230nt(不包括olA)经结py(),80 广西大举博士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物举的研究构域预测和同源序列比对分析,结果显示其编码1个包含2620aa的多聚蛋白,分子量-为297.64kDa。该多聚蛋白可被病毒自身编码的蛋白酶剪切成9个蛋白质(见图39),-Pro从N端到C端的分别为:HC(261aa)、P3(307aa)、7K(64aa)、Cl(656aa)、9VP-567aaIC(80aa)、g(180aa)、NIaPro(217aa)、Nib()和CP(288aa)。P3一被认为与病毒复制、宿主范围和症状表现相关。经序列分析发现P3区域内包含个假一-A定的PIP00RF(13441517nt),包含个高度保守的G_y基序(GGAAAAAAA)。i2YHC-ProYNMVHC-P与马铃薯病毒科中的其它病毒的更小的相比,C的ro缺少保守--G-N和CC-的I/SC基序,这两个基序被认为分别与基因组扩增和系统运动相关。该病毒基因组全序列与已报道的CYNMV日本分离物(GenBank:AB710145)的在核苷一一酸水平上的致性为77.9%,在氨基酸水平上的致性为88.5%。3BBWV-.3.52寿光分离物的基因组全序列测定及其分子生物学特征分析在山东寿光市稻田镇采集的一株症状表现为严重畸形和花叶的大和长芋山药上检--2-测到BBWV(图31G),通过RNASeq深度测序,组装拼接获得了其基因组近全长-序列。根据获得的序列信息设计引物,采用RTPCR和RACE技术进行克隆验证高通量-,克隆策略见图311测序结果。BBWV-2-,RNA311是香豆病毒属成员为双分体正链病毒,如图所RACET-PCRBBWV--11示,经和R对2SG进行分段扩增获得大小,扩增基因组RNA分别为1107bp、4935bp和1283bp的片段,扩增基因组RNA2获得大小分别为951bp、2-3364bp和138bp的片段,凝胶电泳分析结果见图312。BBWV---回收纯化2SG1的6个PCR产物,克隆至EASYBlunt载体并转化感受态p细胞,随机挑取3个阳性质粒进行测序。对测定的病毒片段序列进行拼接获得BBWV-2-SG5953n-的RNA1全长t(GenBank:KJ789136),与BBWV2日本分离物一-enBan-的RNA:AB051.1)2SG11(Gk386的核苷酸序列致性为9〗%。BBWV的RNA’’一,(A,包含的1个大的ORF的5UTR230nt3UTR110nt不包括Poly),编码个包()含1870aa的多聚蛋白,分子量为209.9kDa。该多聚蛋白可被病毒自身编码的蛋白酶剪5-P4a切成个蛋白:蛋白酶辅因子(proteasecofactor,Coro35a,394kDa)、核苷;.3-ro酸三磷酸结合蛋白(NTPbindintein,NTBM582aa,65.26kDa)、病毒基因组连gp;eno-nkedoVte.17)tP接蛋白(viralgmeliprin,pg;26aa,3kDa、蛋白酶(proease,ro;RNA-RNANA-209aa22.98kDa)和(RdeendentRNAolmerase,RdR,依赖的聚合酶pypp;81 ■广西大学?博士学位论文中国淮山药病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物举的研究’aa79.26kDa)NA1的(AAACAGCUUUC),699,。在R5UTR发现存在四个重复的基序--?-? ̄?A1)211tt、t93103nt(11RN。BBWV2SG分别位于3n、3949n5666n和见图3-的RNA2全长3599nt(GenBank:KJ789137),与BBWV2日本分离物的RNA2’一7--UTR(GenBankAB.1%』BWV2SG的RNA1的5227:746939)的核苷酸致性为8一’RFn1t(,编个包含1064aa的t3UTR77n不包括Poly(A)),包含的1个大的O码,多聚蛋白,分子量为119kDa。该多聚蛋白可在Q/G残基和Q/A残基处水解切割产生3个成熟的蛋白:运动蛋白(movementprotein,MP;465aa,52.38kDa)、大外壳蛋白(largecoatrotein,CPL;402aa,44.24kDa)和小外壳蛋白(smallcoatprotein,CPS;p’UTRUC197aa22.42Da。5(AAACAGCUU),,k)在RNA2的发现存在三个重复的基序-?? ̄211t、15n5969nt(见图11RNA2)。分别位于3n41t和3RNA1Q/DQ/SQ/SQ/G、vpg(?)iIPoly(A)-?PCoProNTBMVpgroRdR()pFragment1Fragment3-13kb1.1kb(卜>)'’3URACENITPM5RACEmrimersN1primersFragent2p-4.9kb()-?令-BBVW-2FBBWV2RQ/ARNA2,?"(7?V?H乂、PolApg()>=!ZZ二y(MPLCPSCPFramentFrament6g4g--10kb1.2kb.()()—-??—?'’3RACENUITPM5RACErmersFrament5primersN1pig-3.4kb()--??-BBWV-5FBBWV5R3-BWV-2-SG1图11B的基因组结构和全长序列克隆策略---1anrttuenhmFu11flBBWV2SGdthestaeoamlifandsecetecoeteigre3Genomicmapogypyqpenomeg82 国谁山药■病毒病调音诊断和病尿病毒分子生物学的研究广西大举博士学位论文中、M123M456,。孤應-1..0kbBAB--WV-图12BB2SG1PCR扩增电泳图3的基因组序列分段M:GeneRulerlkblusDNALadder;pABBWV-2-SRNA1R,:G1的分段PC扩增电泳图’’RACE)::3(3RACE)1:片段1(5;2片段2;3片段;B--RNAPCR:BBWV2SG2的分段扩增电泳图,’,RACERACE4:片段4(5);5:片段5;6:片段6(3)--3-dulifedfromBBWV2SG1enomeF12llectrohoresisanalsisofPCRroctsamiigureGeepyppgM:GeneRulerlkbplusDNALadder;--AGeletoresasofBBWV2RNA1lecrhoisanlsiSG1,py,**dumducct2:frament23:fraent33RACErot1:fragment15RACEro);g;g(p)(pBWV-2-1RNA2GeleectrohoresnliofBBSGlisaass,,py,’Rrot5:ment5:frament63RACEroduct4:fraent45ACEpducfra6m;;(p)g()gg3.3.6YVX温县分离物的基因组全序列测定及其分子生物学特征分析一YVX的紫山药症状表3-1D)株感染现为轻花叶。在河南省温县祥云镇采集的(图-通过RNASeq深度测序获得了该病毒的近全长基因组序列,该病毒分离物命名为-YVX-WXPCR和RACE技术进行克隆验证1。根据获得的序列信息设计引物,采用RT-1高通量测序结果,克隆策略见图33。---WXRACE和RTPCRYVX1YVX的病毒基因组为ssRNA,如图313所示,经对?27714的大小分别为521b、3179b、1b进行分段扩增,依次获得的病毒基因组片段ppp43-489b1。和p,凝胶电泳分析结果见图83 广西大学1善士半位论文中国淮山药病毒病调音、诊断和病風病毒分子生物李的研究-回收纯化YVXWX1的4个片段的PCR产物EA-B,克隆至pSYlunt载体并转化感受态细胞,提取PCR鉴定为阳性转化子的质粒,内切酶消化大小正确的质粒中,随机-挑取3个质粒进行测序。对测定的病毒片段序列进行拼接获得YVXWX1的基因组全序显示-WX列(GenBank:KM009120),序列分析结果,YVX1不包含PolyA的病毒基()_'因组全长6134111;,与白三叶草花叶病毒(财扣£7〇^讲〇仰(:咖1?,\^01^/[\0日本分离B一物(A669182.1)的核苷酸序列致性最高,但仅为53.1%。其编码的replicase和丁GB3一也与WC1MV编码的相应蛋白的氨基酸序列致性最髙.。,分别为51.8%和294%但是一其编码的TGB1则与LVX的TGB1的氨基酸序列致性最高,仅为34.5%。而TGB2一7-则与SVX编码的TGB2的氨基酸序列致性最高,为4.4%(见表314)。TGB3TGB1r猫廳■_丨 ̄丨丨_■严㈧丨_'##RdRpCPTGB2c“Fragment1-0.5kb()-ramen?Fgt4UPMs5RACE0.5kb卜} ̄rspimerFramen2gt二:-3.2kbyRACEN1T()^primersN1YVX-2FYVX-2RFrament3g卜2.8kb>-?<--YVX-3FYVX3R--WX图313YVX1的基因组结构和全长克隆策略--WX1Fiure3miVXm13GenocmaofYandthestratelifsuencethecomgptoamyandepleteenoegypqg84 山药■病毒病调音广西大学博士学位论文中国淮、诊断和病尿病毒分子生物学的研究M114M232■1°吐1。kbkb—--WX图314YVX1的基因组序列分段扩增MLadderM2:GenRlerlkbDNALadder:eneRuler100bDNA;eu;lGp,,22334:4(3RACE)115RACE),::,片段:片段(片段;片段-WX-PCRrtmfmYVX1Furiefenome1troianalsisofoducsalidroige34GelelecphoressyppgMl:GeneRuler100bpDNALadder;M2:GeneRulerplusDNALadder;’,mmentsRArot2:frat23:fraents34:fraents43RACEroduct1:fra1(5CEduc;mens;g,gm(p)gp)g-丨(recaseorotein,WX:lYVXl编码的5个蛋白分另J为复制酶多聚蛋白plipypRdR)、三treenebockroteinlTGB1)、二2(trilep重基因区蛋白l(iplglp,重基因区蛋白pro3trileeneblockrotein3,TGB3)geneblockptein2,TGB2)、三重基因区蛋白(pgp■-(CP)Po/exWms313)。选取和外壳蛋白?该病毒的基因组结构符合属特征(见图i-dRMEGA6YVXWX尸otecWrws的R和CP蛋白的氣基酸序歹j,用1和已报道的p蛋白软件的最大似然法构建系统进化树。两个进化树均显示,该病毒与I(NVX)--(ICTV)在进化上的关系最近(图315和图316)。根据国际病毒分类委员会第九次P或R一报告,划分为Po^xv/n?的新病毒种的标准是编码CdRp蛋白的核苷酸致性小一VX-WX1的CP和RdR于72%或其氨基酸致性小于80%,而Yp分别与序列相似性最一5-高的NVX和WC1MV的氨基酸序列致性只有37.1%和1.8%(见表314),因此分v■析结果支持其为Pofcxfrt^s新种。85 s试udj【【【【【【【【t【【【【【Eju60359Fr86oIrne£k^£££寸寸a寸寸522m22l12wI§H一1lII^二】】】1】l】】】】】】】】l__l】l1l一IfsIrII「r--「_....£rs.OO/8aooo.8T<NsouzJ5S8pnHooo'lti00iz.oo00Z--1l6(Nolooz<Sl〇55J6s60S¥992§9u69voolc99s98lvopIs99o96qZ1K£99.tsfsme£i硃8so£—°9gSAucaiCQAra§CQfiAAyYuVVvv<:svV^VvVVVzav联 ̄兵s89s£1oog96LtrT.rrr__.__^5£o£9寸9ooo?s?nlLez11<w?2l<lii彔(stszsJQs{QtsszsfN, ̄砌(?%Tu¥)^^J寸oa6<s一卜Tm「r,_‘r¥r<oo27izLvo?ssp茺錄scisfoco£^§^i?豸srn寸isp联!_pu按u5cp彐pMXS8-Al.u-lsV1£rsofN69A,._...rnz£olcsoS口卜cs沄=寸^uIsKSsiisis§I!s寸々59Mpqsw(M■uau£lrlaslIrl8s005?us‘」._uzovp5口CK9卜mo£eNcs§fNs^忾Sfsgii〔ssfs^nb*必u0is#§p'5b赖一2丨op冢-u1009300一VOs一1l此l...,.sB626<S「£9避Z^5-12<N200i2s22日z?21PSUClMS^nPm)-S.oox趦gHl:pW舡n@:uSn1oo5S逛^?,n「.5iJzCN6<NvOO艺寸s9ts穿P:^iiI9?S^带g-<fs,9 ̄敏,-' 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广西大举博士举位论文中国推山充■病毒病调査诊断和病康病毒分子生物学的研究、Sch1〇〇lumbergeravirusX/AAR115371〇〇Zygocactus!virusX/AAR1154OpuntiavirusX/AAR11547Foxta99ilmosaicvirus/AAA43826Cloverellowmosaicvirus/NP077079y1〇〇Plantagoasiaticamosaicvirus/BAG12133ggITulipvirusX/BAC167851〇〇ttPoaovirusXIBAJ12046Nerine95virusXIBAE66615?YamvirusXIKJ789131tMinvirusX/AAW6774665LilyvirusX/CAG24007^'PhaiusvirusX/BAG061541〇〇WhiteclovermosaicvirusIBAK78865Cymbidiummosaicvirus/AAB7185396PepinomosaicvirusIAFI25314100—LettucevirusXICAN88808QQ—Malvamosaicvirus/ABG4866099Asparausgvirus31BAG121581〇〇—IIScallionwri/sX/CAC870861〇〇i10.23--图15YVXWX1的RdRp蛋白与其它马铃薯X病毒属病毒的RdRp蛋白的进化树分析使用MEGA6软件对YVX温县分离物的RdR蛋白的気基酸序列和其它19种马铃薯X病毒属病毒p的RdRp蛋白的氨基酸序列构建最大似然树,建树过程设置bootstrap值为1000次重复。F--ruseigure315PhenogeneticanalysisofRdRproteinsofYVXWXlandoilierPotexvispM--WXaximumlikelihoodhloenetictreebasedontheRdRaminoacidsseenceofYVX1andotherpygpquPotexviruseswereconstructedbyMEGA6.Bootstrapvaluesareforof1,000replicates.87 广西大举博士学位论文中BH淮山药病毒病谲查、诊断和病康病毒分子生物学的研究98Asparagusvirus3/BAG12162「911_SllionvICcairusXAC87090—广III_Malvamosaicvirus/ABG48664_—LettuceynrusXICAN88812——Peimosaicipnovrus/AFI25318Cymbidiummosaicwms/AAB7185756Whiteclovermosaicvirus/BAK78869NerinewrusXIBAE666193〇?YamvrusX/KJ7891318?iPotatovirusXIBAJ12050MintvirusXIAAW67750—LilyvirusXICAG24011IPha65iusvirusX/BAG06158Plantagoasiatica/BA99mosaicvirusG12137140I—TuliviruspXIBAC167891Foxtailmosaicvirus/AAA43830Cloverellowmosaicvirus/HP077083y——OpuntiavirusXIAAR11551SchlumbergeravX/AAR11^irus5411Zygocactusv98irusX/AAR11546i10.2-3-16图YVXWX1的CP蛋白与其它马铃薯X病毒属病毒的CP蛋白的进化树分析使用MEGA6软件对YVX温县分离物的CP蛋白的気基酸序列和其它19种马铃薯X病毒属病毒的CP蛋白的氨基酸序列构建最大似然树,建树过程设置bootstrap值为1000次重复。ure--Fig316PhenogeneticanalysisofCProteinsofYVXWX1andotherPotexvirusespMax--imumlikelihoodhloenetictreebasedontheCPaminoacidsseuenceofYVXWX1andotherpygqPotexviruseswereconstructedbyMEGA6.Bootstrapvaluesareforof1,000replicates.88 广西大掌博士举位论文中圔淮山药病毒病调查、诊断和病凰病毒分子生物举的研究3.3.7YLV寿光分离物的基因组全序列测定及其分子生物学特征分析在山东寿光市稻田镇采集的一株感染YLV的大和长芋山药症状表现为严重畸形和-花叶(图31G),通过深度测序获得了该病毒的基因组近全长序列,命名为YLV寿光-SG-分离物(YLV1)。根据获得的序列信息设计引物,采用RTPCR和RACE技术进-。行克隆验证高通量测序结果,克隆策略见图317YLV的病毒基因组为---ssRNA,如图317所示,经RACE和RTPCR对YLVSG1?、2812b、2208b、进行分段扩增,依次获得的病毒基因组片段16的大小分别为839bppp2787-。bp、1648bp和1361bp,凝胶电泳分析结果见图318-SG6PCREASY-B回收纯化YLV1的个片段的产物,克隆至plunt载体并转化感受态细胞,,随,提取PCR鉴定为阳性转化子的质粒内切酶消化大小正确的质粒中机挑-取3个质粒进行测序。对测定的病毒片段序列进行拼接获得YLVSG1的基因组全序列nBank8930YLV-SGA(Ge:KJ71),序列分析结果显示,1不包含Poly的病毒基因组()■全长8531nt(//〇>mosaicHankMV)澳大利亚分离物(GenB:,与酒花花叶病毒/pEU一62527979)的核苷酸致性为.9%。其编码的蛋白RdRp、TGB1、TGB2和CP也与一6HpMV编码的相应蛋白的氨基酸序列致性最高,分别为1.7%、69%、63.9%和62.8%。但是其编码的TGB3则与酒花潜隐病毒(丑〇;?/atoifWn?,HpMV,GenBank:AB032469.1)一48-3的.3%。而ORF6ttivleicacidbindin的TGB氨基酸序列致性最高,仅为(puaenucgnBank一rotein)(Ge:AM158439TGB2的p则与NCLV.1)编码的氨基酸序列致性最髙,--/-为64%(见表315)。YLVSG1的基因组结构符合Carav!>w属特征(图317)。选-SGCar取YLV1和己报道的/aWmy的RdRp蛋白和CP蛋白的氨基酸序列,用MEGA6软件的最大似然法构建系统进化树。RdRp蛋白的进化树分析结果显示,该病毒与HpMV3-19)CPCLV和PVM在进化上的关系最近(图,而蛋白的进化树则显示该病毒与N-20在进化上的关系最近)。ICTV),(图3根据国际病毒分类委员会(第九次报告划分的新病毒种的标准是CP或RdR基因的核苷酸一致性小于72%或氨基酸p—0%-致性小于8,而YLVSG1的CP和RdRp与序列相似性最髙的HpMV的CP和RdRp一2-氨基酸序列致性分别为6.8%和61.7%(表315),因此分析结果支持其为新种。89 ■病毒病调查广西大学博士学位论文中国淮山药、诊断和病康病毒分子生物学的研究TGB3ua-pttivenucleicacidTGB1bindingproteinCTTI门—T_?1ARdRp^CPTGB2Fragment1Fragment3Fragment5---0.9kb2..2kb16kb)(()()^,--UPM5RACEYLV3FYLV-3RYLV5FYLV-5RrmerspiFragment2Fragment4Fragment6--2.8kb2.8kb1.4kb卜>()(),YLV-2FYLV-2RYLV-4FYLV4R3RACEN1TrimersN1p3-LV-图17YSG1的基因组结构和全长序列克隆策略F-nomYLV-miure317GeicmaofSG1andthestrategytoalifyandseuencethecomleteenomegppqpgM123456■kb—--图318YLVSG1的基因组序列分段扩增DNAL’RACEM:GeneRulerlkbplusadder;1:片段1(5产物);’2:片段2;3:片段3;4:片段4;5:片段5;6:片段6(3RACE产物)Fur-1etranassRr-liefrVenoige38GlelecophoresislyiofPCpoductsamifdomYLSG1mepgJMGeneRulerlkblusDNALadder1:framents15RACEroduct:p;g(p);’-m2345:fragments234&5ofJYMVWX16:fraents63RACEroduct,,,,,;g(p)90 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广西大学博士学位论文中国淮山箱病毒病调查、诊断和病屎病毒分子生物学的砑究Wn/s53/fa/azic/joe.53/afe/?f/FJ16351—158luiysymtomlessvirus/AJ564638.1pIPassifloralatentcartavirusIDQ455582.1IHraneachloroticmottleyirus/EU754ydg720.2翌PotatovirusSIFJ813512.122ILigustrumnecroticringspotwn/s/EU074853.1rtChysanhemumy^rusB/AB245142.158!I620300DaphneyirusSI.〇AJ11〇I80Potatolatentwn/s/EU433397.2Cowpea7mildmottlevirus/HQ18441.1IttHoplaenvims.53/AB0324691167IHomosaicvirusp/EU527979.1'Yam1?/afenfwrns/KJ78930gg|NarcissuscommonlatentvirusIAM158439.1g5|*7265PotatovirusMIEU6046.1IAmericanholatentvirus/JQp245696.1Poplarmosaicvirus/X65102.2IRedcloverw/nmosaicvirus/FJ6856181,I100GarliclatentvrusI100riAJ292226.166Ls/ia//of/afenfvtVus/JF320811.1llrusnetHeebonecrosisvirusIFJ196835.129|Coeusvennecrossl/iy^rus/EF527260.1^IIrlc1〇〇Gaicommonlatentvirus/JF320810.1I102.图3-20-YLVSG1的CP蛋白与其它香石竹潜隐病毒属病毒的CP蛋白的进化树分析使用MEGA6软件对YVX寿光分离物的CP蛋白的氨基酸序列和其它22种香石竹潜隐病毒属病毒的CP蛋白的氨基酸序列构建最大似然树,建树过程设置bootstra值为p1000次重复。F-nan-igure320PhenogeneticalysisofCProteisofYLVSG1andotherCarlavirusesp-mnen-MaximulikelihoodhlogetictreebasedotheCPaminoacidsseuenceofYLVSG1andotherpyqCarlaviruseswereconstructedbyMEGA6.Bootstravaluesareforof1,000relicates.pp侵染淮山药的DBV的遗传多样性分析3在对采自广西、江西、河南、山东和江苏的淮山药样本的DBV阳性样本进行PCR产物克隆测序的过程中,发现进行酶切鉴定克隆时大部分阳性克隆的酶切图谱具有多态-2性(图31),推测其分子遗传多样性较为丰富。93 广?病毒病调查西大学博士学位论文中国淮山药诊断和病康病毒分子生物学的研究、M123456783.0kb1—.0kb3-2-图1pUCDBV的双酶切鉴定电泳图-eneRur?MlkDNAadder1:DBV:Glebl;8pUC的酶切产物-F-withiure321ElecrohoreicroileolasmoDBVdiestedEKIanIgtptpffpidfpUCgcodSalMeneRuer1ker1 ̄UC-DNAla:DBVeERII:Glbdd8digestdwithcoandSal;p1通过克隆和序列测定,最终获得了9个侵染淮山药的DBV的分离物的RnaseH区 ̄522域序列(bp)。将这19个DBV分离物与NCBI登录的代表13个Group的14个169一DBV[]侵染淮山药的分离物的相应区域序列起构建系统进化树,结果发现有8个来一自中国的的DBV分离物与来自巴布亚新几内亚的DBV分离物PG102cDa聚在同个Group中。另外11个来自中国的DBV分离物与其它DBV分离物的进化关系较远,可单独聚成5个Group。其中来自山东的DBV分离物(SG1)和江苏的DBV分离物(SQ1和FX1)与国外发现的侵染淮山药的DBV的亲缘关系较近,而与国内其它地方发现的DBV的亲缘关系较远。94 广西大学博士学位论文中国推山药?病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究 ̄95PGf〇2cba\^|NN1199|-LZ17l!lfrii—ivyMtI^NClXIIIGP178n__—|NC2I^?—100rWX6-WXI^796—-—WX5XIVWM2XV76—,NN2197WX3XVtIP100—NN3JL—WX137)^WX2xv"^ir*-WX4J77SBIOaDnXII73-SQ1j)i〇〇1fxiXVIII|^—l)SG1XPGHOcDeI100V56PG117cDeI ̄|—PGHObDeVII4764PG102dDaI—52PG117aDe^II|IPG102aDaIIIL91B394Ds2V||I18FJ60bDrVSB15bDpX17LFJ60aDrIX|163y丨丨丨卜1PH11aDa)ggi10.1图3-22DBVDBV分离物的多聚蛋凸棊因的部分序列的进化关系分中PI分离物与来自其它国家的析使用MEGA6软件对33个DBV分离物的多聚蛋白基因的部分序列构建最大似然树,bootstrap俏为1000次重复。用方框标识的B394Ds2已经有基因组全序列报道,DBV8有近全长的苺冈组斤列报逍,?<R令.A丨。PG102cDa|1DNA。它分离物尚未获得基丨辦砰UK中为整合进坫記1纟屮的病如丨列F-iure322PhenoeneticanalsstialolroteineneofDBVrChinaanthercountrggyiofarpypgfomdoypM-axliklihltitbthtilltf33DBVislimumeoodhoenecreeasedonearaoroeineneseuenceooatespygppypgqwereconstructedbyMEGA6.Bootstrapvaluesareforof1,000replicates.95 广西大学博士学位论文中国淮山药病毒病调查诊断和病康病毒分子生物学的研究、3.3.9YYSMV丰县分离物的基因组全序列测定及其分子生物学特征分析通过对深度测序数据进行分析,发现在江苏丰县王沟镇采集的铁棍山药样本一-(D--120904FXTG22)中存在条长1586bp的DNA病毒序列,其与大翼豆黄斑病毒MaYSV)分离物BR:0af3:ll的基因组(GenBank:一.4%)。由于该病毒的基因组结构为单链环状KC004117)的核苷酸序列致性最高(61,.1kb左右的DNA片段因此根据此DNA序列设计引物扩增获得长为1,经序列测定后再设计反向引物一,通过反向PCR技术获得该病毒的另长为2kb左右的DNA片段,-23经序列测定并通过序列组装拼接获得该病毒的基因组全长序列,克隆策略见图3,PCR产物的凝胶电泳图-24见3。该病毒在植株上的症状表现为黄斑花叶-(图25A),因此暂命名为淮山药黄斑花叶病毒(Ffl/wye//owwosa/cWrws,YYSMV)。克隆获得的YYSMV丰县分离物(YY-FX52tSMV1)的基因组全长27n(核苷酸序列信息见附录4,暂时未递交‘GenBank),与百香果严重畸叶病毒severevzms,PSLDV)BR一:LNS22767分离物:Pas:01(FJ97)的核苷酸致性最高(54.2%)。选择双生病毒科7个病毒属的代表种的基因组DNA序列与YYSMV的基因组DNAMEGA6软序列,用件的最大似然法构建系统进化树。结果显示,YYSMV与菜豆金黄色花叶病毒goWiGfe?;ve//oww<wa/cvfms,BGYMV)在进化上的关系最近,应为菜豆金色花叶病毒属(5eomoWms)成员-。g(图325)根据国际病毒分类委员会(ICTV)第九次报告,划一致性小于一分的新病毒种的标准是基因组的核苷酸89%或氨基酸致性小于90%,而YYSMV的基因组的核苷酸序列与序列相似性最高的PSLDV的基因组的核一YY苷酸序列致性只有54.2%,通过PCR和克隆测序获得了8个SMV中国分离物的e〇一部分MP基因序列,将它们与5g7noWms的8种病毒起构建系统进化树,分析结果o(-26表明YYSMV与5eg/wov/ms的8种病毒的进化关系均较远图3),因此分析结果支持其为■SegomoWms新种。96 广西大李博士学位论文中国浪山苗病毒病调查诊断牙〇病康病毒分子生物李的研究、IRYYSMV-■V21RFrament2g7yVc4^tC3\YYSMV'2RYY>MV,FAB图3-23YYSMV-FX1的基因组结构和全长序列克隆策略A-MV-:YYSMVFX1的基因组全长序列克隆策略:SFX1;BYY的基因组结构Fre-23ProenommaofYYV-FXandttraetandeutheigu3posedicSM1hestgyoamlifsqencegppycomeevalenomesecepltirguenqAuenMV-:ThestratetoamlifandsecethecomptvlenomeYYFX1gyyqleeiraseuenceofSpgq;BMV-:ProosedenomicmaofYFXppYS1gM11M22■■2〇kb-n.^■■图3-24YYSMV-FX1的基因组序列分段扩增Ml:GeneRulerlkblusDNALadder;M2:GeneRulerlkbDNALadder;pMV-YY-1:YYSFX1的片段1,2:SMVFX1的片段2-fm-FPVigure324GelelectrophoresisanalysisoCRroductsamplifiedfroYYSMFX1enomepgMl:GeneRulerlkbplusDNALadder;M2:GeneRulerlkbDNALadder;--:t1fY:fraenfYYSMVFX1framenoYSMVFXl2t2olg;gm97 广西大学博士学位论文中国推山苗病毒病谲?、诊断和病康病毒分子生物举的研究98BeetcurltoIranvirus/JQ707951Becurtovirusyp152丨BeeliAF379637Ctoirtcurytopvrus/urvusITurntTurncurtovirus85ipcurlovirus/JQ742019yp-tTomaoseudocurttovirus/NC003825ToocuviruspyppIBeanofdenyemosaicwo/sM1irllow/0070Begomovusg99I*Yamellowi99?sotmosacvirusypttrovErarosiscurvulasreakvimsErairg/NC012664gusI^treakiMaizesvrusIX01633Mastrevirusi10.23-25-图YYSMVFXl的与双生病毒科7个病毒属的代表种的进化关系6-FX使用MEGA软件对YYSMV1的基因组序列与双生病毒科的7个代表种的基因组序列构建最大似然树,建树过程设置bootstrap值为1000次重复。F3-h-iure25PenoeneticanalsistherelationshibetweenYYSMVFXlandthereresentativeseciesofggypppGeminiviridaeMax--lndimumlikelihoodhloenetictreebasedontheenomeseuenceofYYSMVFXathe7pyggqrepresentativespeciesofwereconstructedbyMEGA6.Nummberatthenodesofthebranchesrepresentpercentagebootstrapvalues(1,000replicates).27YVSMVisolateWX2/KJ854431厂42SMViso/KJJlateFX1854437YY7LIYYSMVisolateWX1/KJ854430^38lYYSMVisolateWX5/KJ854434rIYYSMVisolateWX3/KJ8544321〇〇匕YYSMVt95isolaeWX4/KJ854433rYYSMVisolateSG1/KJ854435—了#YYSMVisolateLZ1/KJ854436soCYVMVlaenda/J50777772itIiAIRaMoVisolateF3/EF125190HTCTVisoRHom/GU45lateI:1:2k:096686PYMVisolateGrenada:Paradise:2007/FR851299TGWlisoateDF/JF80325987—PSLDVlBR:LN::01/FJisoateS2Pas97276775MaVSVisolateBR:Oaf7:11/KC004115|To6TlCVisolatePE/JF803252I10.1图3_26YYSMV的部分基因与其它的部分基因的系统进化分析98 广西大学博士学位论文中国灌山苗病毒病调查、诊断和病屎病毒分子生物举的研究使用MEGA6软件对8个YYSMV中国分离物的部分MP基因序列和与其它8种的部分W基因序列构建最大似然树,建树过程设置bootstra值为000p1次重复。Fre-rigu326PhenogeneticanalysistherelationshipbetweentheartialREPeneofYYSMVandothepgBeomovirusgax-dhimumllitbthlthiruMikelihoooenetcreeasedoneartiaREPeneseuenceandoerBeomovspyggpgqwereconstructedbyMEGA6.Bootstravaluesareforof1,000relicates.pp3.4讨论目前已经有6种淮山药病毒进行了全基因组序列测定及其分子生物学特'性分析,分425917。171111172丨73’[][][][][][]-YNMVYMMV别是YMV、DaBV、JYMV、BBWV2、C和。而关1(I6174[][]于侵染中国种植的淮山药病毒的报道较少,目前仅有YCNMV和YMMV的部分病毒序列报道。病毒变异快,遗传多样性丰富,同种病毒往往存在多种分离物,它们的基因组序列一定差异-PCR方法存在,有些还有重组事件发生。因此,采用常规的RT很难对不同病一些没有参考序列的新病毒毒分离物进行有效扩增和序列测定。特别是对于,要想获得其基因组全长序列则更加困难。在植物病毒研究中,有研究人员采用双链RNA技术克隆正义RNA病毒,但是这种方法不适用于负链RNA病毒和DNA病毒。也有研究通过纯化病毒粒子,提取核酸后建库测序获得新病毒的序列信息,但是不同病毒粒子的纯化方法各异,而且很难排除植物核酸的影响。近几年发展起来的高通量测序技术不但可以全面鉴定样本中的病毒,还可以发现新的病毒一。特别是小RNA测序技术几乎可以对样本中的所有病毒网打尽。但是本研究发现采用小RNA测序技术虽然可以鉴定淮山药病毒的种类,但是组装获得的病毒序列长度有限-Se,很难覆盖完整的病毒基因组。而采用RNAq则可以获得RNA病毒的近全长序列-PCR技术可以非常容易克,在此基础上设计引物结合RACE和RT隆目标病毒的-NC全基因组并进行测序YMMV1、。本研究通过该策略成功克隆侵染中国种植淮山药的-----YMVWX-、、J1、CYNMYFX1BBWV2SGYVXWX1和YLVSG1的病毒的全长基因-组序列,并对这些病毒分离物的分子生物学特征进行了分析,发现YVXWX1和YLV-SG1分别具有马铃薯X病毒属和香石竹潜隐病毒属的基因组结构特征,但是与已一3-4和表3-知病毒的核苷酸和氨基酸序列致性都比较低(表115)。国际病毒分类委“”员会第九次报告对这两个病毒属病毒的划分种的标准均是编码CP或RdRp的核苷99 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病尿病毒分子生物学的研究175一一72%或氨基酸序列[]80%酸序列致性小于致性小于,因此这两个病毒分离物应为这两个病毒属的新病毒种。这也是首次发现这两种病毒侵染淮山药。此外,马铃薯X病毒属和香石竹潜隐病毒属中某些病毒可能有两个亚基因组RNA(sgRNAs),在淮山药ern。上发现的这两个新病毒是否也具有sgRNAs,还有待通过Northblot等方法进行鉴定将侵染中国淮山药的23个YMMV分离物与世界上已经报道的58个来自世界各淮山药产区的YMMV分离物进行系统进化分析,发现分成的9个亚组与地理位置相关,因此推测YMMV可能由于地理隔离导致不同群体的单独进化一组病毒分离物也。而同有部分病毒是来自不同种植区,这有可能是由于种质交流导致病毒传播到不同的地方。本研究还发现侵染中国淮山药的YMMV分离物可以分成两个组,分别来自南方和北方的淮山药产区,而且这两个组间的进化关系较远。YMMV的这些遗传多样性分析表明YMMV分离物可能起源于不同的地方并独立经过了长时间的进化,某些YMMV分离物可能在进化过程中突破了某些淮山药种类的宿主抗性。值得注意的是,获得基因组全长序列的9个YMMV分离物的基因组核苷酸序列构建的系统进化树与这9个YMMV分’CP和3UTR区一离物的部分域构建的系统进化树的树形比较接近,这结果表明,采用’UYMMV分离物的部分CP和3TR区域构建的系统进化树基本上能够反应其进化关系。B’’ousalem等使用YMMV分离物的3端序列(NIb+CP+3UTR)进行重组分析,发98[现若干个分离物存在组内ra-rou)1而(Intgp重组现象基于YMMV全基因组序列的重组分析发现,重组事件发生在病毒基因组的P〗、P3、6K1和CI区域,其中CI区域是重组热点。这表明采用病毒基因组全长序列进行重组分析能够获得更加可靠的病毒重-WX-组信息。YMMV南昌分离物的CI区域的重组序列与YMMV1、YMMVWX3和---YMMVXZ1等北方分离物的亲缘关系较近(图35C),而非重组区域则与YMMVFX1、YMMV-NC--1和YMMVNC3等南方分离物的亲缘关系较近(图35A、B和D)。推测YMMV-NC2的重组可能是由于南北方的种质资源交流导致病毒发生重组,而重组病毒的出现可能突破不同淮山药品种的宿主抗性,因此需要在种质资源交流过程中加强病毒的检测,以防病毒病的大面积流行。-本研究采用RNA-Seq结合RACE和RTPCR的方法对侵染中国淮山药的主要病毒进行了病毒基因组全长序列测定和分子特征分析,既简单快速又可以了解病毒的丰度,还可以获得不同淮山药品种的基因表达信息一,为在转录水平进步研究病毒与寄主的互作提供了有用数据。本研究获得的淮山药病毒的分子生物学特征也可以为研究其发生流行、传播方式、遗传变异和建立相应的检测方法等提供重要借鉴。100 广西大学博士学位论文中国灌山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究第四章五种淮山药病毒抗体的制备及病毒检测方法的建立4.1引言为了保证淮山药生产的正常进行,首先要保证种薯不携带病毒,其次是及时在大田生产中及时发现和鉴定病毒,以便制定有针对性的防治措施,包括控制传播介体来切断病毒病的传播。因此,要求有灵敏度高、特异性好的病毒检测技术来对淮山药的种薯和田间样本进行。检测,既要考虑检测技术的方便性和可靠性,也要考虑其检测成本用于植物病原病毒检测-mato-的主要技术手段有症状学方法(smlo)、ELISA、Dotblot、PCR、RTPCR、ICPCR、yptogy---ICRTPCR、qRTPCR和LAMP等。快速准确检测淮山药病毒在病害管理和控制中极其重要,但是目前在淮山药病毒检测方一面还存在系列问题。由于环境因素改变引起的症状变异,不同的淮山药品种或变种的症状多样性导致淮山药病毒病的田间诊断不可靠。养分缺乏弓丨起的症状也容易与病毒病症状混淆网。,而且有些无症状的植株也可能存在病毒病因此,要求有灵敏度高、特异性好的病毒检测技术来对淮山药的种薯和田间样本进行检测。而国内对淮山药病毒病的研究较少,尚无相关的病毒抗体用于淮山药病毒的检测。因此亟需制备淮山药病毒抗体,发展可靠的淮山药病毒检测技术。本研究的主要目的是制备淮山药病毒抗体并建立相应的病毒的快速髙效的检测方法。4.2材料与方法4.2.1毒源感染YMMV的桂淮6号植株、感染JYMV的大和长芋山药植株、感染YLV的铁棍山药植株、感染YVX的紫山药植株-、感染CYNMV的大和长芋山药植株、感染BBWV2的的大和长芋山-药植株,经RTPCR检测确认后,挂牌标记,分别种植于广西大学亚热带生物资源保护与利用国家重点实验室的温室内。101 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究42.2常.用试剂及试剂盒BDNA一^合成试剂盒和2x蛋白质提取试剂盒、TM底物显色试剂盒、SuperRTc第ESTaqMasterMix(含染料)购自康为世纪公司。胰蛋白胨、酵母提取物、尿素、BSA、PMSF、TEMED??和DTT购自Sigma公司。IPTG、dNTP、GeneRuler100bpDNALadder、Generulerlkb?DNAladder>Generuler1kblusDNAladder^PaeRulerPrestainedProteinLadder^PaeRulerpgg?UnstainedProteinLadder和PierceECLWesternBlotingSubstrate购自ThermoScientific公司。氨节青霉素(Amp)、卡那霉素(Kan)、RNaseA、丙烯酰胺、甲叉双丙烯酰胺、三羟甲基甲烷(Tris)、十二焼基磺麵(SDS)、甘氨酸、溶菌酶等购自生工生物工程(上海)有限公司。其它普通化学试剂及生化试剂为进口或国产分析纯。4.2.3引物根据已获得的淮山药病毒的外壳基因(CP)序列设计引物用于构建淮山药病毒的外-壳蛋白的原核表达载体(表41)。根据已获得的淮山药病毒的序列信息设计多重PCR-。弓丨物(表42)。引物均为上海生工生物工程有限公司合成-表41淮山药病毒CP蛋白编码基因扩增用引物Tb-ale41PrimersusedforcloningiralCPvJViralCPenePrimernamePrimerseuence5>3Productsizegq()--YMMVNIbCPYMMV-NIbCPFCCCGAATTCatgtcgcacaaagcagttaag1191bp-N--YMMVIbCPYMMVNIbCPRCCCGTCGACctagatattgcgcactccaag---aacc77YVXCPYVXCPFCCCGAATTCatgttgaaagtatgtctac1bpYVX--CP-aaCPYVXRTTTGICGACttggttcaggcaagttgag注:下划线表示酶切位点序列,GAATTC为五⑶RI,GTCGAC为紹。Note:Theunderlinesindicateendonucleasedigestingsites.GAATTCisdiestedbEcoRI,andGTCGACgyisdiestedbSalI.gy102 广西大学博士学位论文中国灌山苗病毒病调査诊断和病屎病毒分子生物学的研究、表4-2用于多重RT-PCR检测病毒的引物-mu-Table42PrimersusedforltiplexRTPCRanalsisofamvirusesyy*5rP—>Vius/GenerimernamePrimerseuence53Productsizeq()T-FagaggtgacactatagaataTa-Rtacactcactatagaggggg-Ftacactataaataatccacttactcctccc196YLVYLVagggggbggp-YLVRgtacgactcactatagggatccttgtaccaaccgccgt-FaaccaYCNMVYCNMVtacactataaataaatttacc209bgggggggggggpYCNMV-Rgtacgactcactatagggagagggttgctgagcgtcg-FaaaacaacaYMVYMVggtgacactatagtattcgcagcacctct224bpYMV-Rtacgactcactataggaccatcctcaacatacacggggg-CYNMVCYNMVFaggtgacactatagaatagtattcacagcagcaccaatc232bpCYNMV-Ragtacgactcactatagggacttcctctccacttccgg-FYVXYVXaggtgacactatagaatactcctgatgcctcttactcctc265bpYVX-acRgtgactcactatagggatgaagtgtgccgtgtgatJYMVJYMV-Fatacactatagaatacctatacttcaaaac286gggggggggbpJYMV-Rgtacgactcactatagggatcacgccgagaaggctgt-FaYMMVYMMVtacactataaatacacacatcaaataar305bgggggggggpYMMV-Rgtacgactcactatagggagaacctcagtagagcgaacatag-CMVCMVFaggtgacactatagaatacctgcctcctcggacttatc323bpCMV-RgtacgactcactatagggaaacacaatcaactgggggggBBWV-2BBWV-2-Fatgacactatagaatagtttcgagtgctttggaagg361bggp--BBWV2Rgtacgactcactatagggatggatccrtcaagrcgcatt-FatacacYYSMVYYSMVtataaatacatcattcaactt483bggggggggggggp-YYSMVRgtacgactcactatagggacgatggtagttcttcaagaggaggtarbcrbcL-FaLggtgacactatagaatacattccgagtaactcctcaac149bprbc-LRgtacgactcactatagggaggtaagtccatcagtccacac103 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调查诊断和病屎病毒分子生物学的研究、4.2.4病毒CP蛋白基因的扩增与测序一提取RNA方法同第二章描述方法(具体描述见2.2DNA第.6)。c链合成方法同第二章描述方法(具体描述见2.2.7)。取1pL稀释20倍的反转录产物作为模板,加入10nM的相应的淮山药病毒CP蛋白基?因克隆引物各2吣,5xPCRbuferl〇L,10mMdNTP0.5L,PrimeSTARHS高保真npL?DNA聚合酶0.25(ldHO36.25lLPCR扩。:98C预变3minn,2,进行增反应条件为性;^°°°98C变性10sec,55X:退火15sec,72C延伸1min,34个循环;72C反应5min。PCR/mz产物于浓度为1%的琼脂糖凝胶进行电泳分析,切胶回收纯化目的DNA片段后,与用SI切开pUC19平端载体进行连接反应,转化大肠杆菌DH5a感受态细胞,挑取转化子用质粒DNA提取试剂盒提取质粒DNA,用五coRIASWII双酶切消化鉴定重组质粒,选择鉴定正确的重组质粒于生工生物工程(上海)有限公司测序,核苷酸序列和其编码的氨基酸?序列采用VectorNTIAdvance10软件进行比对分析。4.2.5原核表达载体的构建将纯化的重组质粒经相应的限制性内切酶消化后,回收目的基因片段连接至原核表达载体pET30a。取5hL连接产物转化大肠杆菌DH5a感受态细胞,挑取转化子,提取质粒DNA,用相应的限制性内切酶消化鉴定筛选阳性重组质粒,获得鉴定正确的原核表达重组质粒。再将该原核表达重组质粒和对照载体pET30a分别转化大肠杆菌BL21(DE3)pLysS感受态细胞,经卡那霉素抗性筛选,分别获得携带目标片段的原核表达重组质粒和空载体pET30a的表达菌株。4.2.6蛋白的诱导表达及表达条件优化挑取新鲜培养的携带目标病毒外壳蛋白基因的重组质粒的BL21DE3LsS菌株,()pyL°含卡那霉素(5〇/L)的LB200rm37C振荡培养过夜接种于lmng培养基中,于p,同时以含空质粒pET30a的BL21(DE3)pLysS菌株作对照。按1:100的比例扩大培养过夜培养°=mC继-mL培物。于200rp37续振荡培养3h左右至OD6〇q0.40.6。各取6份5养液,分别加入IPTG至诱导终浓度分别为OmM、O.lmM、0.4mM、0.8mM、1.2mM、2.0mM,°转至于200rpm28C振荡培养。至6h后将诱导培养液冰浴10min使菌体停止生长,于0000心4一1lmin收集菌体,用PBS(117.)漂洗菌体沉淀次后,加入200叫?83,g离口(pH7.4)悬浮菌体沉淀,取30L悬浮液加入10L4x蛋白上样缓冲液,沸水浴1〇min,nn104 ■中圔滇〇广a大学博士举位论文1药病毒?调查徐断和病原病毒分子生物举的研究、■00--于12,(^离心2111丨11,取10#上清进行803?八0£电泳分析。根据303?人0£分析结果选择最适IPTG诱导浓度。4.2.7表达产物的可溶性分析0000心2min收集菌体BS漂洗菌体取5mLIPTG诱导培养6h的菌液,于1,用P,g离一?沉淀次,再用20〇nLPBS悬浮菌体,使用SONICSUibraCell超声波对菌体细胞进行超声破碎,Amp(与功率对应)参数设置为38%,超声处理10sec,间隔10sec,直至°菌液变澄清。于12,000g,4C离心30min,将上清液转移至新的离心管。向菌体沉淀加入200叫的PBS(8Murea,pH7.4),待菌体沉淀完全澄清后,于12,000g离心10min。-分别取10L上清和沉淀进行SDSPAGE检测。H4.2.8重组蛋白的纯化ET-TM-p30a载体含有Histag,可以根据QIAexpressionist手册采用NiNTA柱亲合层析方法纯化30a载体携带的待表达纯化蛋白:将00mL诱导培养菌液转至400mLpET1°mm-Beckman离心管中,于10000rp离心5in收集菌体,置于20C冷冻菌体30min。将冰冻菌体于冰上融化30min,此时菌体在自身表达的溶菌酶的作用下开始发生裂解。加入(.LsisBuffer100mMNaH2P〇4,lOmMTrisCl,8MUrea,H8.0)重悬菌体,加入yp蛋白酶抑制剂PMSF至终浓度为1mM,使用超声破碎细胞,超声处理直至菌液完全澄清。Tri-向裂解液加入tonX100至终浓度为1%,于室温混合30min以提高融合蛋白的可溶性。°4C的N-将存放于iNTA填料混匀,装柱。加入5倍柱体积的去离子水过柱漂洗乙醇,加-ufer过-NTA树脂入5倍体积的LysisB柱,平衡Ni。将加入TritonX100的蛋白溶液于120001111^11>^-111111卬离心2〇1,取上清液加到平衡好的]^丁八树脂上,控制流速为111/^^右,加_入WashBufer(100mMNaH2P04,10mMTrisCl,8MU^ea,pH6.3)漂洗杂蛋白,加P0_入ElutionBufer(100mMNaH10msCl8Mrea424,MTri,U,pH?5)进行洗脱,洗一脱按每管1mL收集,每收集管即测A28Q直至测不到蛋白。洗脱产物每份各取10化进S-PAGE电泳行SD,检测洗脱产物大小及质量。4.2.9多克隆抗体的制备取纯化后的重组蛋白1mL(约1mg)采用皮下多点注射法免疫新西兰大白兔(免一疫前采集正常血清作为阴性对照),以后每2周加强免疫次,共免疫4次。首次免疫105 广西大学彳謇士学位论文中国淮山苗病毒病调音、诊断和病雁病毒分子生物学的研究und’m加入与蛋白等量的弗氏完全佐剂(Frescompleteaduvant,Sia,USA),后3次jg’USA(Freundsincomleteaduvant,Sima)。加入与蛋白等量的弗氏不完全佐剂pjg,末次加强免疫7d后,进行心脏采血,并分离血清。抗血清经抗原亲和纯化获得相应病毒外壳蛋白的多克隆抗体。4.2.10单克隆抗体的制备单克隆抗体采用表面抗原表位抗体库(SurfaceEpitopeAntibodyLibrary,SEAL)技术制备,在艾比玛特生物医药(上海)有限公司完成。4.2.101.抗原设计及蛋白表达用Abmart公司开发的抗原设计软件对JYMV的外壳蛋白序列(见附录5YMV-):JCP--进行抗原表位(SurfaceEpitope,SE)扫描,获得6个SE(图41)。目标蛋白(JYMVCP)(Eto)Et中各区域的表位指标pipevalue以及被选中的表位(piopeselected)用蓝色粗横线标识,Y轴。X轴是目标蛋白中各10肽的起始位置是表位指标得分。得分越高,该10肽成为成功表位的可能性越高。灰色曲线是每个10肽的得分曲线,蓝色表示被选中的10肽片段,X轴上短柱表示目标蛋白中亲水性的分布(绿色代表亲水,红色代表疏水),该区域在X轴下方将用粗横线标识(图。如果目标蛋白中存在信号肽和跨膜区4-1)。Seuenceana-qlysisofJYMVCP353.0307.7262.4I——^八'!!812312MU/-■HAndroobicyphWhiI35.9/UM/¥一-54:.7-100.0528517497120431661892122351-图41蛋白表位指标分析图Fure-reenaig41Sufacpitopealysis106 广西大学博士学位论文中国灌山苗病毒病调查、诊断和病原病毒分子生物学的研究- ̄4-3MVO----列的6个SEOY、JYMV1、JYMV2、JYMV3、JYMV4和JYMV5)将表中所进行进行基因合成,然后连接到串联表达载体上,通过表达和纯化获得抗原蛋白用于免疫小鼠制备单克隆抗体。表4-3选择的用于抗体制备的目标蛋白区域T-abel43Theselectedreionfromtaretroteininfliisroectggppj编号名称起始位置终止位置多肽序列0JYMV-0206215DGNVSTMEEN-21JYMV113222EENTERHTAE2JYMV-22KDVDVG11SVGT3JYMV-34150LLYNPEQVDL4JYMV-43039RGKPALNLDH5JYMV-51524PRLKGLATKM4.2.10.2动物免疫 ̄将上述串联抗原免疫812周的雌性BALB/c健康小鼠3只。4.2.10.3单抗细胞株筛选将免疫反应好的小鼠的脾细胞与骨髓瘤细胞(SP2/0)进行融合,融合后的细胞经过适当稀释,分置于96孔培养板中培养,待克隆生长到全孔的1/6时,标记单克隆并进行ELISA检测。将OD值最高的单克隆再有限稀释接入96孔板中,按上述方法再次亚克100%。隆,此过程重复数次,直至阳性孔比率为将筛选得到的阳性单克隆扩大培养,6?x按细胞数121〇/管进行冻存。4.2.10.4腹水制备?。1014收集阳性单克隆细胞,用于小鼠腹腔接种天收集腹水,用ELISA检测腹水是否含抗原特异性抗体。4.2.10.5抗体纯化roein对验证为特异性抗体阳性的单克隆细胞株,采用PtG柱纯化腹水。107 广西大学博士学位论文中国灌山药病毒病调查、诊断和病屎病毒分子生物学的研究4.2.11抗体效价及特异性检测用ACP-ELISA方法对原核表达纯化的病毒外壳蛋白与对应的多克隆抗体或单个抗原表位多肽(抗原包被浓度为4/mL)与对应的单克隆抗体进行成对检测。将多克隆pg抗体和单克隆抗体分别与不同病毒外壳蛋白进行交叉反应,单克隆抗体还需与不同抗原表位多肽进行交叉反应。抗原包被浓度为4pg/mL,以起始稀释浓度为1:1000(约为1Hg/mL)的纯化抗体进行2倍的倍比稀释(1:1000,1:2000,1:4000,1:8000,1:16000,一1:32000,1:64000,1:128000,1:256000,1:512000)作为抗,采用辣根过氧化物酶(HRP)标记的二抗进行ELISA检测。一ELISA效价判断标准:将抗体进行定的梯度稀释:,,大于NC(NC免疫抗原包板检测抗体为牛奶+细胞培养基)两倍且大于0.25的OD45〇值对应的稀释度值即为该抗体的效价。一WB效价判断标准:将抗体进行定的梯度稀释,可见清晰目的条带的最大抗体稀释度值为该抗体的效价。4-.2.12间接抗原包被免疫吸附测定(ACPELISA)方法检测病毒-ACPELISA在酶标板中进行,所有样本、阳性对照和阴性对照均设置三个重复。在孵育x-过程中藤酶标板,以防ih7jC分蒸发。所有步骤之间,用繼配制的1PBST(0.137MNaCl,1.76mMKH2P04,0.02MNa2HP04,2.68mMKCl,pH7.4,0.05%(VA〇Tween20)次,每次3min,以洗掉过量的病毒、抗体、酶标抗体或底物。ACP-ELIM()ISA方法的操作步骤:加入1mL包含2%(W/V)PV0的碳酸盐缓冲液H9.6p5mn20倍11I.1000im离心i,取上清液稀释,00^7孔加AELSA研磨0成右_叶片,开p按照YMMV°YMMV阳性淮山药叶片为阳性对照,37C孵育2板,以,阴性淮山药叶片为阴性对照°-h,C过夜将抗原按适当浓度溶解于包被液中PBST洗漆两次后入5%或4加入2000,加;;脱脂奶封闭30m-in入200叫PBST洗涤两次后,每个孔中加入用抗体稀释缓冲液按照;加°C-1:8000YMMV多克,lOOIV,373h加A200iLPBST稀释的隆抗体p孔孵育lh或室温孵育;[洗涤两次后,每个孔中加入按说明书稀释3000倍的辣根过氧化物酶(HRP)标记的羊抗鼠IgGA20〇APBS-结合物(Abmart公司),lOOIV孔,室温孵育lhr漂I次后,使用TMBn;加显色试剂盒(康为世纪)进行显色,立即用酶标仪读取〇D45Q的值,以与阴性对照OD值比值(P/N)大于2.1为阳性。108 广西大学博士学位论文中国浪山药病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究4.2.13蛋白质免疫印记(Westernb丨ot)方法检测病毒使用TCA/丙酮沉淀法或采用蛋白质提取试剂盒(康为世纪)按照说明书提供的方法提取淮山药总蛋白样本,用Bradford法进行蛋白质定量,调整蛋白质浓度为2mg/mL左右。制备蛋-白电泳凝胶,取10吣蛋白(约20咫)进行SDSPAGE。蛋白产物由凝胶采用半干式转移至PoDFDS-PAGE聚偏氟乙烯膜(lyvinylideneDifluoridemembrane,PV):S结束后将蛋白胶裁至额大小,经转膜缓冲液平衡3次,每次5min;将预先餅的与赚同样大小的滤纸和PVDF膜用甲醇浸泡1min,浸入转膜缓冲液中平衡5min;转膜装置从下至上依次按阳极碳板、3层3mm滤纸、PVDF膜、凝胶、3层3mm滤纸、阴极碳板的顺序放好,滤纸、碰、PVDF膜需要2一对齐,并且在每步的操作过程中注意排除气泡,盖好阴极碳板之后,接通电源,恒流1mA/cm1.5h。。转移待转移结束后,先断开电源,再将膜小心取出免疫反应:用0.01MPBS(3.2mMNa2HP04,0.5mMKH2P04,1.3mMKC1,135mMN°aCl,pH7.4)洗膜lmin;加入封闭液(5%脱脂奶或3%BSA),室温(25C)封闭1.5h;一-弃封闭液,用〇_〇1M的PBST洗膜3次,每次5min;然后加入抗(根据抗体的效价按合适一一稀释比例用0.01MPBS进行稀释,本研究所有抗均按照1:5000进行稀释,抗稀释液须完°一全覆邏)2hC过夜1%的BSA取代,室麵育或4;以抗作为阴性对照,其余步骤与实一°-验组相同。僻育完毕后弃抗或1/,丁分别洗膜4111111<^8人用0.01\1的?83次,每次5;然后加入辣根过氧化物酶偶联的二抗(根据说明书用0.01MPBS稀释1000倍),平稳摇动,室'2二^1?88-11.0115111111£(:说进行。灘育;弃抗,用0分别?4次,每次;最后采用检测4..214免疫捕获反转录聚合酶链式反应care-erserame免疫捕获反转录聚合反应(ImmunoptuRveTnscriptionpolyrasechainreactionC--。:,IRTPCR)可用于检测RNA病毒操作步骤如下(麵0.05M碳酸盐缓冲液pH9.6)按照1:8000稀释病毒蛋白的多克隆抗体,每个1.5mL°的离心管中加入100Hi屌释好的抗体,37C孵育2h;将淮山药新鲜叶片与研磨缓冲液(0.02MPBS,2%PVP)以0.2%(W/V)的比例放入禱中,研磨成叶汁匀浆,将匀浆液转移至1.5mL^9000m-i10min1.5mLPBS三次离心管中,于p离心;将包被好抗体的离心管用m,每次间隔°3min,然后加入200吣匀楽液,于37C孵育2h,此时暴露的病毒颗粒特异性地附着于离心管3-3内壁上(免疫捕获);移去匀浆液,?8谦3次,每次间隔111]11,最后用〇丑?07欠洗1次,洗一毕作短暂离心去除管底余液;用SuperRTcDNA第链合成试剂盒按照说明书进行RT反应;109 广西大学博士学位论文中国谁山药病毒病调查、诊断和病原病毒分子生物学的研究-><MMix进行PCR反应1),2ESTaaster,相应病毒检测引物见第二章(表2PCR结束后用q;取2pLPCR产物用1.0%(W/V)琼脂糖凝胶进行电泳检测。4.3结果4.3.1病毒蛋白基因的克隆以感染YMMV和YVX的采自广西南宁的桂淮6号叶片的总RNA为模板,分别进行-PCRRTPCR扩增YMMV的基因和YVX的CP基因,得到符合预期大小特异性的产4-2PCR(1191b771b)的片段)。UC19连接,转化感受态细胞,物p和p(图回收产物与p-N-CP通过蓝d筛选和酶切鉴定获得携带YMMVIbCP和YVX的重组质粒,分别选择三个,重组质粒进行测序分析,序列比对结果显示构建的三个重组质粒携带的外源序列与相一致应病毒蛋白基因的参考序列。MA1MB1—1—.5kb1.5kb—10kb1.0.图4-2YMMV和YVX的外壳蛋白基因的PCR扩增电泳图lDNAe-NIPCRB-Ml:YVXPCR:GeneRulerkbladdrAl:YMMVbCP产物;CP的产物;的-YVXFliiCPYMMVanigure42PCRampcatonofthegeneofd-eRuer-P1PtYYXlkbDNAadderAl:PCRrocionofYMMVNIbCB:CRroducionofCPM:Genlldut;;pp---ER-NIbCP19YVX用coI和I进行对重组质粒pUC19YMMV和pUCCP分别进ET30IIa,然后分别连接至已用和&酶切消化处理的行双酶切获得目的片段/pPCR(4-3)表达载体中及酶切鉴定携带重组质粒的阳性转化子图,再次测序验证。经-T-YMMVNIbCP和了该基因以正确的读码框框架连接到表达载体上,从而得到pE30aET30a-YVX-CP原核表达重组质粒p。110 广西大学博士学位论文中国谁山贫病毒病调查、诊断和病原病毒分子生物学的研究MA1A2A3MB1B2B360—kb6.0.^kb—kb63BHU4-ET30a-YMMV-N--P图3pIbCP和pET30aYVXC的双酶切鉴定电泳图---wMeneRulerlkbDNAlarA1A:ET30aYMMVNICPiesediEcoRIanI:Gdde;3pbdgtthdSal;B1?--B3ET30aYVXiesedwithEcoRIanaI:pCPdgtdSl----YVX-FifllidET0aYMMVNrCPET30CPdigure43Gelelectrophoretcroieofasms3bandaiestedppppgwEcoRIanIithdSal---wMRllkDNAlA1AET30aYMMYNIiesedithERIanI:Geneuerbadder3:bCPdgtcodSal;;pB1-B3--:pET30aYVXCPdigestedwithEcoRIandSalI4.3.2重组蛋白的原核表达及纯化sTa,由于重组蛋白N端带有Hig标签所以重组蛋G分子量较相应病毒蛋白分子量增5--.7kDaYMMVNIbCPYVX50.25kDa32.72力口,和CP的分子量分别为和kDa。重组蛋〇----序列见附录1丨。将构建好的pET30aYMMVNIbCP和pET30aYVXCP原核表达重组质粒°?foc/)BL21(LsS),8C分别转化大肠杆菌(ienc/i/aco/ipy加入终浓度ImMIPTG在24DS-PAGE诱导培养h后,超声波破碎菌体,分别取上清和沉淀进行S分析。结果表明,---NIbCP主要以包涵体的形式存在(图44A1重组蛋dYMMV),而YVXCP主要以可溶-4B--1)。因此重组蛋白YMMVNIbCP用NNTA柱(IAen性蛋白形式存在(图4iQg公司)--在变性条件下进行亲和层析纯化,而YVXCP则采用非变性方式经NiNTA柱进行纯化。4-5纯化的重组蛋白电泳结果见图。111 广西大学博士学位论文中囯淮山药病毒病调查、诊断和病原病毒分子生物学的研究M1A1A2M2B1B266kD3——45—kkDa40Da—30kDakAW^图4-4原核表达的YMMV-NIbCP和YVX-CP重组蛋白的可溶性分析edProiWehM2RueriLarMl:UnstaintenMolecularigtarker;M:PagelUnstanedProteindde;---A2---Al:ET30aYMMVNIbCP超声裂解后的沉淀:ET30aYMMVNIbCP超声裂解后的上清p;p;----BlET30aYVX-B2ETYVX-P:CP超声裂解后的沉淀:30aCp;p超声裂解后的上清---Fiure44DissoliliexreliYMMVYVXCPgubtyssionanasisoffusonroteinofNIbCPandpypMl:UnstainedProteinMolecularWeihMarkerM2:PaeRulernsanedProeinLaddergtUtit;g;A1ofsiofT--YMMV-NIbCPA2n:Deitiersoniclsi:SuernatatuersonclsispE30aosonofsusofppy;yppET-30a-YMMV-NIbCPB---p1:SuernatantofsuersoniclsisofET30aYVXCPB2:Deositionof;ppyp;psuersonicET-3--0aYVXPplysisofpCM1A1M2B166kDa_tr:…—45kDa—_40kDa30—kDa‘'广v:图4-5纯化的YMMV-NIbCP和YVX-CP重组蛋白MlnsanedPMcrWeMake2PaRueriPnLadder:UtiroteinoleulaightrrM:lUnstanedrotei;ge;_,A-NIbCP重组蛋白-l:纯化的HisYMMVBl:纯化的HisYVXP;C重组蛋白Fure4-PurYMMV--ierecominanoNIanYVXPig5ifdbtroteinfbCPdCpMillil:UnstanedProteinMoecuarWeihtMarkerM2:PaeRulerUnstainedProenLaddergt;g;-AlPuHsYMMV-enB1PurieHisYVX-Proen:rifiediNIbCProti:ifdCptip;112 广西大本博士本位论文中国浪山药病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物羊的研究4.3.3抗体效价测定将纯化的重组蛋白用0.02MPBS(pH7.4)调整浓度至lmg/mL,分别取lmL纯化,,的蛋白样本免疫新西兰大白兔两个月后采血分离血清,用剩下的纯化蛋白样本进行-N抗原亲和纯化。获得18.4mL浓度为0.575mg/mL的YMMVIbCP抗体和19.8mL浓度为m--0.898/mL的YVXCP抗体。抗体效价检测结果显示NIbCPg,YMMV纯化抗体稀释512000倍时检测因子(Detectionfacter,Sample/Blank)依然大于2.1,其中抗体在稀释--16000倍时的检测因子最大(图46),而YVXCP纯化抗体稀释256000倍时检测因子依-然大于2.1,其中抗体在稀释8000倍时的检测因子最大(图47)。——-———?-uneru?PudanAPreibimmsemrifietodyDetectionfactorI3.50045.0002 ̄40000,?—-3t1E.000^I§'350001.2■500^I*■30t/sNJ.000|.2'.00025|NX.000>'20?.0001I1.500■15000,〇〇〇?^!1■0a10.0010500?■5^.000! ̄#4 ̄I1#1#1#a_ ̄Jf100.000.000^###声y#3Antibodydilutions4-6V-图YMMNIbCP多克隆抗体效价测定Figure4-6DeterminationoftheYMMV-NIbCPspecificantibodytiter113 广西大学博士学位论文中国淮山贫病毒病调音、诊断和病尿病毒分子生物学的研究—P-reimmuneserumPurifiedantibodyDetectionfactorEQ)3.50030.000l1■3_'—25.000!#_I2?500■I20.000I■15000::IIZ?10000:?I^■5.0000-.500|4^^It?:fI*■?Iii_-0?■?ti-.000〇.〇〇〇Antibodydilutions4-7VX-P图YC多克隆抗体效价测定Fre-7De-termtnVXittigu4inaiooftheYCPspecifcantibodyier44A-ELISA.3.CP对淮山药病毒病样本的检出能力4-I.3.4.1ACPELSA对YMMV阳性样本的检出會g力取YMMV阳性的桂淮6号新鲜叶片约0.3g,用包含2%PVPP的抗原包被缓冲液(pH9.6)研磨充分,9000rpm离心10min后取上清液,用抗原包被缓冲液进行10倍的梯度稀释,然后用稀释8000倍的YMMV抗体进行ELISA检测其检出病毒的能力。结果发-现病叶汁液稀释1000倍仍有明显阳性反应(图48)。2.500:2.000I〇1.500\占Negative〇1.000Postveii0.500*v. ̄* ̄.—.-_—l一:T?0丨;.000t234561101010101010Blank抗蜓稀籽倍数图4-8ACP-ELISA对淮山药YMMV病毒病样本的检出能力-8-Figure4ACPELISAanalysisofYMMV411 广西大学t尊士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究4-.3.4.2ACPELISA对YVX阳性样本的检出能力同样的,取YVX阳性的紫山药新鲜叶片约0.3g,用包含2%PVPP的抗原包被缓冲液9.6)研磨充分9000rm离心10min后取上清10(pH,p液进行倍的梯度稀释,然后用稀释8000倍的YVX抗体进行ELISA检测其检出病毒的能力。结果发现病叶汁液稀0(4-9释100倍仍有明显阳性反应图)。2.5002.0005001S\qNeativeg°1000-m-P.ositivej\\0.500j—fr—y■J——r-0.0004?iiii234561101010101010Blank抗Ki稀释估数4-9-图ACPELISA对淮山药YVX病毒病样本的检出能力Fure4--ELIAnaACPlisoYVXig9Saysf-45IRT-PCR检.3.C测淮山药病毒用稀释8000倍的YMMV抗体包被1.5mL离心管,然后取4.3.4.1中研磨的YMMV6号新鲜叶片汁液,用抗原包被缓冲液进行0,阳性的桂淮1倍梯度稀释分别加入包被--MMV-好抗体的离心管进行ICRTPCR检测该抗体检出病毒的能力F。病毒检测引物为Y6-R和YMMV,预期PCR产物大小为305b。实验结果显示p,病叶汁液稀释10倍仍能特异性检测出YMMV4-1。(图0)MNC12345678—kb-图410IC-RT-PCR对淮山药YMMV病毒病样本的检出能力8M?:GeneRulerlkbpDNAladerNC:阴性对照18:0lusd;;抗原稀释KM倍---Figure410SensitivityofICRTPCRusedforYMMVdetection8??neRulDNANC1M:Geler1kbusladder:neativecontrol18:Antiendiluteduto010timesp;g;gp115 国浪山苗病毒病调查、诊断和病尿病毒分子生物学的研究广西大学博士学位论文中VX抗体包被1.5mL离心4.3A2用稀释8000倍的Y管,然后取中研磨的YVX阳1〇倍梯度稀释,分别加入包被好抗性的紫山药新鲜叶片汁液,用抗原包被缓冲液进行---YVXF和体的离心管进行ICRTPCR检测该抗体检出病毒的能力。病毒检测引物为5-b。RPCR产物大小为692实验结果显示,病叶汁液稀释1〇倍仍能特异性YVX,预期pYMMV-检测出(图411)。MNC12345678—kb4---图11ICRTPCR对淮山药YVX病毒病样本的检出能力8 ̄ ̄neRur:010MllDNAlerNC:阴性对照;18抗原稀释1倍:Gelekbpusadd;---11usedforYVXteton.FitvitICRTPCRdeciiure4Sensiyofg8-o-MeRurluDNAnetvecontrol18:Antiendilutedupt1010timesladderNC:ai:Genlekbpls;;gg4.6.3其它淮山药病毒抗体的制备JYMV-CP的单克隆抗体委托艾比玛特(Abmart)公司通过SEAL技术成功制备,1ernBt体进行特异性检测,发现编号为20702通过Westlo对获得的6个细胞株产生的抗-1512000)(41),的细胞株产生的抗体的特异性最好,效价最高(:图2该抗体对应的YMV的外壳蛋白的N端?50LYNPEQVDLJ(第41个氨基酸);抗原表位为L,位于另外,通过原核表达纯化CYNMV和YLV的外壳蛋白并免疫新西兰大白兔制备相应的-1256000(图413多克隆抗体:和图,经效价测定显示所有制备的抗体的效价均大于4-14)。116 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调音、诊断和病康病毒分子生物学的研究120623120622120702120625120707120709MHVI/IVHN/MH\/MHVMH>/MH\uiiiLLYNPEQVDLLLYNPEQVDLLLYNPEQVDLEENTERHTAEEENTERHTAEKDVDVGSVGT图4-12JYMV-CP的不同表位的单克隆抗体的特异性检测M:PageRulerPrestainedProteinLadder;H:健康淮山药;V:感染JYMV的淮山药-mWeFi412DeterinationofoclonalantibodsifcitbmBlotanalsisuremonyecirtegpyyyMPRPLaeatV-:JYMVnf:aeulerPrestainedroteindderH:Hlhamiectedam;g;yyy—a—?-*PonfacPreiruurifibDtrEmmunesemiedantodyetecito〇4..00030000g3500£■25x.000画、3邏.卜si'20000-〇〇■^J■X■S2.000.15.000|1.500■|10.000I■1.000Y1I5*50000■.500I?—-?Jt—■#r*01tIt?t?#.000〇.〇〇〇3<#次f#Antibodydilutions4--图13JYMVCP单克隆抗体效价测定F-DJ-sittiure413eterminationoftheYMVCPecifcantibodyiergp117 ?博士学位论文中国淮山苗病毒病调查广西大学、诊断和病康病毒分子生物学的研究—--Pr-PAeineserumurifnibDeifacrmmuiedatodytectontoE20)?3.50030.00013■000'25.000|^琴2..500i.20.000i■15000■I,500^I'10000,〇〇〇?I|/差■50?.000.500|ifI?J-01?tt??#4.0000.000^#A#声,#<Antibodydilutions-4YNMV-图41CCP多克隆抗体效价测定-FV-nigure414DeterminationoftheCYNMCPspecificatibodytiter——r-mmunerrfPeiecrEiseumPuidantibodyDetectionfato2a>?3.50030.000「1*3000■25.000|琴2,500I■02.000I1■52.000TV>■'S\15.000T§?ra1.500^Ik|*10000?1i.oooI^'■50000.5001^1?'00■1’1f1?1?1?1?0000.00.z###,#<zzAntibodydilutions4--图15YLVCP多克隆抗体效价测定F--iure415DeterinationoftheYLVCPsecicantittergmpifbodyi4.3.7Westernblot验证淮山药病毒抗体特异性-YNMV使用植物蛋白提取试剂盒分别提取经RTPCR检测为感染C、JYMV、YMMV、YLV和YVX的淮山药叶片总蛋白V、MV、YMMV、,以制备的CYNMJY118 广西大学t尊士芈位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病厫病毒分子生物掌的研究YLV和YVX的病毒抗体稀释5000倍分别进行Westernblot实验验证这些病毒抗体的特异性。Westernblot实验结果显示,用JYMV抗体进行杂交有少量非常微弱的非特异性条带产生,用YMMV抗体检测JYMV阳性植株时发现有微弱的交叉反应。其余抗体均能特异性检测出相应的病毒,而与其它淮山药病毒没有明显的交叉反应,说明这些病毒4-抗体的特异性非常好(图16)。M123456789A—B撼CYNMV25—kDa麵獅^25kDa-DYMMV35kDa—25—kDaEYLV35—kDa25—kDaYVX35kDa25—kDa■響^119 广西大学博士学位论文中圔浪山苗病毒病调查、诊断和病凰病毒分子生物掌的研究-图416Westernblot验证淮山药的病毒抗体特异性A山药总蛋白SDS-PAGE电泳分析BCYNMV抗体特异性验证CJYMV抗体特异性验证:淮;:;:;D:YMMV抗体特异性验证E:YLV抗体特异性验证F:YVX抗体特异性验证:;M:PaeRulerPrestainedProteinLadder;1:大和长芋山药(CYNMV阳性)2:g;大和长芋山药(YLV?V阳阳性);3:桂淮2号(DBV阳性);4?铁棍山药(YL性);5:铁棍山药(YYSMV阳性);6:铁棍山药(CYNMV阳性);7:铁棍山药(YMMV和JYMV阳性);8:水山药(YMMV和JYMV阳性);9:紫山药(YMMV和YVX阳性)F-igure416WesternblotanalysisofamvirusesantibodsecificityypySS_PAGEA:DanalsisofamtotalroteinB:WesternblotanalsisofCYNMVantibodsecificityyp;yypy;CblliJYMVtibodifiitDWtbllisfd:Westernotanassofanseccy:esernotanasoYMMVantiboyy;pyyspecificity;E:WesternblotanalysisofYLVantibodyspecificity;F:WesternblotanalysisofYVXantibodysecificit;pyM:PageRulerPrestainedProteinLadder;1:D.oppositacv.DHCY(CYNMV);2)OiHCYYLV3DaiG2DBV4OiG:Z.ostacv.D():.Joncacv.H:D.ostacv.TYLVpp;p()\pp();5:D.Oositacv.TGYYSMV6:Z).Oositacv.TGCYNMVpp;;()pp()7:D.Oppositacv.TGYMMVandJYMV8:Z).Oppositacv.SSYYMMV();();9:D.Alatacv.ZYYMMVandYVX()4---.3.8五种淮山药病毒的ICPCR或ICRTPCR检测方法的建立参考国内外已经报道的淮山药病毒检测引物,并根据已获得侵染中国淮山药的病毒序列设计病毒特异性引物-Se获得的淮山药的r&L基因,还根据淮山药RNAq深度测序二-序列设计内参引物(见第章的表21),结合本研究制备的针对CYNMV、JYMV、YMMV--、YLV和YVX的病毒抗体,建立了相应病毒的ICRTPCR检测方法(实验操42--.14。CPCR、作步骤见.)利用IRT检测方法可以髙效灵敏、快速、特异性地检出CYNMV-、JYMV、YMMV、YLV和YVX412,病毒检测结果如图所示,所有的病毒检测引物均可以在相应的阳性样本中扩增出特异性的PCR产物。120 国推山药■病毒病调查研究广西大学博士学位论文中、诊断和病尿病毒分子生物学的CYNMVjymv上’",dC二)f'r^YMMV:^^YVX---图417淮山药病毒ICRTPCR检测电泳分析M:GeneRuerlluDNAladderNTC:;PC:阳性对照;NC:阴性对照;lkbs;无模板对照p-V)-WM-2YMVYVX)DHCY-(YLGH2SG:2(J和;1:大和长芋山药;桂淮号---NC-(YMMV)3山药(JYMVYVX)GH6WX;1:桂淮6号;TG:铁棍和--FX-3BBWV2YNMV、YMMV和YLV)SSY:水山药(、C;TG---WX-MV、YMMVYVX)FX22:ZY1:;铁棍山药;紫山药(CYN和--MMV--1YMMVYVX)ZYXZ1YVX)YB3NC:和:粤北3号(和:徐农紫药(Y--PCRF-17DinoioamviruesbICRTigure4agssfsyyPClRiveconNC:neivontrMlkDNAlerNTC:notemlttrol:ostitrolteco:Geneulerblusaddaecon;g;p;p;p----2WM2.YMVYVXDHCYSG1.DH:D.JaonicvGH2Jand:D.oositecvCYYLVGHca);pp;p(()----WXNC1:.ositav.YMVanYVXGH6:D.Alatacv.GH6(YMMVTG3DOppcTGJd););(-Y-FX-anVSS3:D.Oositacv.SSYBBWV2>CYNMVYMMVdYLpp,;()--ndYVX--WXTG22.ZY1:D.Aaav.ZYaFX:D.OositacvTGltcCYNMV,YMMV;pp;()----av.dYB3NC1.dYVXZYXZ1:D.AltacZYYMMVanYVX):D.AlatacvYB3(YMMVan);(121 ?病毒病调杳广西大举博士学位论文中国淮山药、诊断和病康病毒分子生物本的研究-4.3.9多重RTPCR检测淮山药病毒根据已获得侵染中国淮山药的病毒序列设计特异性引物(GeneSecificPrimer,p’GSP),在正向引物的5端加上通用接头引物序列(UniverseTagSequence,UTS)的’Ta-UTS的Ta-R的序列gF序列,在反向引物的5端加上g。在对样本进行反转录的过程-2所列引物的反向引物混合液中,在20吣反应体系中加入表4(RTPrimerMix,RPM),使每条反向引物的终浓度为500nM。反转录结束后,取8iL反转录产物,加入10|iL2|xESTaqMasterMix、2iL正向引物和接头引物按1:45比例的混合液(ForwardPrimer|Mix,FPM),每条正向引物的终浓度为200nM,轻微混匀后直接进行多重PCR反应-(图418。P5PCR产物进行电泳检测(图4-1。)CR结束之后直接取队的9)电泳结果显示只有此前检测为YMMV阳性的粤北3号样本没有扩增出预期大小的PCR产物,其余病毒病样本均扩增出预期大小的目的片段。本工作建立的YMMV、JYMV、CYNMV和YLV的多重一PCR检测方法,可以在个反应中同时检测上述病毒。,,53RNAA’5,RNAB31IGSP1UTS3’cDNAA^,5,cD3NAB,,53DNAC— ̄一m^I麵^45J'’35DNAA,’53DNAB’3,5DNAC4-图18多重PCR扩增策略-maFure4tcarammultixPig18ScheidigofpleCR122 ■广西大学病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学?的研究彳尊士学位论文中国淮山药M123456VirusProductsizeBBWV361bp.CMV323bpYMMV305bp500bpJYMV286bp\YVX265bp層CYNMV232bp丫MV224bp\\YCNMV209bp'YLV196bp;,DRbcL149bp4--图19多重RTPCR检测淮山药病毒DT-MRerDNAder1:3(YMMV、CYNMV和YLV阳性);2::GeneullOObpIad;大和长芋山药-YLV阳性)DT4JYMV:(JYMV5:(阳性):4阳性);大和长芋山药;3水山药(;铁棍山药粤北3号(YMMV阳性);6:水山药(YMMV、JYMV、CYNMV和YLV阳性)l--viRTPCRF41Dnoofirubmutlexigure9iagsisyamsesypM:GeneRulerlkbplusDNAladder1:D.oositacv.DHCY(YMMV,CYNMVandYLV);2:D.;pp.YYLV4:D.oositav.TJY:D.oositacv.DHCYDT4JYMV3:D.oositacvSS(cGMV5;pp(;pp;pp))()alatacv.YB3(YMMV);6:D.oppositacv.SSY(YMMV,JYMV,CYNMVandYLV)4.4讨论在病毒检疫方面最重要的是检测技术的可靠性和灵敏度。多种侵染淮山药的病毒已经被报道,但是关于其检测技术的研究并不多。国内对淮山药病毒的研究比较少,目前尚未见淮山药病毒抗体及相关检测方法的报道。29_[’36,57’176178]淮山药病毒的混合侵染现象普遍存在,不同淮山药叶片样本中的病毒种类和含量各异,,病毒含量极,有些样本不表现症状但是含有病毒而有些样本可能刚被病毒侵染少,有必要比较各种病毒检测方法的,因此单靠传统的病毒学检测方法很难做出正确的判断。可靠性和灵敏度,以保证淮山药病毒检测的可靠性123 广西大学博士学位论文中固推山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究1['不需要提取核酸器设血清学检测方法的优点是可以使用样本粗提液进行检测,对仪。备的要求较低,检测成本相对核酸检测技术低,操作简便,可以大批量检测样本但是需要有特异性的病毒抗体。其主要缺点是耗时,检测灵敏度相对较低,可能会出现假阴性的结果,而有些抗体特异性不够好则可能出现假阳性的结果。血清学检测方法的特异性和灵敏度主要一取决于抗体的质量。完整的植物病毒作为核蛋白大分子,般具有良好的抗原特性,但一是纯化病毒粒子相对比较困难,采用原核表达病毒蛋白制备的抗体般不会与宿主蛋白发生反应,而采用纯化病毒粒子制备抗体则有可能由于为完全去除宿主蛋白或有未知的病毒蛋白,导致制备的病毒抗体用于检测时出现非特异性反应。而根据病毒的某些表位串联表达制备的单克隆抗体或高特异性的多克隆抗体用于病毒检测时,很可能由于其高特异性,只能识18()[1别同种病毒的某些株系,在病毒检测过程中可能出现假阴性。本研究选择原核表达纯化病毒外壳蛋白免疫新西兰大白兔进行病毒抗体制备,纯化的YMMV、YVX、YLV和156CYNMV的多克隆抗体的效价均大于:2000,且抗体特异性较好。另外,采用串联表达病YMV140,YMV的毒蛋白免疫小鼠制备的J单克隆抗体的效价也高达:600但是只能识别J某些株系。淮山药样本粗提液的稀释比例对病毒检测结果的影响也比较大,因为不同病毒在样本中關,有研究报道进行CMV检测时,淮山药样本粗提液可以稀释160而进的含量差异较大倍,83及[]行检测时,淮山药样本粗提液只能稀释20倍。本研究制备的淮山药病毒抗体在淮山药粗提液稀释500倍时仍能进行有效检测。核酸检测技术相对于ELISA和SEM有更高的检测灵敏度,不但省时省力,而且可以随后对病毒进行序列测定,,进行病毒序列的遗传多样性研究。该技术需要提取核酸不能有抑制PCR反应的物质存在,PCR的条件也可能影响病毒的检测效率,有报道称MgCl2和dNTPs的浓181[]度可能影响PCR反应。因为低浓度的dNTPs避免引物与模板的非特异性结合,从而也会降,而MC、低简并引物用于检测病毒的扩增效率gl^浓度贝y影响引物的退火酶的活性和产物的一特异性,RNA的质量和反转录的效率对检测RNA病毒有。特别是对于些含量比较低的病毒重要的影响。采用试剂盒提取RNA和进行反转录反应,既可以保证样本的纯度,又可以保证检测的稳定性和平行性,但是使用试剂盒会导致检测成本的增加。而且病毒的遗传多样性丰182]PCR[,富,有时候引物的特异性太强也不利于病毒的检测有可能导致假阴性。所以针对遗传变异性较大的病毒,需要在病毒序列的保守区域设计简并引物用于病毒的分子生物学检测18365[[]]。而引物的高度简并性则有可能降低检测的灵敏度,并且PCR的检测效率很大程度上取决于核酸的提取方法、病毒RNA的反转录效率以及PCR反应的条件。特别是采用PCR方法检241 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调查诊断和病屎病?分子生物学的研究、测侵染淮山药的价办ov/ms的时候,某些只是该病毒的部分序列整合到淮山药基因组上的样本也可能被检出为阳性,但其可能并不含有游离的病毒核酸。因此,需要更深入研究淮山药病毒的遗传多样性,不断优化病毒的检测引物,保证其检测的可靠性和灵敏度。-RT-PCR技术将血清学技术和核酸检测技术结合起来的IC,既有免疫学检测不需要提取48PCR13核酸的优点,又有灵敏度高的优点,其检测灵敏度是ELISA的HXM000倍,而且检测成本相对较低。本研究制备的YMMV抗体用于检测JYMV侵染的淮山药样本时发现有微弱的交叉反应,这可能是由于这两种病毒都是马铃薯Y病毒属病毒,二者具有相同或相似的抗原一决定簇-RT-PCR检测方法则能够很好解。而采用IC决这问题。一般采用种薯进行种植淮山药在生产上,这种无性繁殖方式容易导致病毒的积累,本研究制备了多种淮山药病毒抗体,建立的相应淮山药病毒检测方法不但适用于淮山药叶片的检测,还适用于种薯的检测,为淮山药种质资源的病毒检测以及生产上的病毒监测和防控奠定了基础,具有良好的应用前景。125 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病讲查诊断和病尿病?分子生物学的研究、第五章总结与展望5.1全文总结一病毒病是淮山药生产上的重要病害之,在世界各国的淮山药种植区均有发生,病毒侵染淮山药可引起叶片花叶、畸形、黄化、褪绿和坏死等症状,降低叶片的光合作用效率,对淮山药的产量和品质造成重大影响。-目前世界上鍵的侵染淮山药的病毒种类超过10种(表13和表14),本研究通过调查中国的淮山药种植面积较大的广西、江西、河南、山东和江苏等主要淮山药产区的病毒病发生情况,采集多个品种共计365份淮山药样本,运用SmallRNA深度测雜术对部分淮山药病毒病样本混合后进行较为全面的病原病毒鉴定,发现侵染中国淮山药的病截步及7个病毒属中的9种病5-PCR-毒(表1),并在此基础上_^RTPCR检测技术对采集的淮山药的单样本进行病原病毒检测,发现不同地区不同品种的淮山药的病毒检出率差异较大,病原病毒种类也存在 ̄较大差异。其中广西和江西主栽参薯和日本薯蓣,田间发病率在7%40%之间,病原病毒主要为DBV、YMMV和YVX南、山东和江苏等北方省份主要种植普通山药,田;河?2%59DBV、YMMV、CYNMV、BBWV-2、JYMV、间发病率在.3%之间,病原病毒主要有YLV和YVX-。其中紫山药易受YMMV和YVX侵染,铁棍山药易受YYSMV、BBWV2、JYMVLV-2和YVX侵染,水山药易受JYMV、Y、YMMV和BBWV侵染。病毒复合侵染现象普遍存在,在检测的365份样本中有138份样本为两种以上病毒复合侵染,其中在某MMV-些水山药样本中可同时检测出5种病毒(Y、YLV、BBWV2、CYNMV、JYMV)。随着南北方淮山药种质资源的交流日益频繁,可能导致淮山药病毒的复合侵染现象更加普遍,病毒病的发生情况更加严重,对淮山药生产的威胁更大,因此需要在淮山药病毒病的监测和种质检疫方面予以重视。世界范围内的淮山药种类众多,种植区域横跨热带、亚热带和温带,侵染淮山药的病原病毒种类差异较大,如YMV在非洲的淮山药种植区普遍存在,侵染淮山药后造成淮山药的严重减产,但在我国尚未检测到该病毒的存在。此外,CMV和DLV仅在非洲南部的一CMV和DLV侵染淮山药的报道些国家的淮山药上被发现。由于DLV,我国也未见未见核苷酸序列报道,因此本研究发现的同属于PotecWmv的YVX是否与DLV为同种病126 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病屎病毒分子生物学的研究一毒,还有待进步的确认。在我国最普遍存在的侵染淮山药的病毒是DBV和YMMV,在所调查的淮山药种植面积最大的五省区均有发现一。而其它病毒的分布有定的区域性,-如YCNMV仅在云南和广西有发现,BBWV2和YLV也主要侵染河南、江苏和山东等地的北方淮山药品种(表5-1)。表5_1侵染中国的淮山药的病毒种类Tab-mmale51SuryofvirusseciesinfectinamsinChinapgyVirusGroupVirusYamspeciesGeographicspreadingNewvirusAntiserumafectedPotyvirusYMMVD.alataGuangxi,Jiangxi,VD.aonicaHenanJiansujp,g,D.oppositaShandongJYMVD.aonicaGuanxiJiansuVjpg,g,.oositananDppHe,ShandongMacluravirusCYNMVD.oppositaJiangsu,Shandong,VD.alataHenanYCNMVD.zingbierensisYunnan,D.alataGuangxiPotexvirusYVXD.alataGuangxi,Jiangxi,YESVD.oppositaHenan,Jiangsu-FabavirusBBWV2D.oositananJppHeiansuShandon,g,gCarlavirusYLVD.oppositaHenan,Jiangsu,ShandongYESVBadnavirusDBVD.alataGuangxi,Jiangxi,D.japonicaHenan,Jiangsu,D.oppositaShandongGeminivirusYYSMVD.aponicaGuanxi,Henan,YESjg.oositaJDiansuShandonppg,g--Se测序技术并结合RACE和RTPCR技术成功克隆到YMMV-NC应用RNAq深度1、-----WX--JYMVWX1、CYNMVFX1、BBWV2SG1、YVX1、YLVSG1和YYSMYFX1--WX-等淮山药病毒分离物的基因组全长序列,其中YVX1、YLVSG1和YYVMVFX1是新发现的淮山药病原病毒,分别具有Potejcv/rus、Car/av/ms和5egomov/ms的基因组一致性都比较低结构特征,但是与已知的这三个属的病毒的核苷酸和氨基酸序列,均是这三个病毒属的新病毒种。对本研究获得的26个YMMV分离物与世界上其它淮山药种127 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调查诊断和病康病毒分子生物李的研究、植区鉴定到的19个YMMV分离物进行遗传多样性和进化关系分析,发现分成的5个组MMV不同群。与地理位置密切相关,可能与地理隔离导致Y体的单独进化有关侵染中国淮山药的YMMV分离物在系统进化关系上分成的两个组分别来自南方和北方淮山药产区,而且这两个组间的进化关系较远,表明地理隔离和淮山药品种差异对YMMV的进化均有影响。同时本研究还发现YMMV分离物存在重组现象,P1到CI区域包含重组热点。重组事件的发生可能是由于南北方的种质资源交流所致,而重组病毒的出现可。能突破不同淮山药品种的宿主抗性,因此需要在种质资源交流过程中加强病毒的检测在较全面了解中国淮山药病原病毒种类的基础上,通过SEAL技术成功制备了JYMV的单克隆抗体,通过原核表达并纯化病毒外壳蛋白制备了YMMV、YVX、CYNMV和YLV的多克隆JYMV抗体,发现除了的单克隆抗体在检测某些淮山药样本时有微弱的非特异性反应,其它淮山药病毒多克隆抗体的特异性均较好。制备的所有抗体的效价均-RT-大于1:256000。基于以上病毒抗体PCR,建立了相应病毒的ELISA检测方法和IC3检测方法,其中发现病叶汁液稀释1〇倍时用ELISA方法检测YMMV和YVX还有阳5-RT-PCR检性反应,而病叶汁液稀释10倍时使用IC测方法仍能特异性检测出YMMV和YVX。本工作还建立了YMMV、JYMV、CYNMV和YLV的多重PCR检测方法,可以在一个反应中同时检测上述病毒。由于淮山药病原病毒种类多,使用该方法进行病原病毒检测具有通量高、操作方便、相对成本低等特点,具有良好的应用前景。5.2本研究的创新点1.首次较为全面地调查了中国淮山药种植面积最大的五个省区的的淮山药产地的病毒病发生情况,并通过深度测序技术进行全面的病原病毒鉴定,发现6种国际上已经报道的侵染淮山药的病毒和3种侵染淮山药的新病毒。2.首次发现粉蚧可以传播YYSMV,YYSMV可侵染铁棍山药、大和长芋山药、马唐。、反枝苋、皱果苋和牛筋草3-.首次从细胞和亚细胞水平展示BBWV2、YMMV、JYMV和YVX侵染淮山药造成的病理学变化,,发现这些病毒侵染淮山药可引起线粒体和叶绿体异常以及膜增生等病变现象为相应病毒的细胞学水平上的诊断提供参考。、JYMV、CYNMV-、4.首次对侵染中国淮山药的YMMV、BBWV2YVX、YLV和YYSMV进行了基因组全序列测定和分子特征分析。同时对侵染淮山药的YMMV、128 ■病毒病调查广西大学博士学位论文中国淮山充、诊断和病康病毒分子生物学的研究DBV和YYSMV进行了遗传多样性分析,发现这3种病毒在进化过程中存在显著的分子变异。,其中YMMV还存在显著的重组现象5.制备了YMMV、CYNMV、YVX和YLV的多克隆抗体和JYMV的单克隆抗体,ELISAI-RT-基于这些抗体,建立了针对中国淮山药病毒的和CPCR检测方法。-6、、PCR.首次建立了可同时检测YMMVJYMVCYNMV和YLV的多重RT检测方法。5.3工作展望本研究选择淮山药种植面积较大的广西、江西、河南、山东和江苏等省区的比较有代表性的地点进行淮山药病毒病发生情况调查和病原病毒鉴定,可以初步了解中国淮山药病毒病的发生情况和病原病毒种类。但是中国淮山药种植区遍布大江南北,在广东、福建、浙江、河北、云南、贵州、甘肃和新疆等省也有广泛种植,由于气候和土壤诗点不同,各地种植的淮山药品一一步调查和鉴定种差异较大,淮山药病毒病的发生情况和病原病毒种类还有待进。下步工作将通过对更多淮山药产地的不同淮山药品种的病毒病样本进行采集并通过小RNA深度测序更一全面普查侵染中国淮山药的病原病毒种类,进步完善淮山药病原病毒检测目录,为我国的淮山药生产和种质资源交流过程中检测淮山药病毒提供依据。病毒抗体在植物病毒检测中发挥着重要的作用,本研究制备了JYMV的单克隆抗体和YMMV-2多、YLV、YVX和CYNMV的多克隆抗体,BBWV克隆抗体正在制备当中,其特一一异性和效价还有待进步验证。下步还要考虑制备DBV和YYSMV的多克隆抗体并建立相-PCR应的IC检测方法。此外,虽然核酸检测技术相对于血清学检测技术的灵敏度高,但是由一,根于病毒的变异较快,因此需要对病毒遗传多样性分析进行进步分析据病毒基因组的保守区设计检测引物并优化反应体系,以确保检测结果的可靠性。通过淮山药病毒的遗传多样。YYSMV性分析,,还可以更好地了解其进化过程和宿主适应性本研究还发现粉蚧可以传播并且可以在马唐、反枝苋、皱果苋和牛筋草等杂草中传播该病毒,因此需要在淮山药生产上重视清除田间杂草,防止田间杂草作为中间寄主进行病毒传播。其它淮山药病毒的寄一主范围步研究。、传播介体和传播方式还有待进本研究制备的淮山药病毒抗体可用于免疫共沉淀研究病毒蛋白与寄主蛋白的相互作用。此外,本研究所在课题组已经对桂淮2号淮山药进行了全基因组测序,再加上RNA-SeEST的分子q获得的不同淮山药品种的转录组数据,可以开发出基于标记用于129 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究一入淮山药种质资源鉴定,或进步研究不同病毒侵染淮山药后的差异基因表达谱,为深-研究淮山药病毒的侵染机制和病毒寄主互作提供重要信息。淮山药通过无性繁殖方式进行种植,导致病毒的积累日益严重,田间发病率居高不下。因此,亟需探索淮山药的脱毒技术,获得不同淮山药病毒的脱毒方法,生产淮山药脱毒苗,应用于大田生产和种质资源交流。本实验室对感染YMMV的淮山药组培苗(粤北3号)删利巴韦林、盐酸吗啉狐和阿昔齡等i_毒药剂处理,获得了较好的脱毒縣,今后可参考该脱毒技术对其它淮山药品种进行脱毒试验,获得无毒的淮山药组培苗应用于生产。130 广西大学傅士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究参考文献[1]韦本辉.中国淮山药栽培.北京2013中国农业出版社.,,[2]ToyoharaH,IrieK5DingW,IwataH,FujimakiH5KikuchiF,etaLEvaluationoftubershapeofam(DioscoreaalataL.)cultivarsbimaeanalsisandelliticFourierdescritors.yygypp-SABRAOJournalofBreedingandGenetics200032:317.,,[3]BsmL.DiversityofvirusesinfectingDioscoreaspeciesintheSouthPacific:TheUniversitofGreenwich2002y.,4CourseG.Yams.Anaccountofthenatureoriinscultivationandutilisationofthe[]yD,g,usefulmembersoftheDioscoreaceae.1967.5AensuESCourseDG.Guineaamsthebotan,ethnobotanuseandossiblefuture[]y,yyyy,p-ofyamsinWestAfrica.EconomicBotany197226:30118.,,[6AlexanderJCourseyDUCKOP,DimblebG.Theoriinsofyamcultivation.The],,ygdomesandanma-ticationandexploitationoflantsils1969:40525.,p[7HahnS,OsiruD,AkorodaM,OtooJ.YamroductionanditsfUturerosects.Outlook]ppponrcureAgiltu1987.,-P-8MalaurieBTrouslotMFBerthaudJBoualemMinelADubemJ.Mediumtermand[],s,,,,-longterminvitroconservationandsafeinternationalexchangeofyam{Dioscoreaspp.)-ermlasm.ElectronicJournalofBiotechnolog19981:267.gpy,,[9]FAO.FoodandAgriculturalOrganisationoftheUnitedNations.FAOStatistics,2012,FAO:htt://faostat.fao.or/.pg[10]OnwuemeIC,CharlesWB.Tropicalrootandtubercrops:production,perspectivesandfuturerosects:Food&AricultureOr.1994.ppgg,[11]OsaieAU.Theamtuberinstorae1992.gyg,'12OenuaVA.Nieriasfoodsandfeedinstuffs:Universitress1968.[]ygggyP,[13]FrancisB,HallidayD,RobinsonJ.Yamsasasourceofedibleprotein.TropicalScience,197517.,14WanasunderaJRavindranG.NutritionalassessmentofamDioscoreaalatatubers.[],y{)and-PltFoosforHumanNutrition199446:339.,,131 广西大学博士学位论文中国豫山药病毒病调查诊断和病尿病毒分子生物学的研究、[15]WalshS.Plantbasednutritionandhealth:VeganSociety,2003.-rand-rrran16BMilleJMilleJBBxiiJFosterPowellK.Thenewlucoserevolutionocket[],,,gpuidetotheto100lowGIfoods:Marlowe&Coman2003.gppy,17DerasL.Theam:atroicalrootcro:Macmillan1993.[]g,ypp[18]KomesarofFP,BlackC,CableV,SudhirK.Effectsofwildyamextractonmenopausalsymptoms,lipidsandsexhormonesinhealthymenopausalwomen.Climacteric,2001,4-14450.:19UlbrichtCBaschESollarsDHammemessPHashmiS.WildamDioscoreaceae.[],,,,y()Journa-lofherbalharmacothera20033:7791.ppy,,--20CsuLee-scoreabata[]HouWFMH.Yam(Diotasubermucilaeexhibited,H,L)tgan-tioxidantactivitiesinvitro.Plantamedica200268:10726.,,[21]KondoT,KasaiK,YamashitaK,IshitaniM.Selectionanddiscriminationofanat-ttenuatedstrainofChineseamnecroticmosaicvirusforcrossroection.Journalofyptho2007-GeneralPlantPalo73:1525.gy,,[22]AmusaN,AdigbiteA,MuhammedS,BaiyewuR.Yamdiseasesanditsmanagementin-eria:Nig.AfricanJournalofBiotechnology2004,2497502.,-mana23AMQKMJAEBCEJL.ICTVIntetiolcommitteeontaxonomofvirusesninth[],,,yreortoftheinternationalcommitteeontaxonomofviruses.AcademicPress/Elsevier2011py,,London.24:洪键李德德周雪平.植物病毒分类图谱.北京科学出版社2001.[],,,[25]HollingsM,BruntA.Potyviruses.Elsevier/NorthHolland,Amsterdam,1981.[26]DoughertyWG,CarringtonJC.Expressionandfunctionofpotyviralgeneproducts.-AnnualReviewofPhytoatholo198826:12343.pgy,,27HariV.TheRNAoftobaccoetchvirus:fiirthercharacterizationanddetectionofrotein[]p-linkedtoRNA.Virolo1981112:3919.gy,,-2-IncHaenniLBF8himaSAemardi.PotvirusroteinsUrcuui:awealthoffunctions.[]q,,ypVrrch-iusResea200174:15775.,,[29]HughesJdA,DongoL,AtiriG.Virusesinfectingcultivatedyams(ZJzosrorefla/afaandD.rotundatainNieria.Phtoatholo199787:545.)gypgy,,132 广西大学博士学位论文中国液山苗病毒病调査诊断和病康病毒分子生物学的研究、[30]BruntAA?CrabtreeK,DallwitzM,GibbsA,WatsonL.Virusesofplants.DescriptionsandlistsfromtheVIDEdatabase:CABINTERNATIONAL1996.,31KenonL,ShoinkaS,HuhesJ,OduB.AnoverviewofvirusesinfectinDioscorea[]yyggams---insubSaharanAfrica.PlantViroloinSubSaharanAfrica2001:4329.ygy,32ene-[]ThouvlJCFauuetC.YammosaicanewotyvirusinfectinDioscoreacaenensis,qy,pgI-inthevorCoast.AnnalsofAliedBiolo197993:27983.yppgy,,33FuiSMitobeINakamaeHNatsuakiK.Nucleotideseuenceofcoatroteineneof[]j,,,qpgammildmosaicvirusisolatedinPauaNewGuinea.Archivesofvirolog1999y,py,,-144:14159.34FuiSNakamaeH.ComletenucleotideseuenceoftheenomicRNAofaJaaneye[]j,pqgpArch-yammosaicvirusanewotvirusinJaan.ivesofvirolo1999144:23140.,py,,pgye_m35WatrworthH.TwoFlexuousRodVirusesinDioscoreaoribunda:Stoms[]flyp,IdentificationandUltrastructure.1978.,[36]MiglioriA,CadilhacB.Contributiontothestudyofavirusdiseaseofyam:DioscoreatridainGuadeloue.AnnalesdePhtoatholoie1976.fipypg,-Kona[37]GoudouUrbinoCGivordLuiotJBoelinMteGDubemJ.Differentiation,,Q,g,,ofyamvirusisolatesusingsymptomatology,westernblotassay,andmonoclonalantibodies.Jorna-ulofPhtopatholo1996144:23540.ygy,,ou-rb38GoudUinoCKonateGuiotJDubemJ.Aetioloandecoloofaammosaic[],,Q,gygyydasenrasorcacce-iseiBukinaF.TopilSien199636:3440.,,39BousalemMDallotSGuaderS.Theuseofhloeneticdatatodevelomolecular[],,ypygptoolsforthedetectionandenotinofYammosaicvirus.Potentialalicationinmoleculargypgpprn-eidemiolo.Joualofviroloicalmethods200090:2536.pgyg,,40ThouvenelJCFauuetC.YammosaicanewotvirusinfectinDioscoreacaenensis[],q,pygy-intheIvorCoastAnnalsofAliedBiolo197993:27983.yppgy,,[41]OduB,HughesJdA,AsieduR,NgN,ShoyinkaS,OladiranO.Responsesofwhiteyam{Dioscorearotundata)cultivarstoinoculationwiththreeviruses.PlantPathology,2004,53-:1417.133 广西大学博士学位论文中国滚山筠病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究eman-arcoruidoueachu42AlMEMsJBCByRFauetC.Thecomletenucleotide[],,g,,qpseuenceofyammosaicvirusIvorCoastisolateenomicRNA.Archivesofviroloq(y)ggy,-1996141:125978.,43DutermeO,ColinetDKummertJLeoivreP.Determinationofthetaxonomicosition[],,pp-andcharacterizationofyammosaicvirusisolatesbasedonseuencedataofthe5terminalqarof-tthecoatroteincistronrhivvirolo:p.Acesof1996141106775.pgy,,44A-rr-Goudou-tlemanVedaueMEUrbinoCDubemJBeachRNFauueC.Analsis[]g,,,y,qyofthesequencediversityofthePIHCP3NibandCPenomicreionsofseveralam,,,ggymosaicotyvirusisolates:imlicationsfortheintraseciesmoleculardiversitofotyviruses.pppypurna-JolofGeneralVirolo199778:125364.gy,,[45]BousalemM,DouzeryE,FargetteD.Highgeneticdiversity,distantphylogeneticrelationshipsandintraspeciesrecombinationeventsamongnaturaloulationsofYammosaicppacontributiontounderstandingevolution.JournalofGeneralVirology,2000,8-1:24355.46HuhesJdA.VirusesoftheAraceaeandDioscoreasecies:Theirisolation[]gp,characterizationanddetection:UniversityofReadin1986.g,[47]OduB,HughesJdA,ShojdnkaS,DongoL.Isolation,characterisationandidentificationofaotyvirusfromDioscoreaalataL.wateraminNieria.AnnalsofAliedBiolop(y)gppgy,-1999134:6571.,-48Seasneemmunoca-MumfordRlS.RaidiltubitureRTPCRforthedetectionoftwo[],pgpt-amotyviruses.Journalofviroloicalmehods199769:739.y,,pg49OduBOHuhesJdAShoinkaSADonoLN.Isolationcharacterisationand[],g,y,g,identificationofaotvirusfromDioscoreaalataL.wateraminNieria.Annalsofpy(y)gAliedB-ppiology1999134:6571.,,50Loebenst-einGThotaillG.Virusandviruslikediseasesofmaorcrosin[],ppyjpdevelopingcountries:Sriner2004.pg,51OkuamaSSakaH.YammosaicvirusScienceReortsoftheFacultofAriculture[].y5pygrs-IbarakiUniveity197826:2934.,,52FuiSNakamaeH.CompletenucleotidesequenceoftheeonomicRNAofamildstrain[]j,goi-40Japaneseammosaicotyvirus.Archivesofvirolo2000145:635.ypgy,,134 广西大学博士擎位论文中国浪山箱銜毒病调查、诊断和病靡病毒分子生物学的研究53ShirakoYEharaY.RaiddianosisofChineseamnecroticmosaicvirusinfectionb[],pgyyeeco-sannasoacaoceofltrblotimmunoasy.AlfthePhtopthologilSityJaan1986.yp,[54]AtreyaC,RaccahB,PironeT.Aointmutationinthecoatroteinabolishesahidppp-transmissibilitofa,otvirus.Virolo1990178:1615.ypygy,'Usha-ase[55]JacobTR.STerminluenceanalsisoftheRNAenomeoftheIndianisolate,qygofCardamommosaicvirus:anewmemberofenusMacluravirusofPotvridae.VirusgyiGenes-200123:818.,,56KondoTFuitaT.Comletenucleotideseuenceandconstructionofaninfectiousclone[],jpqofChineseyamnecroticmosaicvirussuggestthatmacluraviruseshavethesmallestgenomeamrsof-embethefamilPotyviridaerchivesofvirolo2012:.mon.A1572299307gygy,,[57]PhillipsSBriddonRBruntA,HullR.Theartialcharacterizationofabadnavirus,,pinfectinthereaterasiaticorwateramDioscoreaalata.JournalofPhtoatholo1999ggy()ypgy,,-147:2659.[58]BriddonRW,PhillipsS,BruntA,HullR.AnalysisofthesequenceofDioscoreaa/a鉍bacilliformviruscomarisontoothermembersofthebadnavirusrou.VirusGenes1999,pgp,,8-1:27783.eroecuaru-59SealSMullE.Mllanalsisofaflllenthseuenceofanewambadnavirus[],ygqyfromi-Dioscoreasansibarenss.Archivesofvirolo2007152:81925.gy,,[60]陈秀,阮小蕾,赵芹,李华平.富贵竹中杆状DNA病毒湖北分离物的分子鉴定.42-中国农业科学2009:20029.,,61Chen-ckharBOCPLotlszewskiNETheOIandIIProteinsoflillow[].RFCommenaYeg,,Mot--tleVirusAreVirionAssociated.Virology1996223:26371.,,[62]LacoGS,BeachyRN.Ricetungrobacilliformvirusencodesreversetranscriptase,DNApolymeraseandribonucleaseHactivities.ProceedinsoftheNationalAcademofSciences,gy,-199491:26548.,[63]HarperG,HullR.CloningandsequenceanalysisofbananastreakvirusDNA.VirusG98-enes1917:2718.,,64HarerGDahalGThotaillGHullR.Detectionofeisomalbananastreak[]p,,ppy,p-PCRt-badnavirusbIC.Journalofviroloicalmehods199979:18.yg,,135 广西大学博士学位论文中国请■山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究65BouhMLokhartBOlszewskiNE.Ananalsisofthecompleteseuenceofa]ida,c,q[ysugarcanebacilliformvirusgenomeinfectioustobananaandrice.TheJournalofeneralg-viro:logy1993741522.,,[66]GeeringA,McMichaelL,DietzgenR,ThomasJ.GeneticdiversityamongBananastreatt20001-kvirusisolatesfromAustralia.Phoaholo90:927.ypgy,,[67]PalukaitisP,RoossinckMJ,DietzgenRG,FranckiR.Cucumbermosaicvirus.Advances12411invirusresearch99:28.,,[68]FauquetC,ThouvenelJ.PlantviraldiseasesintheIvoryCoast.ORSTOM,Paris,1987.69PedenKSmonsR.Ct/CM/wfterwayazcv/rt/5containsafiinctionalldividedenome.[],yygroo-Vi:lgy19735348792.,,rcarrouaeres-70LotHMahouxGMJKJWtCVanVlotenDotinetahEvidence[],,,p,,gL,forthreefimctionalRNAseciesinseveralstrainsofcucumbermosaicvirus.JournalofpGenera-lVirolo197422:8193.gy,,[71]SchwinghamerMW,SymonsRH.TranslationofthefourmajorRNAspeciesofmosa-tcucumbericvirusinplantandanimalcellfreesystemsandintoadoocyes.Virology,-197779:88108.,72GouldARSmonsRH.CucumbermosaicvirusRNA3.Euroeanjournalof[],ypb1-iochemistry198226:21726.,,73WahuniWDietzenRHanadaKFranckiR.Seroloicalandbioloicalvariation[]y,g,,ggbetweenandwithinsubrouIandIIstrainsofcucumbermosaicvirus.PlantPathologygp,9924-11:28297.,[74]PortaC,DevergneJ,CardinL,BriandJ,VanRegenmortelM.Serotypespecificityoftodesv-monoclonalanibitocucumbermosaicvirus.Archivesofirolo1989104:27185.gy,,[75]RoossinckMJ.EvolutionaryhistoryofCucumbermosaicvirusdeducedbyphylogeneticana-lyses.JournalofVirolo200276:33827.gy,,rssnckZhane-76RooiMJHllwaldKH.Rearranementsinthe5nontranslatedreion[],gL,ggandhloeneticanalysesofcucumbermosaicvirusRNA3indicateradialevolutionofthreepygsubr-ous.JournalofVirolo199973:67528.gpgy,,77RoossinckMJ.Mechanismsoflantvirusevolution.AnnualReviewofPhtoatholo,[]pypgy-199735:191209.,136 广西大学傅士学位论文中国淮出箱病毒病调I、诊断和病尿病毒分子生物学的研究-78CourseD.InternalbrownsotaconditionofamsinBarbados.Journalofthe[]ypy-AriculturalSocietyofTrinidadandTobago196767:47382.g,,[79]WaterworthH,LawsonR.Purification,electronmicroscopy,andserologyofthewood-dorinsotstrainofcherrlearollvirus.Phtoatholo197363:1416.ggpyfypgy,,[80]PhillipsS,PiggottJA,BruntA.FurtherevidencethatDioscorealatentvirusisatoo-oexvirus:.AnnalsofAliedBilgy198610913745.ppp,,81FukumotoFTochiharaH.Chineseamnecroticmosaicvirus.AnnPhoatholSocJn[],y^pp,197844-:15.,[82]RosselH,ThotappillyG.VirusdiseasesofimportantfoodcropsintropicalAfrica.VirasdiseasesofimortantfoodcrosintropicalAfrica1985.pp,83BruntAACrabtreeKGibbsA.Virusesoftroicallants.Descritionsandlistsfrom[],,ppptheVE)Edatabase:CABInternational1990.,[84]杜琳,钟先锋,陈剑泓,易军鹏.植物病毒检测技术研究进展.农产品加工,2007,7:48.sosane-wovrases85HollinM.Htrstudieswithfiftytlanti.AnnalsofAliedBiolo[]ggpppgy,-195947:98108.,AHow-86lmeidaJDatsonAF.Anegativestainingmethodforcellassociatedvirus.The[],Journa1-lofcellbiolo19636:61620.gy,,[87]ChristieSR,PurcifullD,CrawfordWE,AhmedN.Electronmicroscopyofnegativelystainedclarifiedviralconcentratesobtainedfromsmalltissuesampleswithappendicesonnegativestainingtechniques.Bulletin,AgriculturalExperimentStation,UniversityofFlorida,1987.[88]DebrickKS.Quantitativeassayforplantvirusesusingserologicallyspecificelectron-microsco.Virolo197356:6523.pygy,,Engva-89llEPerlmannP.EnzmelinkedimmunosorbentassaELISAuantitativeassa[],yy()qy-ofimmunolobuinG.Immunchemitr19718:8714.glosy,,90Cme-larkMFAdamsA.Characteristicsofthemicrolatemethodofenzlinked[],pyimmunosorbentassayforthedetectionofplantviruses.JournalofGeneralVirology,1977,-8334:475.137 广西大学博士学位论文中囯m山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究91MatthewsWJordanCTWieandGWPardollDLemischkaIR.Arecetortrosine[],,g,,pytanroen-kinasesecificohematooieticstemditorcellenrichedoulations.Cell1991pg,pppp,65-:114352.92BrateCBumsR.Antibodroduction.PlantVirolorotocols:Sner1998[]y,ypgyPprig,,279-86.[93]CopelandR.AssayinglevelsoflantvirusbyELISA.Plantvirolorotocols:Sriner,pgyppg-199845560.,rWTenzme-nknosonassa94PaasMGHakowskiRHockmee.Dotliedimmurbet[]pp,j,yyyo-(DtELISA):amicrotechniquefortherapiddiagnosisofvisceralleishmaniasis.Journalofnocamehods-immu:4logilt1983642051.,,[95]WetzelT,CandresseT,MacquaireG,RavelonandroM,DunezJ.Ahighlysensitiveimmunocaptureolmerasechainreactionmethodforlumoxotyvirusdetection.Journalpypppaod-of:2viroloiclmeths199239737.,g,-mu[96BertoliniEOlmosAMartinezMCGorrisMaTCambraM.Sinlesteltilex]y,,,gppRT-forsaneousandcolourimericdeecionofsixiruseinolivesPCRmul.ittttRNAvstreeJourna-lofviroloicalmethods200196:3341.g,,-97OlmosABertoliniEGilMCambraM.Realtimeassaforuantitativedetectionof[],,,yq-sentransmiedPlumoxvirusRNAareinsinleahidnonpersittlyttptgtsgps.Journaloft-viroloicalmehods2005128:1515.g,,sa-98BoulemMallotS,uiSatsuakiKT.Oriinworldwidedisersion[],DFj,Ng,p,-racaerscaonraaonandrecombioeoildivifitid:anevtonarstoromggphitibinationoluihifYa,yyt-mildmosaicvirusYMMV.InfecionGeneticsandEvolution20033:189206.(),,,sMorrisTdanRP-99DoddJJor.lantviraldoublestrandedRNA.AnnualReviewof[],,Ph-toatholo198422:15168.ypgy,,aua-v100WuLuoYLuRLNLiECLiWXetalVirusdiscoerbdeeseuencin[]Q,,,,,,yypqgandassemb-tlyofvirusderivedsmallsilencinRNAs.ProceedinsofheNationalAcademggyofc-iences:S2010107160611.,,101AdamsIPGloverRHMonerWAMumfordRJackevicieneENavalinkieneMet[],s,,g,?,-encmeaLNextenerationseuinandtaenomicanalsis:auniversaldianostictoolingqggygt-lantvirolo.MolecularPlantPaholo200910:53745.pgygy,,138 广西大学博士学位论文中国灌山苗病毒病调查、诊断和病厩病毒分子生物学的研究[102]A1RwahnihM,DaubertS,GolinoD,RowhaniA.DeepsequencinganalysisofRNAsfromaraevineshowingSrahdeclinesmptomsrevealsamultiplevimsinfectionthatgpyya-includesnovelvirus.Virolo2009387:395401.gy,,103NavarroBPantaleoVGiselAMoxonSDalmaisztraGetalDeep[],,,,yT,By,-masequencingofviroidderivedsllRNAsfromraevinerovidesnewinsihtsontheroleofgppgRNA-si:lencininlantviroidinteraction.PlosOne20094e7686.gp,,[104]GiampetruzziA,RoumiV,RobertoR,MalossiniU,YoshikawaN,LaNotteP,etalAuenc--newraevnevruscovereddeeseinvirusandviroidderivedmasiidisbofsllRNAgpypqg-inCvPinotris.VirusResearch2012163:2628.,,g5reuzerezrosMuiseDFuentesSBarkerIetal.Comleeviral10KJFPeAUntivet[],Q,,,,,ppenomeseuenceanddiscoverofnovelvirusesbdeeseuencinofsmallRNAs:agqyypqg-enericmethodfordianosisdiscoverandseuencinofviruses.Virolo2009,388:17.gg,yqggy,----an-GouXZhenYAdamMJChenHRChenJP106WJJHs.Molecular[]g,Z,g,,,characterizationofanewmacluravirusfromaminYunnanChina.Archivesofviroloy,gy,-2009154:137980.,[107]YangI,HafiierG,RevillP,DaleJ,HardingR.SequencediversityofSouthPacificiitmento-aseddanoscesisolatesofTarobacillformvrusandhedevelopfaPCRbigtitt.Arch-ivesofvirolo2003148:195768.gy,,S-108ELISA及PCR快速检测.谢艳.粉虱传双生病[],张仲凯毒的TA植物病理学200232-报:1826.,,109HaCCoombsSRevillPHardinRMVuMDaleJL.Desinandalicationoftwo[],,,g,,gppnoveldegeneraterimerairsforthedetectionandcomleteenomiccharacterizationofpppgotyv-piruses.Archivesofvirolo2008153:2536.gy,,-Muramo-110KaiharaHtoKFuiSiTanakaSItoSi.Simultaneousdetectionof[]j,,j,,.’.?/咖從己aw/wosafcvzmsandyia/w/mWmoyazcvzrusfromamleavesusinatubecatureygp叩yreerseanscri-vtrptionpolymerasechainreactionassay.JournalofGeneralPlantPathology,200975-:725.,---111KondoTFuiSiYamashitaKKanDKChanMU.Broadbeanwiltvirus2in[],,,j,gg20057-ams.JournalofGeneralPlantPatholo1:4413.ygy,,139 广西大学博士学位论文中国淮山药病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究[112]WylieS,WilsonC,JonesR,JonesM.Apolymerasechainreactionassayforcucumber-mosaicvirusinlupinseeds.CropandPastureScience199344:4151.,,113AlemanMarcosFBruidouCBRNFauuetC.ThmltenucleotideMEJeachecoe[],,g,y,qpseuenceofammosaicvirusIvoroastisolateenomicRNA.Archivesofviroloqy(yC)ggy,996-1141:125978.,[114]EniAO,KumarPL,AsieduR,AlabiOJ,NaiduRA,HughesJA,etalFirstReportofCucumbermosaicvirusinYamsDioscoreas.inGhanaTooandReublicofBeninin{pp),g,pesfr-WtAica.PlantDisease200892:833.,,115HuanHartunJS.CloninandseuenceanalsisofaninfectiouscloneofCitrus[]gQ,ggqye-myllowmosaicvirusthatcaninfectsweetorangeviaAgrobacteriumediatedinoculation.-JournalofGeneralVirology200182:254958.,,116ChareEHolmesE.AhloeneticsurveofrecombinationfreuencinlantRNA[],pygyqypv2006-iruses.Archivesofvirology151:93346.,,117MoonanFMolinaJMirkovTE.SugarcaneYellowLeairus:AnEmerinViras[],,fVggThatHasEvolvedbyRecombinationbetweenLuteoviralandPoleroviralAncestors.Virology,269-2000:15671.,[118]MartinDP,LemeyPLotM,MoultonV,PosadaD,LefeuvreP.RDP3:aflexibleand,oorma-fastcomuterroramforanalzinrecombination.Biinftics201026:24623.y,p,pgg[119]MartinD,RybickiE.RDP:detectionofrecombinationamongstalignedsequences.Bnformacs-ioiti200016:5623.,,120SawerS.Statisticaltestsfordetectineneconversion.MolecularBioloand[]ygggy-Evolution19896:52638.,,[121MartinD,PosadaDCrandallKWilliamsonC.Amodifiedbootscanalorithmfor],,gautomatedidentificationofrecombinantsequencesandrecombinationbreakpoints.AIDSearce-Resh&HumanRtroviruses200521:98102.,,122SmithJ.Analzinthemosaicstructureofenes.JournalofMolecularEvolution1992[]ygg,,-34:1269.123PosadaDCrandallKA,EvaluationofmethodsfordetectinrecombinationfromDNA[],gsequences:Computersimulations.ProceedingsoftheNationalAcademyofSciences,2001,98-:1375762.140 广西大学博士学位论文中国谁山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究Gr-aMon124GibbsMJArmstronJSibbsAJ.SisteScannin:teCarlorocedurefor[],g,gpna-assessinsilsinrecombinantseuences.Bioinformatics200016:57382.ggq,,125BoniMFPosadaDFeldmanMW.AnExactNonarametricMethodforInferrin[],,pguence1-MosaicStructureinSeTrilets.Genetics200776:103547.qp,,126TomitakaYOhshimaK.AhloeorahicalstudoftheTurnimosaicvirus[],pyggpyppopulationinEastAsiarevealsan^mergenflineageinJapan.MolecularEcology,2006,-15:443757.127OhshimaKTomitakaYWoodJTMinematsuYKaiamaHTomimuraK扣a/.[],,,,jy,,.Paternsofrecombinationin如腳則。vimvenomicseuencesindicatehotsotsofgqp-recombination.JournalofGeneralVirolo200788:298315.gy,,128AdamsMJAntoniwJFBeaudoinF.Overviewandanalsisoftheolrotein[],,ypypm-cleavaesitesinthefailyotviridae.MolecularPlantPatholo20056:47187.gPygy,,Iti-129doYNakaharaKUedaI.Whieclovermosacv/n/5inducedenesilencininea.[],,yggpurna-JolofGeneralPlantPatholo201278:12732.gy,,aeerarnofreverseranscan-130TzanetkisIEKllKEMtiRR.Theusetritseforefficietfirst[],,pand---tsecondstrandcDNAsynthesisfromsinleanddoublestrandedRNAtemlaes.Journalgp-ofviroloicalmethods2005124:737.g,,enecometeseoenomcRNAof131ChenJShiYHAdamsMJChJP.Thluencefthei[],,,pqgan-isolateofLilyvirusXenusPotexvirus.Archivesofvirolo2005150:82532.(g)gy,,[132]KawakamiK,FujiS,MiyoshiK.Completenucleotidesequenceofanew"iromssindLArch-PhaiusvrusXisolatedfPhaiuflavuLivesofvirolo2008153:52731.\gy,,133KimJDKooYBChanMU.GenomecharacterizationofaKoreanisolateof[],,g-cmbidiummosaicvirus.Moleculesandcells19988:1818.,y,[134]KomatsuK,YamaiY?OzekiJ,HashimotoM,KaiwadaS,TakahashiS,etaLjgNucleotidesequenceanalysisofsevenJapaneseisolatesofPlantagoasiaticamosaicvirus(P1AMV):auniquepotexviruswithsinificantlhihenomicandbioloicalvariabilitygygggn-withthesecevesofvirolo:iis.Archi20081531938.pgy,,135YamaiYKaiwadaSNakabaashiHUakiMNambaS.Comletenucleotide[]j,g,y,g,p-weenseuenceofTulivirusXTVXJ:theborderbetseciesandstrainswithintheenusqp()pg14-Potexvirus.Archivesofvirolo20016:230920.gy,,141 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究136BancroftJBRouleauMJohnstonRPrinsLMackieGA.Theentirenucleotide[],,,,seu-enceofoxtailmosaicvirusRNA.JournalofGeneralVirolo199172:217381.qfgy,,137FuiSShinodaKFuruaHNaitoHFukumotoF.Comletenucleotideseuenceof[]j,,y,,pqNVX-JNerinevirusX()isolatedfromtheAfricanlilylantAaanthuscamanulatus)inp{gppJaanlo205-.Archivesofvirogy2006151:8.p,,[138]ChenJ,ZhengHY,ChenJP,AdamsMJ.Characterisationofaanda-otexvirusfromChinesescallion.Archivesofvirology2002147:68393.p,,[139]HashimotoM,OzekiJ,KomatsuK,SenshuH,KagiwadaS,MoriT,etaLCompletece-nucleotideseuenofasparagusvirus3.Archivesofvirology2008153:21921.q,,Lin-[140]LiRGaoSHernandezAGWechterWPFeiZKS.DeeSeuencinofSmall,,,,,gpqgRNAsinTomatoforVirusandViroidIdentificationandStrainDifferentiation.PlosOne,20127:e37127.,-DiHW141DizadiAKoohiHabibiMIzadanahKetrichCossahebiGinterS,[]j,,,Mp5,Characterisationof/ertwceWnwXanewinfectinlettuceinIran.Archivesof,g200853-virolo1:186775.gy,,[142FuiSShinodaK,IkedaMFuruaHNaitoHFukumotoF.Comletenucleotide]j,,y,,pu*seuenceofthenewpotexvirusAlstroemeriavirusX\Archivesofvirolo2005qgy,,-150:237785.[143KoeniRPleiCWA,ssSBurermeisterWAustHSchiemannJ.Molecular]g,jLo,g,,characterisationofotexvirusesisolatedfromthreedifferentenerainthefamilyCactaceae.pgArch-ivesofvirolo2004149:90314.gy,,[144]SitTL,WhiteKA,HolyS,PadmanabhanU,EweidaM,HiebertM,etaLCompletenucleotideseuenceofcloverellowmosaicvirusRNA.JournalofGeneralVirolo1990,qygy,7-1:191320.145CoteFPareCMaeauNBolducMLeblancEBereronMGetalNucleotide[],,j,,,g,seuenceandhloeneticanalysisofanewotexvirus:MalvaMosaicVirus.Infectionqpygp,Genn-eticsandEvolutio20088:8393.,,[146]KomatsuK,KagiwadaS,TakahashiS5MoriT,YamajiY,HirataH5etal.PhylogeneticCharacteristicsGenomicHeteroeneitandSmtomaticVariationofFiveCloselRelated,gyypyanesera-JaStinsofPotatoVirusX.VirusGenes200531:99105.p,,142 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究147PokeF.Homosaicvirus:comletenucleotideseuenceandrelationshitoother[]ppqpcar-laviruses.Archivesofvirolo2008153:16159.gy,,148HataaTUchinoKArimotoR,SudaNSanoTShikataEetalMolecular[]y,,,,,characterizationofHoplatentvirusandphylogeneticrelationshipsamongvirusescloselyrlad-etetocarlaviruses.Archivesofvirolo2000145:250324.gy,,149ZhenHYChenJAdamsMJChenJP.Comletenultiduenceandfinitie[],ceoeseasg,,pqofthegenomicRNAofNarcissuscommonlatentvirusenusCarlavirus.Archivesof(g)2006-virolo151:166772.gy,,[150]FlatkenS,UngewickellV,MenzelW,MaissE.Constructionofaninfectious-nneiti-fulllegthcDNAcloooatovrusM.Archivesofvirolo2008153:13859.pgy,,[151]NaylorM,ReevesJ,CooperJI,EdwardsML,WangH.Constructionandpropertiesofaene-silencinvecorggtbasedonPoplarmosaicvirus(enusCarlavirus).Journalofviroloicalggm-ethods2005124:2736.,,[152HendersonJGibbsMJEdwardsMLClarkeVAGardnerKACooer几Partial],,,,,pnucleotidesequenceofpolarmosaicvimsRNAconfirmsitsclassificationasacarlavirus.purna-JolofGeneralVirology199273:188790.,,[153]TanJHarerSWeiTCloverG.CharacterizationofeacWororicg,p,,叩virusammber-neweoftheenusCarlavirus.Archivesofvirolo2010155:712.,ggy,,154OhkawaAYamadaMSaamaHSuiamaNOkudaSNatsuakiT.Comlete[],,y,gy,,pnucleotidesequenceofaJapaneseisolateofChrysanthemumvirusB(genusCarlavirus).rchivesf-Aovirolo2007152:22538.gy,,[155]LeeBY,MinBE,HaJH,LeeMY,PaekKH,RyuKH.Genomestructureandcompleteseuencefof-oenomicRNADaphnevirus5.Archivesofvirolo2006151:193200.q,ggy156K.C.EastwellLJdTandK.L.Druffel.HelleborusnetnecrosisvirusANew[]:,5sCar-lavirusAssociatedwithBlackDeathofHelleboruss..PlantDisease200993:3328.pp,,157ScottSWZimmermanMT.Thecomletesequenceofliustrumnecroticrinsot[],pggpv-irusanovelcarlavirusrchivesofvirolo200:.A81533936.,,,gy[158LinYHDruffelKLWhitworthJPavekMJ,PauH.Molecularcharacterizationof],,,pp-o-twoptatovirusSisolatesfromlateblightresistantgenotypesofpotatoSolarium{-tuberosum).Archivesofvirolo,2009154:18613.gy,143 广西大学博士学位论文中国灌山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究159WlieSLuoHLiHJonesMK.MultileoladenlatedRNAvirusesdetectedin[]y,,,ppyy-ooledcultivatedandwildlantsamles.Archivesofvirolo2012157:27184.pppgy,,160EastwellKDruffelK.ComleteenomeoranizationofAmericanholatentvirusand[],pggpA-itsrelationshitocarlaviruses.rchivesofvirolo2012157:14036.pgy,,161ZhenHYChenJZhaoMFLinLChenJPAntoniwJFetaLOccurrenceand[]g,,,,,,sequencesofLilymottlevirusandLilysymptomlessvimsinplantsgrownfromimportedArch-bulbsinZheianrovinceChina.ivesofvirolo2003148:241928.jg,p,gy,[162]DinesenM,LundmarkM,AlbrechtsenM.Completegenomesequencesoftwoisolates-ofKalanchoelatentvirus.Archivesofvirolo2009154:11735.gy,,163SieelSZeidanMSobolevIBeckelmanYHoldenreberV,TamYetaLThe[]pg,,,,g,completenucleotidesequenceofPassifloralatentvirusanditsphylogeneticrelationshiptooer-thcarlaviruses.Archivesofvirology2007152:1819.,,164LarsenRWattSDruffelK.Thecomletenucleotideseuenceandenome[],y,pqgorganizationofredcloverveinmosaicvirus(genusCarlavirus).Archivesofvirology,2009,-154:8914.[165]MenzelW,WinterS,VettenHJ.CompletenucleotidesequenceofthetypeisolateofCowea-mildmottlevirusfromGhana.Archivesofvirolo2010155:206973.pgy,,166KrausJTzanetakisIEPutnamMLMartinRR.Comletenucleotideseuenceofan[],,,pq-isolateofcoleusveinnecrosisvirusfromverbena.Archivesofvirolo2008153:3814.gy,,[167]NieX,BaiY,MolenTA,DesjardinsDC.Developmentofuniversalprimersforeeconootaoca-dttiftrlavirusesbyRTPCR.Journalofvirologicalmethods2008p,,149-:20916.168ChenJAdamsMJ.Molecularcharacterisationofacomlexmixtureofvirusesin[],pmmna-arlicwithmosaicstos:gypinChi.Archivesofvirology2001146184153.,,169KenonLLebasBSMSealSE.Yamss.)fromtheSouthPacificIslands[]y,,ppcontainmanynovelbadnaviruses:imlicationsforinternationalmovementofyamermlasm.pgprch-Aivesofvirolo2008153:87789.gy,,[170]FujiS,NakamaeH.CompletenucleotidesequenceofthegenomicRNAofaJapaneseArchivesof-icvirusanewotyvirusinJaanvirolo:ammosa.199914423140.,y^ppgy,144 广西大学博士学位论文中国液山苗病毒病调紊诊断和病康病毒分子生物学的研究、171FuiS,NakamaeH.ComletenucleotideseuenceoftheenomicRNAofamildstrain[]jpqgt-oiJapaneseammosaicovirus.Archivesofvirolo2000145:63540.yy,,pgy172KondoTFuitaT.Comletenucleotidesequenceandconstructionofaninfectious[],jpcloneofChineseyamnecroticmosaicvirussuggestthatmacluraviraseshavethesmallestnommembersf-eeamonothefamilPotyviridaerchivesofvrolo:g.Ai19.gygyFoendedr-Gdioroaa.hecomle173ilhFdNicoliniCResRAndadePRibeiGNatTTte[],,,,,gpenomeseuenceofaBrazilianisolateofyammildmosaicvirus.Archivesofvirology,2013,gq-158:5158.174ZouCMenJLiZWeiMSonJChenBetalFirstreortofYammildmosaic[],g,,,g,,pv-irusinaminGuanxirovinceChina.PlantDisease201195:1320.ygp,,,175KinAMAdamsMJLefkowitzEJCarstensEB.Virustaxonomy:classificationand[]g,,,nomenclatureofvirusesNinthReortoftheIntrnationalCommiteeonTaxonomof:peyViruses:Elsevier2012.,Hearon-176LawsonRSSmithF,KahnR.Electronmicroscoandsearationofviruses[],,pypnd-ioscooribundahoaolo:erhoatholocaotKnobireafl.PytpthgyAmpytpgilSOC3340PilRoadS1-taulMN551219731435.,p,,,[177]MohamedN,MantellS.Incidenceofvirussymptomsinyam(Dioscoreaspp.)foliageintheCommonwealthCaribbean.TropicalAgriculture1976.,earonSorbeMawsonRG-178HCttLillasieJrAWaterworthH.Twoflexuousrod[],,,p,virusesinDioscoreaoribunda:Symptomsidentificationandultrastructure.Phtoatholofl,,ypgy,1978,68.179ClarkM.Immunosorbentassasinlantatholog.AnnualReviewofPhtoatholo[]yppyypgy,-19811983106.:,180FuiSNakamaeH.DetectionofJaaneseamDioscoreamosaicvirusbISAand[]j,pyyEL-aRTPCR.AnnlsofthePhtoatholoicalSocietofJaan1999.ypgyp,181CobbBDClarksonJM.Asimlerocedureforotimisintheolmerasechain[],pppgpyu-reactionPCRsinmodifiedTauchimethods.NucleicAcidsResearch199422:38015.()gg,,182]PauSBrandRPaHRbickiEGouhKHFrenkelMJetal.Aolerase[pp,,ppu,y,g,,pymm'chainreactionethodadaptedforselectiveamplificationandcloningof3seuencesofq145 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的所究otviralenomes:alicationtodasheenmosaicvirus.Journalofvirologicalmethods1993pygpp,,-41:920.dSAreJ-e183LanevelDoMMemlinkJDerksA,VanderVlutCAsesCJetaL[]g,,,,,gjIdentificationofotvirusesusingthepolymerasechainreactionwithdegenerateprimers.py-TheJournalofeneralvirolo199172:153141.ggy,,146 广西大学博士学位论文中国谁山苗病毒病调查、诊断和病屎病毒分子生物学的研究附录附录1本论文所用术语缩写及全称对应表缩写英文全称中文全称bpbasepair碱基对BSABovineserumalbumin小牛血清白蛋白cDNAcomplementaryDNA互补DNAClclindricalrotein圆柱状内含体ypCPcoatprotein外壳蛋白cv.Cultivars栽培种CVCclarifiedviralconcentrate澄清病毒浓缩液CYScnerznc--ysteiichifingerlikeRNAbinding富含半胱氨酸的锌指状RNA结合结domain构域dday天DNADeoxyribonucleicacid脱氧核糖核酸t-S-DoELIADotenzmelinkedimmunosorbentassa斑点酶联免疫吸附测定yyd-sRNADoublestrandedRNA双链RNAELISAE-lnzmeinkedimmunosorbentassa酶联免疫吸附测定yyhhour小时-HC-Prercomponent-ohelproteinase辅助成分蛋白酶pHRPHorseradishPeroxide辣根过氧化物--ICPCRImmunocapturepolymerasechainreaction免疫捕获聚合酶链式反应--u-nICRTPCRInununocaptreReverseTranscriptio免疫捕获反转录聚合酶链式反应polmerasechainreactiony-------IPTGisorolD1thioalactoranoside异丙基D1硫代半乳糖苷ppyPgpyPISEMImmunoSpecialElectronicMicroscoe免疫电镜pKbkilobase千碱基对minminutes分钟ermRNAMessengRNA信使RNANCnegativecontrol阴性对照—NGSNextenerationseuencin新代测序gqg’‘NIaNuclearInclusionbodyarotein核内含体蛋白ap147 广西大学博士学位论文中国灌山药病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究缩写英文全称中文全称‘’NibNuclearInclusionbodybprotein核内含体蛋白bntNucleotide核苷酸NTCNotemplatecontrol无模板对照ORFopenreadingframe开放阅读框P一Ifirstrotein第蛋白pP3thirdrotein第三蛋白pPBSPhosphatebufferedsaline憐酸盐缓冲液PCpossitivecontrol阳性对照PCRPolymerasechainreaction聚合酶链式反应PIPOrettyinterestingotirasORF有趣的马铃薯Y病毒属病毒的ORFppyvPRasparticrotease天冬氨酸蛋白酶pPVDFPolvinlideneDifluoridemembrane聚偏氣乙稀膜yyPVPPCrosslinkingpolyvingypyrtolidone交联聚乙稀比略焼酮RACERapidAnplUicationofcDNAEndscDNA扩增dRRNA-dReendentRNAolrase依赖RNA的RNApppyme于聚合酶RFLPRestrictionFragmentLengthPolymorphism限制性片段长度多态性RHRNaseHRNA酶HRNARibonucleicAcid核糖核酸-RNARNASesequencinRNA测序qgrpmrevolutionserminute每分钟转速prRNAribosomalRNA核糖体RNARTreversetranscriptase逆转录酶-PCRreversePCRRTtranscriptionalPCR反转录SDS-PAGEsod二-iumdodecylsulfateolacrlamideel十院基硫酸钠聚丙稀酰胺凝胶电泳pyygelectrohoresispSecsecond秒RNASin-ssleStrandedRNA单链RNAgTGBTri-pleeneblock三联基因块gUTRUntranslatedregion非翻译区VPvr-nkrialenomeliedotein病毒基因组连接蛋白ggp一6K1thefirst6Krotein第个6K白p蛋6K2thesecond6Kprotein第二个6K蛋白148 广西大举博士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究附录2本论文所用病毒缩写及全称对应表缩写英文全称中文全称AHLVAmericanhoplatentvirus美国啤酒花潜隐病毒AlsVXAlstroemeriavirusx六出花X病毒arausiAV3Aspgvrus3芦努病毒3BCTIVBeetcurlytopIranvirus伊朗甜菜曲顶病毒BCTVBeetcurlytopvirus甜菜曲顶病毒BGYMVBeanoldenellowmosaicvirus菜豆金色花叶病毒gyCBSVCassavabrownstreakvirus木薯褐色条纹病毒CMVXChenopodiummosaicvimsX黎花叶病毒XCPMMVCowpeamildmottlevirusIt豆轻斑驳病毒CSSVCocoaswollenshootvirus可可肿枝病毒CVBChrysanthemumvirusB菊花B病毒CVNVCo/ew^ve刼銷蕊花脉坏死病毒CymMVCymbidiummosaicvirus建兰花叶病毒CYMVCloverellowmosaicvirus三y叶草黄花叶病毒CYNMVChineseamnecroticmosaicvims中国淮山药坏死花叶病毒yCYVMVCrotonellowveinmosaicvirus巴豆黄脉花叶病毒yDBVDioscoreabacillifromvirus薯菌杆状病毒DaBVDioscoreaalatabacilliformvirus参薯杆状病毒DARMVD.alataringmottlevims参薯环斑病毒DDVD.dumetorumpotyvirus灌丛薯領病毒DGBMVDioscoreareen-bandinmosaicvims著蓣绿带花叶病毒ggDGBVDioscoreareen-bandingvirus暮截绿带病毒gDLVDioscorealatentvirus薯蓣潜隐病毒DMoVDioscoreamottlevirus薯蓣斑驳病毒DTVD.trifidapotyvirus三裂叶薯領病毒eDVSDaphnvirusS瑞香S病毒ECSVEragrostiscurvulastreakvims弯叶画眉草条纹病毒149 广西大学博士学位论文中国淮山箱病毒病调查诊断和病康病毒分子生物学的研究、缩写英文全称中文全称FMVFoxtailmosaicvirus狐尾草花叶病毒GCLVGarliccommonlatentvirus大蒜普通潜隐病毒GLVGarliclatentvirus大蒜潜隐病毒HdCMVHydrangeachloroticmottlevirus绣球花褪绿斑驳病毒HeNNVHelleborusnetnecrosisvirus铁疾子属网坏死病毒HpLVHoplatentvirus酒花潜隐病毒HpMVHopmosaicvirus酒花花叶病毒IBSVInternalbrownspotbacilliformvirus内部褐白斑杆状病毒JYMVJaaneseammosaicviruspy日本淮山药花叶病毒KLVKalanchoelatentvims高凉菜潜隐病毒LeVXLettucevirusX生菜X病毒LNRSVligustrumnecroticringspotvirus女贞属坏死环斑病毒LSVLilysymptomlessvirus百合无症病毒LVXLilyvimsX百合X病毒MaMVMalvamosaicvirus锦葵花叶病毒MaYSVMacroptiliumyellowspotvirus大翼豆黄斑病毒MSVMaizestreakvirus玉米条纹病毒MVXMintvirusX薄荷X病毒NCLVNarcissuscommonlatentvirus水仙普通潜隐病毒rinevirusNVXNeX尼润属X病毒OVXOpuntiavirusX仙人掌X病毒PepMVPepinomosaicvirus凤果花叶病毒PhaVXPhaiusvirusX鹤顶兰X病毒P1AMVPlantagoasiaticamosaicvirus车前草花叶病毒PLVPassifloralatentcarlavirus西番莲潜隐病毒PopMVPoplarmosaicvirus杨树花叶病毒PotLVPotatolatentvirus马铃薯潜隐病毒ruseverePSLDVPassionfitleafdistortionvirus百香果严重畸叶病毒150 广西大学博士学位论文中国乘山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究缩写英文全称中文全称PVMPotatovirusM马铃薯M病毒PVSPotatovirusS马铃薯S病毒PVXPotatovirusX马铃薯X病毒PYMVPotatoellowmosaicvirusyRaMoVRamiemosaicvirus芒麻花叶病毒RCVMVRedcloveriiirus红三venmosacv叶草脉花叶病毒ScaVXScallionvirusX葱油X病毒SLVShallotlatentvirus葱潜隐病毒SPCSVSweetpotatochloroticstuntvirus甘薯褪绿矮病毒SPFMVSweetpotatoeatherottlevirus甘薯羽状斑驳病毒fymSVXSchlumhergeravirusX树栖仙人掌X病毒TAVTomatoaspermyvirus番前不孕病毒TCTVTurnipcurlytopvirus萝卜曲顶病毒TGWTomatogoldenveinvirus番煎金脉病毒ToICVTomatointerveinalchlorosisvirus番葙脉间褪绿病毒maoseudo-curTPCTVTotltovirus番煎曲顶病毒pypTVXTulipvirusX郁金香X病毒WC1MVWhiteclovermosaicvirus白三叶花叶病毒iirWTMVWildtomatomosacvus野生番前花叶病毒YLVYamlatentvirus淮山药潜隐病毒YMMVYammildmosaicvirus淮山药温和花叶病毒YMVyammoyafev/my淮山药花叶病毒YV-NNerianamoicvir山药花叶病毒igmsaus尼日利亚淮yYVXYamvirusX淮山药X病毒YYSMVYamellowveinmosaicvims淮山药黄斑花叶病毒yZVXZygocactusvirusX蟹爪兰X病毒151 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究附录3本论文所用物种拉丁名与中文学名对应表拉丁名中文学名AphiscraccivoraKoch.Aphisfabae豆卫矛蜂AmaranthusretroflexusL.反枝宽AmaranthusviridisL.皱果觅Aphisgossypii棉姆Celosiaargentea菁葙Chenopodiumamaranticolor览色藜ChenopodiumuinoaWillA黎麦qCrotalariastriata圆叶猪屎显CucumissativusL.黄瓜alata.DioscoreaLinn.参薯ioscoreaD.Dbatataseene长薯蓣DioscoreabulbiferaL.黄独DioscoreacayenensisLam.几内亚薯蓣Dioscoreacomposita墨西哥菊叶薯蕷DioscoreadumetorumPax.灌丛薯蓣DioscoreaesculentaLour.甜墓DioscoreaJloribunda多花薯蓣DioscoreahispidaDennst.白薯莫DioscoreajaponicaThunb.日本薯菌DioscoreaoppositaThunb.普通山药Dioscoreaentahlla五叶薯蓣ppyDioscoreaersimilisPrain.p褐袍薯蓣Dioscoreareussii普氏薯蕷pDioscorearotundataPoir.白薯蕷DioscoreatrifidaL.三裂叶薯蕷Digitariasanguinalis(L.)Scop.马唐152 广西大学博士学位论文中国淮山箱病毒病调查诊断和病康病毒分子生物学的研究、拉丁名中文学名Dioscoreaspp.淮山药EleusineindicaL.Gaertn.牛筋草()一FleasuruiP.ugll.Billgftcosa(a)a叶荻Gomphrenaglobosa0SiMyzusersicae桃姆pNicotianaclevelandii兰烟NicotianalutinosaL.粘毛烟草gNicotianamegalosiphon麦格隆息丰烟草Nicotianasylvestris美花烟草Nicotianatabacum普通烟草NicotianabenthamianaL.本氏烟草OxaliscorymbosaDC.红花醉衆草Phaseolusvulgaris菜豆PileamicrophllaL.)Liebm.小叶冷水花y(Pisumsativum豌豆P*lanococcuscitriRisso柑橘粉阶Rhoalosihummaidispp玉米姆Tinantiaerecta硬筵鸭妬草Toxopteracitricidus橘既Vidaaba蚕豆fVignaunguiculata5LS153 广西大学博士学位论文中国淮山药病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究附录4YYSMV-FX1的基因组序列accggatgggcgccgcctgggtgttgtccatgtggcaagatccttaccctccatttgaattaaaggtcccacccttcgttggtgacccggattctttttcgtcttcccctatcttatttaccattcttaataatatctcccaccattacttattttgggggggggggggggggggggggggggagttgtatgtagtacatatcatatcagcgtaacagttgtcggtatgttgtggtgtgatgaccatcccaacccgatgtcggatgtggtgagatgacgaccacgatacttgtatagacgatggatgtggtgcgatgatgacctagatttacatgtgtagacaacgcggtgtgatcgctcccgtctgatctaaagaaagctttgcggtcggtggttgtgttttgaggctcagataaaatgaataacaacggtgcaataaaatgaaaatagtgtaaaatggtactattataataatattataatataaaaaatttttaataatttccatactccatacacataaccaggggggggggggggggggggattaaacatcttataattatatctttccattatggaatatactatctataaaatataatatttataaacattggggggggggggggggggggtacgtatgactattaaaattcataactatatttctgtttttttaatatactaaaaaaaacacactataatcaaacaggggggggggggggggctattcattacatcacatgaagtagtgtacgtcaaatggaacctctgttttatttagcaagagattggagtatttctagagaacaggtgggtattttaaaatattcgatcattaccttttaattacaaaatttcatatatcactatattaaactcacaaactttgatctgatataggggggggggggggttcatattcaatatttttatttcattatattaagaacattataaaaactaataaaacacatattttactttatggggggggggggggggggggggtatatcgaataataaaggtggtgtcaacgtgagcctaaattaataagaaagaaatagtaataaaggttgtactttatatcggaatattgtgctacatcgataatatgtctttgcatccgattaacaaagtagcttacaacccgaataacattgtaattgaaattgcacctagattgtccaaaaaatacatgacataaaaccgaaaaatcctaaggaagctagaacgacggggagttaatgttgtttagattttgaaatctatccaacatttgtgaatcctcaatctttcctcattattaacttatctaactaataatttcattttaatacttctactctcccctatttagggggggggggggggggggggaaaatatatgggatttggatctggcagataaaaatgccattctctgcctgtggtgcagttaagatttccccccagtacgtgaatccatgtccttcaaagtcgatggagacgtataccgaacagcaggaatggaagtcaagtcatcgtcaatgtcgtatcaatatcatccctttgcaaggtgtagaggggggaggtaatgaactcgaacagcgcattttgacgggtccactgccttaaagaaagattcttggttttatcgagaaattccgaatactaatctgaaccggattcaaaacatacaaatacctccttaattaacttttccctacttacatttgctgccaggggggggggggggggggtctctctctgcaccaattaatttcttccaatgctttgattttagatagtgtggtgctatgctatcgatgacgttatacatgacatcattgcaaggggcgtgtgtgttgaaatccatgtagccgcatatataattatgtgggcccaacgaccgagcccattctgtcttccccgttcggcttggtccttccaagataagactgattggccgatcaatattttttttgagaataaatatattattctcaaatggctgcgcagcggaattctcatcaaaattggtaactaccactctaataccttattactggaaacttgagtaacccattcatcaacatactaccactcaaatatactgggggggggggggggggtcagcactcgctatgatcttgtgatactgcaatacaaacgaccggggatctttctcttttataatctgtaacaattctgcacggaagtacatgttgaggcgttagcatacacagttgctaaatcacgagtacctcctcttgaagaactaccatcatctgaaactcaccccaatctatgtaatccgccgtccttcaacataggccttgacatcggagctggatttggcactctgaatgtttggatgaaagctcctgaaagtgggaaaatgacgtagatcgaatagtctttgatttgtgatctgtgctttgcctttgagttgtatgagcgcatgtatatgaaggcatccatcttggtgaagttcacaggcaacccgaatgaacttcttattagtcagaatggttatggtgataggttatgccagagcttcttcttggatagggaacattaaggatatgttaggaaaaaaaatttagcactgaaatggacccattttggtggtagtggcatatttgtaataaatggtttgtacaccgattggagctctccctataaatttccttcttgcgtgtaatggtgacaatatatatccctctccttgtggccatacgtttaatatt154 广西大单博士学位论文中国浪山班r病毒病谓查诊断和病康病毒分子生物学的研究、附录5用于制备抗体的病毒外壳蛋白氨基酸序列-YMMVNIbCP:MSHKAVKREGIFIPKLEEERIVAILEWSRTENYEHRLEAICAAMEAWGYDELLRQIRLFYSWVLEQEPYRTLASEGRAPYISEYALRRLYLGDDDSDAELYNRYLRALIDNYTHDDSDIVVHQASKEQTFDAGQFASKQAHPQGSASSSEGPGKDVNVGTKGTFSIPRIKAPMSKLTLPKLKGKVLVNLEHLVEYEPEQVDISNKRASQEQLGQWVESVKTSYDVDDEQLKIILNGFMVWCIENGSSPNINGNCYMIENGEQIEFPLKPIVENAKPTLRQIMAHFSDIAEAYmKRNAKKAYMPGYGLKRNLNDYSLARYAFDFFEITSKTPVRAREAHMQMKAAALRNTRTRLFGLDGSVGTNDENTERHTSDDVNKDMHSLLGVRNIYVX-CPsMIESMSTPGPSVTSASATARADAAFKASVAPKVKFDVSNAASfSMADLKLIKYSPESNAVASPSQIEMIFTLWRAAGVPEQYLSLFAIDIARHCADVGSSKKAVLSGVANFVEDTNEGTGSLVARRSLAAnKTWPLRQFCRYYARWWNMLNDPENPTPPANWSALEYKDESKFAAFDFFDAIDHTAALQMPLIREPTEIERVAHATQTRLTLTRRAKESGNASWSYEVTAGRLGKSPGLLNLPEPJYMV-CP:EKDVNVGTIGTFAVPRLKGLATKMNMPRVRGKPALNLDHLLLYNPEQVDLSNTRATRKQFDTWYDGVKRDYELDDNSMQIILNGLMVWCIENGTSPNINGMWVMMDGHEQIEYPIKPLIDHAKPTFRQIMAHFSNVAEAYIEKRNQEKAYMPRYGLQRNLTDMSLARYAFDFYEITSKTPARAREAHIQMKAAALRGTQSKLFGLDGNVSTMEENTERHTAEDVNRTMHSLLGVRGYLV-CP:MVDPPKSQSQGSDPQNAAAGDATMQREPRVESARAKGKESASKPRASGMDKJFIDSEAWDDPATEQMLEQRLANLKEYLRKRRSAVIVTNAGLETGRPKLQVPDDMLPDPTNPYNRPTLEALCKIKPKPVSNNMATSEDMMRIFTDLEGLGVPSEHVQQVLIQAVIYCKDASSSVYLDPRGTFEWPQGAIAADSVIAVLKKDAETLRRVCRLYAPVTWAYMLAHNAPPSDWAAMGFHYNDRFAAFDCFDYVENPAAVQPAEGLVRRPTPREKLAHGTHKDIALRAANRNQAFGNFSAEITGGKDGPELVRDYSKSSNKCYNMV-SSY-CP:MDLSSPPQNPPKKQPLEERKKAPAEDSTATTSKESNQGHQPIEEPNNDPGTFDDEDIEWRIPAIQKGFGHYKIPKVKGKJUWNPKILKKISQEQFTTTSQMVTTSKLEQWIEEVKRDLVVTSDTDFQICLTSW155 广西大学博士学位论文中国灌山箱病?病调查诊断和病康病?分子生物学的研究、CLWCANNGTSSELDVSQFMEVHANGQVMGIPIQIFVEPAVLHGGLRKVMRHFSGITSKMLSEGGKMTAWGKKRGFTQRSMIPYAFDFFVPTDTTPKTVREQLSQSKAAAIGRGVQRVMLLDGKVHGSRTSYERHTDNDQDEYEHGGSDDQRPALY--BBWVRNA2CPL:GLMEEDVLNVQTNNFAIESATETMRLLFSGYASIPLNVTPRTKITVAYLNELSKHSAVHTGLLNMLSRIPGSLKIKINCQVAPTCGIGLAVSYVEGNESTNLGSSLGRLLGIQHYKWNPAIEPYVEFVFKPFSCADWWNMHYLGSFKYAPVWIQTLSKWLNAPKVDARISFAIYYEPTTVLPKQIATLEHAPAFMFRKELGTLAFKQGGRVAYSFEVNFGKPQTDGKEVTSTFASSYCGLSQYMQSDVILDFTLMSSPMIGGTFSIAYVAGAYIEKVGNMQILDSLPHIDFTFSSGAKSTRSVRFPKAVFGVYQALDRWDLDSARGDDVSGNFVLYQRDAVSSALEGELTFRVAARLSGDISFTGVSAGYPTTVTRIGKGKTIGRSLDPEIRKPLRYMLGQ156 广西大学博士学位论文中国浪山苗病毒病调查、诊断和病康病毒分子生物学的研究致谢六月徂暑,山有佳卉。在本论文完成之际,在此谨向所有关心和帮助过我的老师、同学和朋友们致以最诚挚的谢意!首先衷心感谢我的导师陈保善教授,感谢他对我的学习和科研的谆谆教诲,对我的生活如慈父般的关怀。本论文是在陈老师的悉心指导下完成的,从论文的选题、实验的心血和智慧、开设计到论文的撰写,无不凝聚着导师的大量的。陈老师严谨的治学态度阔的视野、敏捷的思维和以身力行的处事作风以及高深的学术造诣是我终身学习的榜样。特别感谢我们实验室的蒙姣荣老师、廖咏梅老师、温荣辉老师、何熙璞老师、彭好文老师、罗继景老师、商巾杰老师和李文兰老师等在学习和科研中给予我的指导、关心和帮助。。感谢李茹老师作为答辩秘书付出的辛勤劳动感谢广西大学生命科学与技术学院和亚热带农业生物资源保护与利用国家重点实验室的唐纪良教授、冯家勋教授、何勇强教授、李有志教授、陆光涛教授、徐远金教授、王志强老师、付强老师、朱平川老师、周洁老师和岑卫健老师的关心和帮助。感谢广西农科院蔡健和研究员、朱桂宁研究员、韦本辉研究员、广西大学农学院何龙飞教授在样品采集过程中给予的帮助。感谢广西医科大学的蓝秀万老师对我的关心和帮助。感谢分子病毒实验室已毕业的姚姿婷博士、王方贞博士、朱英芝博士和王金子博士后对我的关心和帮助,感谢已毕业的硕士韦茂春、李战彪、蔡埼和曾泉等的关心和帮助,、施李鸣和陈琦感谢博士研究生宋静静、全睿,硕士研究生张蕾、卢晓静、何芳练、李璞、杨彦彦、欧阳秋飞、卢立丹、潘瑞兰、吕榜丽、陆群凤、白山、胡逸超、鹿宗贵、周礼玮、、梁彩云、司慧娟、朱丽玲、王君、唐瑶、、白凌云、宁小清、陆志翔周龙武蒙月月等同学的关心和帮助。感谢闭海老师在资格审查和论文送审中的帮助。感谢生科院和国家重点实验室所有老师和同学对我的关心和帮助。心感谢罗杰、苏辉昭、刘国芳和刘伟等同学的关和鼓励。、徐强胜、安世琦、李瑞芳心、鼓助。感谢我的家人,是他们给予我最多的关和支持使我能顺利完成学业一业)行业研究专项200903022的资助。本研究受国家公益性(农(),在此并致谢邹承武2014年5月6日于广西大学157 广西大学博士学位论文中国灌山班病毒病调查、诊断和病屎病毒分子生物学的研究攻读学位期间发表的学术论文学术论文*1.CZJ.MenZ.LiM.WiJ.SonB.ChenandB.Wei.FirtRrtofYammild.oueseo,g,,,g,,pmosaicvirusinYaminGuangxiProvinceChina.PlantDisease95102011:1320.,,(),=IF2.449()*2.YaoZZouCZhouHWanJLuLLiYChenB.,,,g,,,^--uAPyrrolineSCarboxylate/GlutamateBiogenesisIsReqiredforFungalVirulenceand=Sporulation.PLoSONE8(9)2013:e73483.(IF3.73),PP.L..Zou*3.J.R.Men.iuCWZ..WanJ.H.CaiB.X.inandB.S.Chen.Firstg,,,Qg,,Q=reortofTosovirusinmulberry.PlantDisease9772012:1001.IF2.455pp,(),()--*aoLe-W-an-enand-rseor4.YM.LiF.HC.ZouP.LiZ.WS.ChXP.LuFitRt,,,,Qg,B,,p=ofTelosmamosaicvirusonPassionfinitinChina.PlantDisease.AccetedIF2.455(p,)*5-...200922(1:1520邹承武,陈保善基因组学与植物病害控制广西植保,,)6.宋静静,蒙姣荣,邹承武,李璞,王志强,陈保善气用小RNA深度测序鉴定广西冬-401.20134619:40758种马铃薯病毒中国农业科学,,()*7.王志强,蒙姣荣,邹承武,黄锦宽,林纬,黎起秦,陈保善.罗汉果查尔酮合成酶1-.基因组学与应用生物学.20029:57783.基因的生物信息学分析;*8.7.宋静静,蒙姣荣,卢晓静,部承武,陈保善马铃薯汾r〇M和汾双千扰植物双元表达载体的构建及转化验证-.基因组学与应用生物学,2014,33(1):2228*9.蒙姣荣,李战彪,韦茂春,邹承武,廖咏梅,陈保善.广西部分烟区烟草曲叶病病原的分子鉴定.植物保护,2012,38:3741.*10..蒙姣荣,赵家新,蔡琦,邹承武,李战彪,廖咏梅,陈保善广西烟草病毒病发生-情况调查和病原病毒的鉴定.广西植保2012,25:12.,*11..朱英芝,韩英,蒙姣荣,廖咏梅,邹承武,陈保善小西葫芦黄化花叶病毒罗汉果-分离株抗血清的制备和应用.热带作物学报,2011,32:16836.12.张蕾,邹承武,蒙姣荣,卢晓静,陈保善抗病毒药剂处理脱除淮山药温和花叶病毒的研究.南方农业学报.(已接收)158 广西大学博士学位论文中国淮Oi箱病毒病调查、诊断和病尿病毒分子生物学的研究国际会议论文*1.C.W.ZouJ.R.Men..WanL.ZhanandB.S.Chen.Identificationofviruses,g,ZQg,gth-infectinaminChina.10InternationalConressofPlantPatholo2013Auust2530gyggy,,g,BeiinChina:450jg,*2.Yao.ZH.ZhJ.Z.WaY.LiL.D.LuandB.S.Chen.Imlitionof.Z.TC.Wououngca,,,,,p會Viglutamatebiogenesisinregulationoflantfunalvirulence.10InternationalConressofpgganus-PltPatholoy2013Aut2530BeiinChina:264g,,,,gjg3Z.WanYM.LiaoGN.ZhuC.W.ZouY.RenZ.M.ZhouY.F.ChenLM...Qg..eng.,,,,,,,Q,*Sh.Li.anand.Shen.enomestructureandseuenceofhesuarcanesmutiPLWB.CGt,,gqgthrnaona-nfungus.10IntetilConressofPlantPatholo2013Auust2530BeiiChina:ggy,,g,jg,237-238*4.J.R.Meng.P.LiuC.W.ZouZ..WanY.M.LiaoJ.H.CaiB.X.inandB.S.Chen.,P,,Qg,,,QthFirstReportofaTcwpoWmsinMulberry.10InternationalCongressofPlantPathology,-us-e2013Aut2530Biinhina:454455,g,jg,C国内会议论文*1、..邹承武;蒙姣荣;韦本辉;陈保善利用深度测序技术鉴定淮山药病毒病新病原中国植物病理学会2012年学术年会论文集:225*一2、蒙姣荣;刘平平;邹承武;廖咏梅;蔡健和;秦碧霞;陈保善.侵染桑的种新病—毒番茄斑萎病毒属成员病毒:2.中国植物病理学会2012年学术年会论文集26*3、邹承武;蒙姣荣;宋静静;韦本辉;蔡健和;陈保善.广西淮山药病毒病调查及病毒病原鉴定.中国植物病理学会2011年学术年会论文集:288春*4、宋静静战彪.玉;邹承武;蔡骑;韦茂;李;蒙姣荣;陈保善林市马铃薯病毒病Y病2011:发病情况调查及马铃薯毒株系的鉴定.中国植物病理学会年学术年会论文集334*5、朱英芝;韦茂春;陈保善.小;邹承武;蒙姣荣西葫芦黄化花叶病毒罗汉果分离物进化分析.中国植物病理学会2011年学术年会论文集:328*6、朱英芝..;邹承武;廖咏梅;蒙姣荣:陈保善罗汉果病毒病侵染源及流行病学研究中国植物病理学会2009年学术年会论文集:376159 广西大学博士学位论文中国淮山苗病毒病调查、诊断和病屎病毒分子生物学的研究发明专利1、.:.陈保善,邹承武,蒙姣荣.淮山药X病毒的多克隆抗体制备检测及其应用申请号--进入实质审查阶段201310541274.7:20131105。;申请日;2.陈保善,邹承武,蒙姣荣,张蕾,卢晓静.淮山药温和花叶病毒的多克隆抗体制备、-20-1310541297.8;:20131105。检测及其应用:申请日;进入实质审查阶段;申请号3.陈保善,姚姿停,邹承武,周辉,王金子,卢立丹.板栗疫病菌致病力基因Prodh及--入实质审查阶段:201310233228.0:20130613。其应用;申请日;进;申请号4.陈保善,姚姿捧,邹承武,周辉,王金子,卢立丹.板栗疫病菌产孢基因Pr〇2及其--入实质审查阶段应用;申请号:201310233228.0;申请日:20130613;进。5..陈保善,姚姿婷,邹承武,周辉,王金子,卢立丹,李洋板栗疫病菌致病力基因P5Cdh及其应用--:201310233261.3请日:20130613进入实质审查阶段。;申请号;申;6.陈保善,姚姿捧,邹承武,周辉,王金子,卢立丹.板栗疫病菌产孢基因Prol及其--入实质审查阶段应用;申请号:201310233267.0;申请日:20130613;进。160

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